Summary

Aktivering och Mätning av NLRP3 inflamma aktivitet med användning av IL-1β i human monocyt-härledda dendritiska celler

Published: May 22, 2014
doi:

Summary

Dendritiska celler (DC) utsöndrar IL-1β som svar på TLR8 erkännande av syntetisk purin, R848, följt av NLRP3 inflamma aktivering med nigericin därför IL-1β kan användas för att mäta NLRP3 inflamma aktivitet. Intracellulär cytokin färgning, immunoblotting, och ELISA används för att noggrant mäta NLRP3 inflamma priming och aktivering via IL-1β uttryck.

Abstract

Inflammatoriska processer till följd av utsöndring av interleukin (IL) -1 familje cytokiner av immunceller leder till lokal eller systemisk inflammation, vävnadsombildning och reparationer, och virologisk kontroll 1, 2. Interleukin-1β är en viktig del av det medfödda immunförsvaret och bidrar till att eliminera invaderande patogener samtidigt förhindra etableringen av ihållande infektion 1-5.

Inflammasomes är nyckeln signaleringsplattform för aktivering av interleukin-1-omvandlande enzym (ICE eller Caspase-1). NLRP3 inflamma kräver minst två signaler i DCs att orsaka IL-1β sekre 6. Pro-IL-1β-proteinuttryck är begränsat i vilande celler; därför en priming signal krävs för IL-1β-transkription och proteinuttryck. En andra signal som avkänns av NLRP3 resulterar i bildningen av den av flera protein NLRP3 inflamma. Förmågan hos dendritceller att ansvarigtd till de signaler som krävs för IL-1β-utsöndring kan testas med användning av en syntetisk purin, R848, som avkänns av TLR8 i human monocyt-härledda dendritiska celler (moDCs) att prima celler, följt av aktivering av NLRP3 inflamma med bakteriellt toxin och kalium jonofor, nigericin.

Härstammar från monocyter DCs lätt produceras i kultur och ger betydligt fler celler än renade human myeloid DC. Den metod som presenteras här skiljer sig från andra inflamma analyser genom att den använder in vitro människa, i stället för mus härledd, DCs vilket möjliggör studier av inflamma i human sjukdom och infektion.

Introduction

Aktivering av medfödda immunsystemet krävs för att styra adaptiva immunsvaret vid infektion, sjukdom och vaccination 7. Dendritiska celler är de mest potenta antigenpresenterande celler av det medfödda immunsystemet; De är specialiserade för upptag av antigener, migration till lymfkörtlar, och aktivering av naiva CD4 + och cytolytiska CD8 + T-celler 8-10. För att möjliggöra snabb upptäckt patogen det medfödda immunsystemet utnyttjar många könsceller kodad mönsterigenkänningsreceptorer (PRR) som känner igen bevarade patogen härrör motiv eller värd härrör markörer för cell stress och skador. Toll liknande receptorer (TLRs) är membranbundna mönsterigenkännings receptorer som känner igen vissa cellulära fagocytiserade patogener associerade molekylära mönster (PAMPs) och fara molekylära mönster (dämpas). Däremot nicka liknande receptorer (NLRs) är cytosoliskt och svara på en rad olika PAMPs och dämpar. Nicka liknande receptorer relägga fram en andra försvarslinje mot patogener som undgå cellytan och endocytiska PRRs. Interaktionen av patogenen härleds, eller "fara" associerat, faktorer med TLR och NLR ligander leder till ett tillstånd av DC-mognad leder till ökad DC interaktion med andra immunceller och främjande av T-cell-och naturliga mördarcellaktivering 11.

Interleukin-1β är en avgörande komponent i infektionsförsvaret. Vid erkännande av en mikroorganism, den starkt proinflammatoriska cytokiner, IL-1β, utsöndras och fungerar som en cellgifter lockmedel och aktivator av medfödda och adaptiva immunceller. In vivo IL-1β är till stor del ansvarig för den akuta fasen svaret inklusive feber och inflammatoriska cytokiner syntes 12.

De flesta NLRs innehålla en C-terminal leucin-rika upprepningsdomän som är tänkt att fungera i ligand-avkänning, en central nukleo-bindningsdomän (NACHT) som är important för NLRP3 oligomerisering, och en N terminal effector domain (PYD i NLRP3) som medierar signaltransduktion till mål nedströms genom protein-proteininteraktioner. NLRP3 proteinet definierar mest intensivt studerade inflamma komplex. Detta protein är en medlem av NLR familjen och har förmågan att bilda en multi molekylproteinkomplex bestående av NLRP3, adapterprotein PYCARD (även känd som ASC) och is. Vid inflamma aktivering PYCARD binder till NLRP3 N terminalområden och rekryterar ICE via kaspasaktivering och rekryteringsdomän (CARD) domäner. Interleukin-1-omvandlande enzym initialt genererad som en zymogen innehållande en CARD-motivet vid dess N-terminal. Inflammabildning leder föra två ICE molekyler tillräckligt nära för att framkalla deras autokatalytisk aktivering. Det inflamma komplex är nödvändigt för att aktivera ICE vilket gör det möjligt att omvandla cytoplasmatisk pro-IL-1β att mogna cytokin.

Framgångsrik sekretion av IL-1β i utvecklingsländer kräver avkänning av två olika och oberoende varningssignaler. Först TLR avkänning av PAMPs, dämpar, eller cytokin signalering (TNF eller IL-1β) orsakar en uppreglering av cytoplasma pro-IL-1β proteinuttryck. En andra, ofta olika, signalen krävs för inflammakomplexbildning uppströms om ICE mognad. Några inflamma stimulerande signaler inkluderar bakteriella membran porbildande toxiner (t.ex. nigericin), lysosomala störa kristaller (t.ex. mono uratkristaller, MSU) och extracellulärt ATP. Uppströms mekanism som leder till NLRP3 inflamma aktivering av dessa olika aktivatorer är oklart. Studier som undersöker signalerings uppströms av inflammabildning föreslår att intracellulära händelser, såsom induktion av hypokalemi eller reaktiva syreradikaler (ROS) indirekt aktivera inflamma 13-28.

Bland de olika virus aktivatorer av NLRP3 inflamma är influensa, vilket ger bÖvr primär och sekundär signal som krävs för IL-1β sekre 3, 29-33. Använda mus NLRP3 knockout modeller konstaterades det att IL-1β-utsöndring i DCs är NLRP3 beroende 32. Dessutom NLRP3 knockoutmöss lockade färre leukocyter till platsen för infektion och haft en högre dödlighet 2, 5. Två nya tidningarna tyder på en mekanism för NLRP3 inflamma aktivering under influensa virusinfektion; första, primning genom erkännande av viralt RNA genom TLR7 eller TLR8 (beroende på TLR expression av den svarande cell) eller genom avkänning av bakteriefloran genom annan TLRs att inducera cytoplasmatisk pro-IL-1β uttryck, följd av en andra signal, aktivering av NLRP3 inflammabildning genom viral jonkanalsprotein M2 på den trans-Golgi nätverket 33, 34. I det senare steget, utlösning av NLRP3 inflamma åstadkommes genom störning av det intracellulära jonisk <em> miljö som leder till ROS produktion, vilket är, helt enkelt, kände av NLPR3 som en signal för att bilda inflammasome. Emellertid förblir den exakta mekanismen för inflamma aktivering uppströms om ICE-aktivitet under influensainfektion fortfarande oklart.

Detta arbete beskriver en teknik värdefullt för att studera NLRP3 inflamma i mänskliga moDCs som kan användas som en grund för vidare utredning av banan underliggande DC baserat IL-1β sekretion som svar på TLR8 ligation med R848 följt av aktivering av inflamma genom en väl känd aktivator av NLRP3, nigericin. Variationer av denna metod kan användas med andra celltyper, inklusive, men inte begränsat till: monocyter, makrofager, andra DC-undergrupper, och epitelceller.

Protocol

Etik Uttalande: Forskningsprov erhålls och lagras för forskning med givarnas samtycke. Alla prover bör kodas eller anonymiseras före användning. Detta protokoll följer riktlinjerna i vår Institutional Review Board. 1. Differentiering av humana perifera blod Monocyter in Monocyte härledda dendritiska celler. Obs: Mänskliga buffy coats tjäna som källa till humana perifera blodceller (PBMC) och erhölls från New York Blood Center (New York, NY). Blodgivare…

Representative Results

Dessa tekniker mäter TLR8 priming med R848. Intracellulär cytokin färgning för pro-IL-1β tillåter mikroskopi och FACS avläsning från CD14 – CD11c + moDCs. Båda teknikerna kan kvantifieras i förhållande till en icke primade, eller vila, cellkontroll liksom en isotyp kontroll (fig. 1 och 2). Procent av pro-IL-1β + färgningsceller multipliceras med den geometriska symmetri av denna population för att åstadkomma medianfluorescensintensitet (MFI). MFI är jämf…

Discussion

Inflammatoriska cytokiner är integrerad i styrningen av medfödda och adaptiva immunförsvaret att bekämpa virusinfektion. Utsöndrad IL-1β har visats öka under influensainfektion 3, 43, 44. De exakta mekanismerna genom vilka dessa cytokiner bearbetas som svar på viral erkännande i humana dendritiska celler är inte helt klarlagda. Myeloid DC isolering kit är dyrt och tidskrävande. Isolation kit och FAC sortering kan oavsiktligt stress eller aktivera cellerna. Dessutom finns det ofta otillräcklig mä…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka för Olivier Manches, Ph.D., Davor Frleta, Ph.D., och Meagan O'Brien, VD för deras stöd och feedback. Denna forskning stöds av det nationella institutet för allergi och infektionssjukdomar och avslutade med finansiering från NIH bidrag Ruth L. Kirschstein National Research Service Awards för enskilda predoctoral stipendier (F31) för att främja mångfald i Hälsorelaterade forskning (AI089030) och RO1 (AI081848 ).

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
IL-4 R&D
GM-CSF Genzyme NDC 58468-0180-2 We acquire this item through our local pharmacy with a prescription
RPMI 1640 with L-glutamine Cellgro 10-040-CV
Peripheral blood mononuclear cells New York Blood Center PBMCs were isolated from the blood of healthy donors
12-well tissue culture plates Sigma-Aldrich 3516
96-well round bottom tissue culture plates Sigma-Aldrich 3799
α-IL-1β-FITC R&D IC201F
FITC isotype control Miltenyi Biotec 130-092-213
α-β-Tubulin Santa Cruz SC-9014
α-IL-1β R&D mab201
PVDF Immobilon-FL membrane Millipore IPFL00010
gradient 4-12 % polycrylamide gel Bio Rad 161-1159
laemmli sample buffer Bio Rad 161-0737
BSA Equitech Bio Inc 30% solution sterile/filtered
PFA Electron Microscopy Sciences 15710 16% solution
human inflammatory cytokine bead array kit BD 551811
nigericin Invivogen tlrl-nig
R848 3M Corp.
α-CD14 BD 340436
α-CD11c BD 555392
β-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M6250-10ML
TBS On site stock room
Tween-20 Sigma-Aldrich P2287-100mL
Nunc EasYFlask 225cm2, Filter Cap, 70mL working volume, 30/Cs Thermo Scientific 159933
20 μM Sterile Disposable Filter Units Thermo Scientific 569-0020
Gentamicin Invitrogen 15750060
Hepes Invitrogen 15630080
goat α-mouse IRDye 800CW Licor 926-32210
donkey α-rabbit IRDye 680RD Licor 926-68073
Spectra multicolor broad range protein ladder Thermo Scientific 26634
Tris Glycine SDS 10x Bio Rad 1610732
Tris Glycine 10x Bio Rad 161-0734
Methanol – 4L Fisher Scientific A433P-4
Prolong Gold antifade Reagent with DAPI Life Technologies P-36931
8 chamber polystyrene vessel tissue culture treated glass slide BD Falcon 354108
Poly-L-Lysine Sigma P4707

References

  1. Durrant, D. M., Robinette, M. L., & Klein, R. S. IL-1R1 is required for dendritic cell-mediated T cell reactivation within the CNS during West Nile virus encephalitis. The Journal of Experimental Medicine.. 210, 503-516, doi:10.1084/jem.20121897 (2013).
  2. Thomas, P. G. et al. The intracellular sensor NLRP3 mediates key innate and healing responses to influenza A virus via the regulation of caspase-1. Immunity.. 30, 566-575, doi:10.1016/j.immuni.2009.02.006 (2009).
  3. Schmitz, N., Kurrer, M., Bachmann, M. F., & Kopf, M. Interleukin-1 is responsible for acute lung immunopathology but increases survival of respiratory influenza virus infection. Journal of Virology.. 79, 6441-6448, doi:10.1128/JVI.79.10.6441-6448.2005 (2005).
  4. Pang, I. K., Ichinohe, T., & Iwasaki, A. IL-1R signaling in dendritic cells replaces pattern-recognition receptors in promoting CD8(+) T cell responses to influenza A virus. Nat Immunol.. 14, 246-253, doi:10.1038/ni.2514 (2013).
  5. Allen, I. C. et al. The NLRP3 inflammasome mediates in vivo innate immunity to influenza A virus through recognition of viral RNA. Immunity.. 30, 556-565, doi:10.1016/j.immuni.2009.02.005 (2009).
  6. Bauernfeind, F. G. et al. Cutting edge: NF-kappaB activating pattern recognition and cytokine receptors license NLRP3 inflammasome activation by regulating NLRP3 expression. J Immunol.. 183, 787-791, doi:10.4049/jimmunol.0901363 (2009).
  7. Zabel, F., Kundig, T. M., & Bachmann, M. F. Virus-induced humoral immunity: on how B cell responses are initiated. Current Opinion in Virology., doi:10.1016/j.coviro.2013.05.004 (2013).
  8. Steinman, R. M. Lasker Basic Medical Research Award. Dendritic cells: versatile controllers of the immune system. Nature Medicine.. 13, 1155-1159, doi:10.1038/nm1643 (2007).
  9. Bhardwaj, N. et al. Influenza virus-infected dendritic cells stimulate strong proliferative and cytolytic responses from human CD8+ T cells. The Journal of Clinical Investigation.. 94, 797-807, doi:10.1172/JCI117399 (1994).
  10. Sheng, K. C., Day, S., Wright, M. D., Stojanovska, L., & Apostolopoulos, V. Enhanced Dendritic Cell-Mediated Antigen-Specific CD4+ T Cell Responses: IFN-Gamma Aids TLR Stimulation. Journal of Drug Delivery.. 2013, 516749, doi:10.1155/2013/516749 (2013).
  11. Pohl, C., Shishkova, J., & Schneider-Schaulies, S. Viruses and dendritic cells: enemy mine. Cellular Microbiology.. 9, 279-289, doi:Doi 10.1111/J.1462-5822.2006.00863.X (2007).
  12. Dinarello, C. A. Cytokines as mediators in the pathogenesis of septic shock. Curr Top Microbiol Immunol.. 216, 133-165 (1996).
  13. Petrilli, V. et al. Activation of the NALP3 inflammasome is triggered by low intracellular potassium concentration. Cell Death and Differentiation.. 14, 1583-1589, doi:10.1038/sj.cdd.4402195 (2007).
  14. Hussen, J., Duvel, A., Koy, M., & Schuberth, H. J. Inflammasome activation in bovine monocytes by extracellular ATP does not require the purinergic receptor P2X7. Developmental and Comparative Immunology.. 38, 312-320, doi:10.1016/j.dci.2012.06.004 (2012).
  15. Rajamaki, K. et al. Extracellular Acidosis Is a Novel Danger Signal Alerting Innate Immunity via the NLRP3 Inflammasome. The Journal of Biological Chemistry.. 288, 13410-13419, doi:10.1074/jbc.M112.426254 (2013).
  16. Ayna, G. et al. ATP release from dying autophagic cells and their phagocytosis are crucial for inflammasome activation in macrophages. PLoS One 7, e40069, doi:10.1371/journal.pone.0040069 (2012).
  17. Vyleta, M. L., Wong, J., & Magun, B. E. Suppression of ribosomal function triggers innate immune signaling through activation of the NLRP3 inflammasome. PLoS One.. 7, e36044, doi:10.1371/journal.pone.0036044 (2012).
  18. Lacroix-Lamande, S. et al. Downregulation of the Na/K-ATPase pump by leptospiral glycolipoprotein activates the NLRP3 inflammasome. J Immunol.. 188, 2805-2814, doi:10.4049/jimmunol.1101987 (2012).
  19. Segovia, J. et al. TLR2/MyD88/NF-kappaB pathway, reactive oxygen species, potassium efflux activates NLRP3/ASC inflammasome during respiratory syncytial virus infection. PLoS One.. 7, e29695, doi:10.1371/journal.pone.0029695 (2012).
  20. Hamon, M. A., & Cossart, P. K+ efflux is required for histone H3 dephosphorylation by Listeria monocytogenes listeriolysin O and other pore-forming toxins. Infection and Immunity.. 79, 2839-2846, doi:10.1128/IAI.01243-10 (2011).
  21. Schorn, C. et al. Sodium overload and water influx activate the NALP3 inflammasome. The Journal of Biological Chemistry.. 286, 35-41, doi:10.1074/jbc.M110.139048 (2011).
  22. Said-Sadier, N., Padilla, E., Langsley, G., & Ojcius, D. M. Aspergillus fumigatus stimulates the NLRP3 inflammasome through a pathway requiring ROS production and the Syk tyrosine kinase. PLoS One.. 5, e10008, doi:10.1371/journal.pone.0010008 (2010).
  23. Arlehamn, C. S., Petrilli, V., Gross, O., Tschopp, J., & Evans, T. J. The role of potassium in inflammasome activation by bacteria. The Journal of Biological Chemistry.. 285, 10508-10518, doi:10.1074/jbc.M109.067298 (2010).
  24. Chu, J. et al. Cholesterol-dependent cytolysins induce rapid release of mature IL-1beta from murine macrophages in a NLRP3 inflammasome and cathepsin B-dependent manner. Journal of Leukocyte Biology.. 86, 1227-1238, doi:10.1189/jlb.0309164 (2009).
  25. Silverman, W. R. et al. The pannexin 1 channel activates the inflammasome in neurons and astrocytes. The Journal of Biological Chemistry.. 284, 18143-18151, doi:10.1074/jbc.M109.004804 (2009).
  26. Piccini, A. et al. ATP is released by monocytes stimulated with pathogen-sensing receptor ligands and induces IL-1beta and IL-18 secretion in an autocrine way. Proc Natl Acad Sci U S A.. 105, 8067-8072, doi:10.1073/pnas.0709684105 (2008).
  27. Wickliffe, K. E., Leppla, S. H., & Moayeri, M. Anthrax lethal toxin-induced inflammasome formation and caspase-1 activation are late events dependent on ion fluxes and the proteasome. Cellular Microbiology.. 10, 332-343, doi:10.1111/j.1462-5822.2007.01044.x (2008).
  28. Franchi, L., Kanneganti, T. D., Dubyak, G. R., & Nunez, G. Differential requirement of P2X7 receptor and intracellular K+ for caspase-1 activation induced by intracellular and extracellular bacteria. The Journal of Biological Chemistry.. 282, 18810-18818, doi:10.1074/jbc.M610762200 (2007).
  29. Owen, D. M., & Gale, M., Jr. Fighting the flu with inflammasome signaling. Immunity.. 30, 476-478, doi:10.1016/j.immuni.2009.03.011 (2009).
  30. Pang, I. K., & Iwasaki, A. Inflammasomes as mediators of immunity against influenza virus. Trends in Immunology.. 32, 34-41, doi:10.1016/j.it.2010.11.004 (2011).
  31. Kanneganti, T. D. et al. Critical role for Cryopyrin/Nalp3 in activation of caspase-1 in response to viral infection and double-stranded RNA. The Journal of Biological Chemistry.. 281, 36560-36568, doi:10.1074/jbc.M607594200 (2006).
  32. Ichinohe, T., Lee, H. K., Ogura, Y., Flavell, R., & Iwasaki, A. Inflammasome recognition of influenza virus is essential for adaptive immune responses. The Journal of Experimental Medicine.. 206, 79-87, doi:10.1084/jem.20081667 (2009).
  33. Ichinohe, T., Pang, I. K., & Iwasaki, A. Influenza virus activates inflammasomes via its intracellular M2 ion channel. Nat Immunol.. 11, 404-410, doi:10.1038/ni.1861 (2010).
  34. Ichinohe, T. et al. Microbiota regulates immune defense against respiratory tract influenza A virus infection. Proc Natl Acad Sci U S A.. 108, 5354-5359, doi:10.1073/pnas.1019378108 (2011).
  35. O'Neill, D. W., & Bhardwaj, N. Differentiation of peripheral blood monocytes into dendritic cells. Current Protocols in Immunology. Chapter 22, Unit 22F 24, doi:10.1002/0471142735.im22f04s67 (2005).
  36. Sabado, R. L., Miller, E., Spadaccia, M., Vengco, I., Hasan, F., Bhardwaj, N. Preparation of Tumor Antigen-loaded Mature Dendritic Cells for Immunotherapy. J. Vis. Exp. (78), e50085, doi:10.3791/50085 (2013).
  37. Rubartelli, A., Cozzolino, F., Talio, M., & Sitia, R. A novel secretory pathway for interleukin-1 beta, a protein lacking a signal sequence. The EMBO Journal.. 9, 1503-1510 (1990).
  38. Ritchie, H., & Booth, N. A. Secretion of plasminogen activator inhibitor 2 by human peripheral blood monocytes occurs via an endoplasmic reticulum-golgi-independent pathway. Experimental Cell Research.. 242, 439-450, doi:10.1006/excr.1998.4118 (1998).
  39. Lamoreaux, L., Roederer, M., & Koup, R. Intracellular cytokine optimization and standard operating procedure. Nature Protocols.. 1, 1507-1516, doi:10.1038/nprot.2006.268 (2006).
  40. He, H., Courtney, A. N., Wieder, E., Sastry, K. J. Multicolor Flow Cytometry Analyses of Cellular Immune Response in Rhesus Macaques. J Vis Exp.. 38, doi:10.3791/1743 (2010).
  41. Mahmood, T., & Yang, P. C. Western blot: technique, theory, and trouble shooting. North American journal of Medical Sciences.. 4, 429-434, doi:10.4103/1947-2714.100998 (2012).
  42. Alegria-Schaffer, A., Lodge, A., & Vattem, K. Performing and optimizing Western blots with an emphasis on chemiluminescent detection. Methods in Enzymology.. 463, 573-599, doi:10.1016/S0076-6879(09)63033-0 (2009).
  43. Hennet, T., Ziltener, H. J., Frei, K., & Peterhans, E. A kinetic study of immune mediators in the lungs of mice infected with influenza A virus. J Immunol.. 149, 932-939 (1992).
  44. Pirhonen, J., Sareneva, T., Kurimoto, M., Julkunen, I., & Matikainen, S. Virus infection activates IL-1 beta and IL-18 production in human macrophages by a caspase-1-dependent pathway. J Immunol.. 162, 7322-7329 (1999).
  45. Anderson, J., Gustafsson, K., & Himoudi, N. Licensing of killer dendritic cells in mouse and humans: functional similarities between IKDC and human blood gammadelta T-lymphocytes. Journal of Immunotoxicology.. 9, 259-266,doi:10.3109/1547691X.2012.685528 (2012).
  46. Waithman, J., & Mintern, J. D. Dendritic cells and influenza A virus infection. Virulence.. 3, 603-608, doi:10.4161/viru.21864 (2012).
check_url/51284?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fernandez, M. V., Miller, E. A., Bhardwaj, N. Activation and Measurement of NLRP3 Inflammasome Activity Using IL-1β in Human Monocyte-derived Dendritic Cells. J. Vis. Exp. (87), e51284, doi:10.3791/51284 (2014).

View Video