Summary

多光谱定量分析继荧光组织移植的细胞起源,类型和相互作用的可视化

Published: September 22, 2013
doi:

Summary

复合组织群众,从机关到肿瘤,是由各种细胞成分的。我们阐明了利用多标记的荧光转基因小鼠与多参数免疫荧光染色结合组织随后光谱分离破译细胞起源以及基于蛋白表达细胞特征的细胞内表型的贡献。

Abstract

以理解的多个蜂窝单元,以一种复杂的组织的发展贡献的愿望;如参与再生组织,肿瘤形成,或血管生成中的许多细胞类型中,我们设计了在肿瘤发展的一个多彩色的细胞移植模型该细胞群的不同颜色的荧光报告基因小鼠起源和移植,嫁接或和周围一个发展中的肿瘤注射。然后,这些彩色的细胞被招募并纳入肿瘤基质。为了定量评估骨髓来源的肿瘤基质细胞,我们移植绿色荧光蛋白转基因表达全骨髓成致死剂量照射RFP批准的IA​​CUC表达的小鼠。该被原位注入移植小鼠0ovarian切除肿瘤6-8周后移植和原籍骨髓标记(GFP)以及抗体标记物来检测肿瘤相关分析基质使用多光谱成像技术。然后,我们修改我们称之为复用蜂窝组成MIMicc – 多光谱讯问的方法,使用fluoroprobes的多光谱混合像元分解定量评估这些标记的细胞来自这起群体(以原价报告基因标签),并作为我们UNMIX 4,5能力,每张幻灯片增加6个或更多频谱,我们已经添加了细胞谱系或分化增加精度相关的其他免疫组化。利用软件来检测共定位复用的荧光信号,肿瘤间质的人群可追溯,枚举和特点的基础上标记染色。1

Introduction

了解组织的发育和修复是显著,以阐明在伤口愈合,2,3再生医学,发育生物学,肿瘤生物学参与细胞成分。正在修理的情况下,许多类型的细胞渗透到周围的微环境中血管生成,细胞外基质沉积,增殖和组织结构调整提供帮助。细胞因子和表型可以基于多参数,复用标记,可以识别定位,分化状态和所研究的微环境中的细胞成分之间的相互作用来识别。在这里,我们描述肿瘤的发展作为一个典型的例子为这个多色多细胞移植模型其次是多光谱成像和光谱分离的方法。

肿瘤进展是显着的几个收购功能,包括增强的扩散,一个多步骤的过程ntiapoptotic,浸润和血管生成特性。4肿瘤的发展是由被招募到周围环境中,以提供生长因子,结构基质,血管网络和免疫调节非肿瘤细胞容易。1,5,6这种微生包括衍生自细胞的本地,邻近的组织,例如脂肪,血管和遥远来源如骨髓衍生细胞1。非赘生性细胞结合的程度依赖于来自肿瘤,这往往对应于肿瘤的阶段/级的需求。理解肿瘤微环境中支持的作用,人们必须了解的非肿瘤细胞群的起源和分化潜能。

这个协议被设计在肿瘤进展的同时通过骨髓来源的细胞组分可视化的解释,以帮助和局部组织衍生工编细胞。利用荧光报告基因表达的转基因小鼠,我们移植GFP(绿色荧光蛋白)的骨髓成致死剂量照射的RFP(红色荧光蛋白)鼠标。继成功的骨髓移植,同基因肿瘤细胞系原位注入并允许嫁接4-8个星期。将所得的肿瘤是从小鼠切下并处理用于免疫荧光(IF)染色进行可视化的基质组分。复中频标记是一种常用的技术,它涉及显著优化7-9,不过使用的是多光谱成像/解混平台提高对于具有光谱重叠的荧光标记物的组合的可能性。在此,我们提出我们称之为复用蜂窝组成MIMicc,多光谱审讯染色及分析多达内对单张幻灯片肿瘤部分8标志物,以分析细胞起源,细胞分化ST的技术ATUS和元器件的肿瘤微环境内的细胞 – 细胞相互作用。这个简化的例子有在为了分析五个,六个或更多个标记物,利用抗体或细胞内的启动子驱动的荧光表达, 表1列出潜在荧光抗体染色组合以考虑相应的物种被扩展的可能性。

Protocol

同基因小鼠骨髓移植(BMT)批准的机构IACUC协议( 注:此协议的成功需要利用任何标记的细胞类型(S)的为多光谱的分析目标,并促进下游分析,人们可以利用任何遗传或稳定的细胞标记,我们建议的任何细胞,组织或器官将要能够应用于移植模型,而移植可以包含尽可能多的独特标记的种群为研究认为是有用的。此外,多重标记的蜂窝系统,如在转基因小鼠中发现包含多个谱系限?…

Representative Results

利用多光谱成像技术来分析肿瘤植入在我们的转基因骨髓移植小鼠模型,我们能够辨别间质瘤组件是骨髓来源。初始BMT证实3周移植后通过流式细胞术( 图1)。原位注射未标记卵巢肿瘤BMT后确认植入切除和福尔马林固定的6周后最初的肿瘤注射。石蜡包埋的肿瘤切片,切片在<8μm的切片和染色。适当的单一色彩控制幻灯片的每个荧光基团包括一个用于背景自发荧光而进行。 表1?…

Discussion

本文中我们描述了多光谱成像的应用中,我们描述了作为复用的细胞组合物MIMicc-多光谱询问,以分析肿瘤微环境中的源自骨髓的间质成分,但是这种方法和概念可以应用于破译了组成一个复杂的其他细胞成分组织中,例如在伤口愈合反应或再生组织中看到。在这些实验中,我们利用转基因小鼠中,以荧光从内植入肿瘤微环境中的宿主来源的细胞区分骨髓来源的细胞,但该技术适合于使用任何报告…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们感谢来自博士的讨论,指导和支持。迈克尔Andreeff博士。,和Jared伯克斯博士。从MD安德森流式细胞仪和细胞成像核心设施。这项工作是由美国国家癌症研究所(RC1-CA146381,CA-083639,R01NS06994,CA116199和CA109451对于FCM部分资金。ELS是由国防部陆军部(BC083397)也支持。

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
.2 μm filter Fisher 09-740-35A
10 ml lure lock BD 309604
25 G needle Cardinal BF305122
40nm filter BD 352340
50 ml conical tube Fisher 1495949A
Alexafluor 488-ms1 invitrogen A21121
Alexafluor 594-Rb invitrogen A21207
Alexafluor 647-ch Invitrogen A21449
BSA Sigma A7906-500G
Cover slips Corning 2940-243
CRI-Nuance Caliper Life Sciences
Dapi Invitrogen D1306
DMEM CellGro 10-017-CV
Ethanol Dharmacon 4004-DV
FBS invitrogen 16000-044
GFP-ms1 Abcam ab38689
Insulin needle BD 329424
Maleic acid Acros 100-16-7
Moisture chamber box Evergreen 240-9020-Z10
Mounting media dako S3023
Nail hardener Sally Hansen 2103
Pap pen Abcam Ab2601
Pen/Strep L Glut invitrogen 10378016
Steril PBS invitrogen 14040-182
Trypsin invitrogen 252000-56
Blocking Buffer
maleic acid 14.51 g
NaCl 10.95 g
NaOH pellets (to 7.5pH) 9+g
Distilled water 250 ml
*add 0.2% Tween-20 to 1x solution for blocking buffer with 2%BSA/2%FBS. Stir and filter.
Antigen retrieval buffers:
Tris-EDTA Buffer
(10 mM Tris Base, 1 mM EDTA Solution, 0.05% Tween 20, pH 9.0)
Tris Base 1.21 g
EDTA 0.37 g
Distilled water 1000 ml (100 ml to make 10x, 50 ml to make 20x)
Tween 20 0.5 ml
*Store at RT for 3 months or at 4 ° C for longer
Sodium Citrate Buffer
(10 mM Sodium Citrate, 0.05% Tween 20, pH 6.0)
Tri-sodium citrate (dihydrate) 2.94 g
Distilled water 1000 ml
HCl (adjust pH to 6.0) 1N
Tween 20 0.5 ml

References

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check_url/50385?article_type=t

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Cite This Article
Spaeth, E. L., Booth, C. M., Marini, F. C. Quantitative Multispectral Analysis Following Fluorescent Tissue Transplant for Visualization of Cell Origins, Types, and Interactions. J. Vis. Exp. (79), e50385, doi:10.3791/50385 (2013).

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