Summary

La ligadura y punción cecal inducida por sepsis como un modelo para estudiar la autofagia en ratones

Published: February 09, 2014
doi:

Summary

La sepsis experimental puede ser inducida en ratones usando el método (CLP) ligadura y punción cecal. Los protocolos actuales para evaluar la autofagia in vivo en el contexto de la sepsis inducida por CLP se presentan aquí: Un protocolo para la medición de la autofagia utilizando ratones (GFP)-LC3, y de un protocolo para la medición de la formación de autofagosoma por microscopía electrónica.

Abstract

La sepsis experimental puede ser inducida en ratones usando el método (CLP), que causa la sepsis polimicrobiana ligadura y punción cecal. Aquí, se proporciona un protocolo para inducir la sepsis de diversa gravedad en ratones utilizando la técnica de CLP. La autofagia es una respuesta de los tejidos fundamentales para el estrés y la invasión de patógenos. Dos protocolos actuales para evaluar la autofagia in vivo en el contexto de la sepsis experimental también se presentan aquí. (I) Los ratones transgénicos que expresan la proteína de fluorescencia verde proteína de fusión (GFP)-LC3 son sometidos a CLP. Mejora localizada de la señal de GFP (puntos lagrimales), tal como se ensayaron, ya sea por ensayos inmunohistoquímicos o confocal, se puede utilizar para detectar la formación de autofagosoma mejorada y, por lo tanto, la activación alterada de la vía de la autofagia. (II) mejorada vacuola de autofagia (autofagosoma) formación por unidad de área de tejido (como un marcador de la estimulación de la autofagia) puede cuantificarse utilizando microscopía electrónica. El estudio de las respuestas autofágicas a sepsis es un borrador críticoonent de la comprensión de los mecanismos por los que los tejidos respondan a la infección. Resultados de la investigación en esta área pueden contribuir en última instancia, hacia la comprensión de la patogénesis de la sepsis, lo que representa un problema importante en la medicina de cuidados críticos.

Introduction

La sepsis, una respuesta inflamatoria sistémica a la infección, representa la principal causa de muerte en los pacientes críticamente enfermos 1. Las infecciones intra-abdominales, a menudo conduce a la sepsis polimicrobiana, representan el 20% de los casos de sepsis, que tienen una mortalidad considerable de hasta un 60% 2. La mortalidad asociada a la sepsis se debe principalmente a la disfunción multiorgánica con insuficiencia orgánica posterior 3,4. Investigación adicional en el mecanismo patogénico de esta enfermedad es una necesidad urgente de promover el desarrollo de terapias novedosas y más eficaces.

El método de ligadura cecal y punción (CLP) es un procedimiento comúnmente utilizado para el modelado de la sepsis en vivo. Como el ciego está llena de bacterias, sus resultados de punción en la peritonitis polimicrobianas, la translocación de bacterias en la sangre (bacteriemia), shock séptico, disfunción de múltiples órganos y, en última instancia, la muerte 5. Se acepta en general que refleja CLP clínicarealidad con mayor precisión que las técnicas anteriores, tales como la inyección de endotoxina o bacterias incluso purificados en roedores, Por lo tanto, CLP se considera el estándar de oro (aunque no sin limitaciones) 6 para la inducción experimental y, por lo tanto, la investigación de la patogénesis de la sepsis. En esta monografía, se describen los protocolos diseñados para evaluar si los mecanismos patogénicos de la sepsis incluyen la autofagia.

La autofagia, un proceso celular conservado evolutivamente, facilita la facturación de proteínas y orgánulos tales como mitocondrias dañadas y juega un papel importante en el aclaramiento de los patógenos intracelulares, incluyendo bacterias 7,8. Durante la autofagia, proteínas u orgánulos citosólicas son secuestradas en vesículas unidas a la membrana dobles llamados autofagosomas, que posteriormente se entregan a los lisosomas para degradación 9. Un número de proteínas se han identificado como los homólogos de mamíferos de genes relacionados con la autofagia (ATG),originalmente identificado en la levadura, que regulan el proceso de autofagia. La conversión de la proteína asociada a microtúbulos-1 de la cadena ligera 3B (LC3B) (homólogo de Atg8) de-I LC3B (forma libre) a LC3B-II (forma-fosfatidiletanolamina conjugado) representa un paso importante en la formación autofagosoma 9. Disfunción autofagia se asocia con el envejecimiento y enfermedades humanas incluyendo cáncer y trastornos neurodegenerativos 10. Por otra parte, la autofagia afecta la inmunidad innata y adaptativa, tales como la presentación de antígenos, el desarrollo de linfocitos y la secreción de citoquinas por las células inmunes 8. Por lo tanto, parece razonable que la autofagia también podría desempeñar un papel en la respuesta inflamatoria sistémica a la infección (es decir, en la sepsis).

Hasta la fecha se han descrito varios métodos para evaluar el papel de la autofagia en la lesión tisular in vivo. Estos incluyen el uso de ratones que expresan la proteína de fluorescencia verde (GFP)-LC3 y la cuantificación de Autofagosomas en el tejido por microscopía electrónica (estos dos métodos se describen en esta monografía). Métodos adicionales incluyen la cuantificación de la expresión de la proteína de la autofagia en homogeneizados de tejido, y el análisis de flujo de autofagia (como se describe en otra parte) 11-13. El objetivo de esta revisión es proporcionar los protocolos actuales para la evaluación de la autofagia en vivo en el contexto de la sepsis experimental.

Protocol

Nota: El Comité Institucional Cuidado de Animales y el uso en el Brigham and Area Escuela de Medicina Hospital / Harvard de la Mujer aprobó los siguientes procedimientos. 1. La ligadura y punción cecal Utilice ratones del mismo fondo (C57BL / 6), macho, de 8-10 semanas de edad. Los ratones hembra que son más resistentes que los hombres contra la letalidad inducida por la sepsis. Los ratones de más edad de 8 semanas producen menos resultados va…

Representative Results

La bacteriemia está presente en los ratones a las 6 horas después de la sepsis inducida por el CLP 14. Los signos clínicos de sepsis (incluyendo escalofríos, taquipnea y la actividad motora) aparecen aproximadamente 12 horas después del procedimiento. Los ratones sometidos a CLP comienzan a morir en alrededor de 18 horas después de la inducción de peritonitis. Cuanto más grave es la sepsis tanto más aumenta la letalidad es 15. En detalle, la sepsis de alto grado provoca una mortalidad del …

Discussion

La principal ventaja de CLP es que permite a los investigadores estudiar la sepsis de diferentes niveles de gravedad (es decir, de bajo a medio y de alto grado). Gravedad de la sepsis inducida se ve afectada por la longitud del intestino ciego ligado (que el determinante más importante), el tamaño de la aguja utilizada para la punción y el número de agujeros realizados 15. Además, la cepa de ratón y el género pueden influir en la gravedad de la sepsis; varias cepas son más susceptibles que ot…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue apoyado por el NIH subvenciones HL108801 P01, R01-HL60234, HL55330-R01, R01-HL079904, a AMK Choi. S. Ryter recibió apoyo salarial del Lovelace Respiratory Research Institute.

Materials

GFP-LC3 Transgenic Mice Riken (Japan) RBRC00806 GFP-LC3#53
Xylazine Henry-Schein 568-0606 Xylazine HCl Injection Vet
Ketamine Henry-Schein 995-2949 Ketaset Inj 100 mg/ml
EtOH Fisher A405-20 Histology Grade
EtOH Fisher A407-1 For Sterilizatiion
silk surgical sutures 6-0 Owens & Minor 2300-0078OG, 017624
buprenorphine-HCl Henry-Schein 614-5157 Buprenex Ampules
paraformaldehyde (37%) solution JT Baker S898-09
xylenes Fisher X3P-1GAL
anti-GFP monoclonal antibody Life Technologies G10362
Hoescht Sigma 944403
DAPI Invitrogen D1306
OCT VWR scientific 25608-930
Sudan Black Santa Cruz sc-203760
EM grade Glutaraldehyde 2.5% in sodium cacodylate Electron microscopy Sciences 15960
propylene oxide Sigma 240397
Agar 100 resin Agar scientific R1045
dodecenylsuccinic anhydride Sigma 46346
methylnadic anhydride Sigma 45359
N-benzyldimethylamine Sigma 185582

References

  1. Hotchkiss, R. S., Karl, I. E. The pathology and treatment of sepsis. N. Engl. J. Med. 348, 138-150 (2003).
  2. Anaya, D. A., Nathens, A. B. Risk factors for severe sepsis in secondary peritonitis. Surg. Infect. 4, 355-362 (2003).
  3. Bone, R. C., Grodzin, C. J., Balk, R. A. Sepsis: A new hypothesis for pathogenesis of the disease process. Chest. 112, 235-243 (1997).
  4. Rivers, E., Med, s. h. o. c. k. .. N. .. E. n. g. l. .. J. .., et al. Early goal-directed therapy in the treatment of severe sepsis and septic shock. N. Engl. J. Med.. 345, 1368-1377 (2001).
  5. Deitch, E. A. Rodent models of intra-abdominal infection. Shock. 24 (Suppl 1), 19-23 (2005).
  6. Raven, K. Rodent models of sepsis found shockingly lacking. Nat. Med. 18, 998 (2012).
  7. Levine, B., Kroemer, G. Autophagy in the pathogenesis of disease. Cell. 132, 27-42 (2008).
  8. Virgin, H. W., Levine, B. Autophagy genes in immunity. Nat. Immunol. 10, 461-470 (2009).
  9. Mizushima, N., Komatsu, M. Autophagy: renovation of cells and tissues. Cell. 147, 728-741 (2011).
  10. Choi, A. M., Ryter, S. W., Levine, B. Autophagy in human health and disease. N. Engl. J. Med. 368, 651-662 (2013).
  11. Haspel, J., et al. Characterization of macroautophagic flux in vivo using a leupeptin-based assay. Autophagy. 7, 629-642 (2011).
  12. Chen, Z. H., et al. Egr-1 regulates autophagy in cigarette smoke-induced chronic obstructive pulmonary disease. PLos One. 3, 3313 (2008).
  13. Kim, H. P., Chen, Z. H., Choi, A. M., Ryter, S. W. Analyzing autophagy in clinical tissues of lung and vascular diseases. Meth. Enzymol. 453, 197-216 (2009).
  14. Flierl, M. A., et al. Adverse functions of IL-17A in experimental sepsis. FASEB J. 22, 2198-2205 (2008).
  15. Rittirsch, D., Huber-Lang, M. S., Flierl, M. A., Ward, P. A. Immunodesign of experimental sepsis by cecal ligation and puncture. Nat. Protoc. 4, 31-36 (2009).
  16. Mizushima, N., Yoshimori, T., Levine, B. Methods in mammalian autophagy research. Cell. 140, 313-326 (2010).
  17. Wang, L., Ma, R., Flavell, R. A., Choi, M. E. Requirement of mitogen-activated protein kinase kinase 3 (MKK3) for activation of p38α and p38δ MAPK isoforms by TGF-β1 in murine mesangial cells. J. Biol. Chem. 277, 47257-47262 (2002).
  18. Ding, Y., Kim, J. K., Kim, S. I., Na, H. J., Jun, S. Y., Lee, S. J., Choi, M. E. TGF-{beta}1 protects against mesangial cell apoptosis via induction of autophagy. J Biol Chem. 285, 37909-37919 (2010).
  19. Baker, C. C., Chaudry, I. H., Gaines, H. O., Baue, A. E. Evaluation of factors affecting mortality rate after sepsis in a murine cecal ligation and puncture model. Surgery. 94, 331-335 (1983).
  20. Godshall, C. J., Scott, M. J., Peyton, J. C., Gardner, S. A., Cheadle, W. G. Genetic background determines susceptibility during murine septic peritonitis. J. Surg. Res. 102, 45-49 (2002).
  21. Carchman, E. H., Rao, J., Loughran, P. A., Rosengart, M. R., Zuckerbraun, B. S. Heme oxygenase-1-mediated autophagy protects against hepatocyte cell death and hepatic injury from infection/sepsis in mice. Hepatology. 53, 2053-2062 (2011).
  22. Lo, S., et al. Lc3 over-expression improves survival and attenuates lung injury through increasing autophagosomal clearance in septic mice. Ann. Surg. 257, 352-363 (2013).
check_url/51066?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Siempos, I. I., Lam, H. C., Ding, Y., Choi, M. E., Choi, A. M. K., Ryter, S. W. Cecal Ligation and Puncture-induced Sepsis as a Model To Study Autophagy in Mice. J. Vis. Exp. (84), e51066, doi:10.3791/51066 (2014).

View Video