Summary

Blære glatt muskulatur Strip kontraktilitet som en metode for å vurdere de nedre urinveiene Pharmacology

Published: August 18, 2014
doi:

Summary

Dette manuskriptet presenterer en enkel, men kraftig, in vitro metode for å evaluere glatt muskulatur kontraktilitet i respons til farmakologiske midler eller nervestimulering. Viktigste programmene er narkotika screening og forståelse vev fysiologi, farmakologi og patologi.

Abstract

Vi beskriver en in vitro-metode for å måle blære glattmuskel-kontraktilitet, og dens anvendelse for å undersøke fysiologiske og farmakologiske egenskaper av glatt muskulatur, så vel som endringer indusert av patologi. Denne metoden gir viktig informasjon for å forstå blærefunksjonen mens overvinne store metode vanskelighetene i in vivo forsøk, for eksempel kirurgiske og farmakologiske manipulasjoner som påvirker stabiliteten og overlevelse av preparater, anvendelse av humant vev, og / eller bruk av kostbare kjemikalier. Det gir også en metode for å undersøke egenskapene til hver blære komponent (dvs. glatt muskulatur, slimhinner, nerver) hos friske og patologiske tilstander.

Den urinblæren fjernes fra en anestesert dyr, plassert i Krebs-oppløsning og skåret i strimler. Strimler er plassert i et kammer fylt med varmt Krebs-løsning. Den ene enden er festet til en isometrisk tension transduktor for å måle kraft i, er den andre enden er festet til en fast stang. Tissue stimuleres av direkte tilsette forbindelsene til badet eller ved elektrisk feltstimulering elektroder som aktiverer nerver, tilsvarende utløser blærekontraksjoner in vivo. Vi demonstrerer bruken av denne metoden for å vurdere spontan glatt muskel kontraktilitet under utvikling og etter en eksperimentell ryggmargsskade, arten av neurotransmisjon (sendere og reseptorer som er involvert), faktorer som er involvert i modulering av glattmuskel-aktivitet, rollen til individuelle blære komponenter og arter og organ forskjeller i respons til farmakologiske midler. I tillegg kan det bli brukt for å undersøke intracellulære måter med sammentrekning og / eller relaksasjon av glatt muskulatur, legemiddel struktur-aktivitetsrelasjoner og evaluering av transmitterfrigjørelse.

Den in vitro glatt muskulatur kontraktilitet metoden har vært brukt i stor utstrekning for over 50 år, og har gitt data som i betydelig grad bidratt til vår forståelse av blærefunksjon samt farmasøytisk utvikling av forbindelser som brukes i dag klinisk for blære ledelse.

Introduction

Blæren glatt muskulatur slapper å tillate urin oppbevaring, og kontrakter for å lokke fram urin eliminasjon. Avslapping er mediert av iboende glatte muskelceller eiendommene og tonic frigjøring av noradrenalin (NE) fra sympatiske nerver, som aktiverer beta adrenerge reseptorer (β 3 AR i menneskelig) i detrusor. Ugyldig oppnås ved inhibering av sympatisk inngang og aktivering av de parasympatiske nerver som frigjør ACh / ATP for å trekke sammen glatt muskulatur i urinblæren 1. Mange patologiske tilstander, inkludert hjernen og / eller ryggmargsskade, nevrodegenerative sykdommer, diabetes, blære obstruksjon eller interstitiell cystitt, kan dypt endre blærefunksjon, med alvorlig innvirkning på pasientens livskvalitet to. Disse forholdene endrer kontraktilitet av glatt muskulatur ved å påvirke en eller flere komponenter i blæren: glatt muskulatur, de afferente og efferente nerver og / ellermucosa.

Flere in vivo-og in vitro metoder for å studere blærefunksjonen er blitt utviklet. In vivo har cystometry den primære måling av blærefunksjonen. Selv om dette er et intakt preparat som tillater samling av informasjon i henhold til nær fysiologiske betingelser, er det en rekke forhold der bruk av glatte muskelstrimler er foretrukket. Disse inkluderer situasjoner når kirurgisk og / eller farmakologiske manipulasjoner vil påvirke overlevelse og stabiliteten in vivo preparatet, eller når de studier som krever bruk av menneskelig vev eller dyre kjemikalier. Denne fremgangsmåte muliggjør også en undersøkelse av virkningen av narkotika, alder og patologi på hver komponent av blæren, dvs. glatt muskulatur, slimhinner, afferente og efferente nerver.

Blære strimler har vært ansatt gjennom årene av mange grupper for å svare på en rekke vitenskapelige spørsmål. De ble brukt til å evaluate endringer i myogenic spontan aktivitet indusert av patologi. Denne aktiviteten antas å bidra til at det haster og frekvens symptomer på overaktiv blære (OAB), og er derfor et mål for legemidler under utvikling for OAB 3-9. Blære strimler ble også brukt til å undersøke myogeniske og nevrale faktorer som modulerer glatt muskel tone med sikte på å avdekke ionekanaler og / eller reseptorer og / eller intracellulære trasé som kan være målrettet for å indusere enten avslapning eller sammentrekning av glatt muskulatur 3,10- 13. Andre studier har fokusert på natur nevrotransmisjon, inkludert sendere og reseptorer involvert og endringer indusert av patologi 14,15. I tillegg har fremgangsmåten vært brukt til sammenligninger mellom vev fra forskjellige arter 16- 18, mellom organene 19 til 21, og evaluering av medikament struktur-aktivitetsrelasjoner 22-24. En utvidelse av denne metoden har blitt brukt til og å målee det effekten av narkotika på senderen utgivelse fra efferente nerver 25. Videre er en rekke forskjellige vev (blære, urinrør, mage-tarmkanalen, GI) høstes fra dyr eller mennesker (fra operasjoner eller organ donorvev godkjent for forskning) og fra en rekke forskjellige dyremodeller, inkludert ryggmargsskade (SCI), blæreutløpsobstruksjon (BOO), eller interstitiell cystitt (IC) kan undersøkes ved hjelp av denne teknikk.

I dette dokumentet vil vi illustrere bruken av denne metoden sammen med nødvendige eksperimentelle protokoller, for å ta opp flere vitenskapelige spørsmål som er nevnt ovenfor.

Protocol

Alle prosedyrene som er beskrevet her er godkjent av IACUC komiteen ved University of Pittsburgh. 1. Solutions Forbered Krebs-løsning i henhold til oppskriften. Sammensetning i mm: NaCl 118, KCl 4,7, CaCl 2 1.9, MgSO 4 1.2, NaHCO3 24.9, KH 2 PO 4 1.2, druesukker 11.7. Luft Krebs med 95% O 2, 5% CO 2 og legg den i en 37 º C vannbad som skal brukes gjennom hele forsøket. Sett bort ~ 200 ml oksy…

Representative Results

Spontan myogenic aktivitet Spontan myogenic aktivitet er en viktig glatt muskulatur kjennetegn som gjennomgår endringer med postnatal utvikling 6-9 og patologi (f.eks, SCI, BOO) 3-5. Fordi denne aktiviteten er antatt å bidra til de symptomer på overaktiv blære (OAB) 2, er en evaluering av intracellulære reseptorer, stier og farmakologiske midler som modulerer den, av stor interesse for å utvikle effektive behandlinger for OAB o…

Discussion

I denne artikkelen beskrives vi en enkel in vitro glatt muskulatur kontraktilitet metode som kan brukes til å adressere en rekke viktige vitenskapelige spørsmål relatert til blæren fysiologi og patologi, samt å behjelpe oppdagelsen av nye medikamenter for å behandle blære-dysfunksjoner. Vi har vist at bruken av denne metoden for å vurdere utviklings, patologiske og farmakologiske egenskaper av blæreglattmuskel-kontraktilitet (figurene 2-4), neurotransmisjon modulering (fig 5-7A…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av NIH R37 DK54824 og R01 DK57284 tilskudd til LB.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Equipment
Tissue Bath System with Reservoir Radnoti, LLC 159920 isolated tissue baths
Warm water recirculator pump Kent Scientific Corporation  TPZ-749 to keep tissue baths to 37 C
Computer
Data Acquisiton System DataQ Instruments DI-710-UH To view, record and analyze data
Transbridge Transducer Amplifier World Precision Instruments SYS-TBM4M Transducer amplifier
Grass stimulator Grass Technologies Model S88 Stimulator
Anesthesia System Kent Scientific Corporation  ACV-1205S To anesthetesize the animal
Anesthetizing Box Harvard Apparatus 500116 To anesthetesize the animal
Anesthesia Masks Kent Scientific Corporation  AC-09508 To anesthetesize the animal
Materials and surgical instruments
sylgard Dow Corning Corp 184 SIL ELAST KIT To pin, dissect & cut tissue
Petri Dish Corning 3160-152 To dissect/cut tissue
Insect Pins ENTOMORAVIA Austerlitz Insect Pins Size 5 To pin tissue
Bench Pad VWR International 56617-014 Absorbent bench underpads
Rat surgical Kit Kent Scientific Corporation  INSRATKIT To remove and dissect tissue
2 Dumont #3 Forceps Kent Scientific Corporation  INS500064 To remove and dissect tissue
Tissue Forceps Kent Scientific Corporation  INS500092 To remove and dissect tissue
Scalpel Kent Scientific Corporation  INS500236 To remove and dissect tissue
Scalpel blade Kent Scientific Corporation  INS500239 To remove and dissect tissue
Professional Clipper  Braintree Scientific, Inc. CLP-223 45 To remove fur
Suture Thread Fine Science Tools 18020-50 Tie tissue
Tissue Clips Radnoti, LLC 158802 Attach tissue to rod/transducer
1g weight  Mettler Toledo 11119525 For transducer calibration
Chemicals
Krebs Solution:                             Sodium Chloride
Potassium Chloride
Monobasic Potassium Phosphate
Magnesium Sulfate
Dextrose
Sodium Bicarbonate
Calcium Chloride
Magnesium Chloride
Sigma                                   
Fisher
Fisher
Fisher
Fisher
Sigma
EMD
Baker
                                S7653
P217-500
P285-3
M65-500
D16-500
S5761
CX0130-2
2444
To prepare Krebs solution
Isoflurane Henry Schein 029405 To anesthetesize the animal
 Oxygen tank Matheson Tri Gas ox251 To use with anesthesia system
Carbogen Tank (95% Oxygen; 5% Carbon Dioxide)  Matheson Tri Gas Moxn00hn36D To aerate Krebs solutions

References

  1. Fowler, C. J., Griffiths, D., de Groat, W. C. The neural control of micturition. Nat Rev Neurosci. 9, 453-466 (2008).
  2. Andersson, K. E. Detrusor myocyte activity and afferent signaling. Neurourol Urodyn. 29, 97-106 (2010).
  3. Artim, D. E., et al. Developmental and spinal cord injury-induced changes in nitric oxide-mediated inhibition in rat urinary bladder. Neurourology and urodynamics. 30, 1666-1674 (2011).
  4. Kita, M., et al. Effects of bladder outlet obstruction on properties of Ca2+-activated K+ channels in rat bladder. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 298, 1310-1319 (2010).
  5. Barendrecht, M. M., et al. The effect of bladder outlet obstruction on alpha1- and beta-adrenoceptor expression and function. Neurourol Urodyn. 28, 349-355 (2009).
  6. Maggi, C. A., Santicioli, P., Meli, A. Postnatal development of myogenic contractile activity and excitatory innervation of rat urinary bladder. The American journal of physiology. 247, 972-978 (1984).
  7. Ng, Y. K., de Groat, W. C., Wu, H. Y. Smooth muscle and neural mechanisms contributing to the downregulation of neonatal rat spontaneous bladder contractions during postnatal development. American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology. 292, 2100-2112 (2007).
  8. Szell, E. A., Somogyi, G. T., de Groat, W. C., Szigeti, G. P. Developmental changes in spontaneous smooth muscle activity in the neonatal rat urinary bladder. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 285, 809-816 (2003).
  9. Szigeti, G. P., Somogyi, G. T., Csernoch, L., Szell, E. A. Age-dependence of the spontaneous activity of the rat urinary bladder. J Muscle Res Cell Motil. 26, 23-29 (2005).
  10. Frazier, E. P., Braverman, A. S., Peters, S. L., Michel, M. C., Ruggieri, M. R. Does phospholipase C mediate muscarinic receptor-induced rat urinary bladder contraction. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics. 322, 998-1002 (2007).
  11. Xin, W., Soder, R. P., Cheng, Q., Rovner, E. S., Petkov, G. V. Selective inhibition of phosphodiesterase 1 relaxes urinary bladder smooth muscle: role for ryanodine receptor-mediated BK channel activation. American journal of physiology. Cell physiology. 303, 1079-1089 (2012).
  12. Frazier, E. P., Peters, S. L., Braverman, A. S., Ruggieri, M. R., Michel, M. C. Signal transduction underlying the control of urinary bladder smooth muscle tone by muscarinic receptors and beta-adrenoceptors. Naunyn-Schmiedeberg’s archives of pharmacology. 377, 449-462 (2008).
  13. Svalo, J., et al. The novel beta3-adrenoceptor agonist mirabegron reduces carbachol-induced contractile activity in detrusor tissue from patients with bladder outflow obstruction with or without detrusor overactivity. European journal of pharmacology. 699, 101-105 (2013).
  14. Yokota, T., Yamaguchi, O. Changes in cholinergic and purinergic neurotransmission in pathologic bladder of chronic spinal rabbit. J Urol. 156, 1862-1866 (1996).
  15. Bayliss, M., Wu, C., Newgreen, D., Mundy, A. R., Fry, C. H. A quantitative study of atropine-resistant contractile responses in human detrusor smooth muscle, from stable, unstable and obstructed bladders. J Urol. 162, 1833-1839 (1999).
  16. Kullmann, F. A., McKenna, D., Wells, G. I., Thor, K. B. Functional bombesin receptors in urinary tract of rats and human but not of pigs and mice, an in vitro study. Neuropeptides. 47, 305-313 (2013).
  17. Sadananda, P., Kao, F. C., Liu, L., Mansfield, K. J., Burcher, E. Acid and stretch, but not capsaicin, are effective stimuli for ATP release in the porcine bladder mucosa: Are ASIC and TRPV1 receptors involved. European journal of pharmacology. 683, 252-259 (2012).
  18. Maggi, C. A., et al. Species-related variations in the effects of capsaicin on urinary bladder functions: relation to bladder content of substance P-like immunoreactivity. Naunyn-Schmiedeberg’s archives of pharmacology. 336, 546-555 (1987).
  19. Kullmann, F. A., et al. Effects of the 5-HT4 receptor agonist, cisapride, on neuronally evoked responses in human bladder, urethra, and ileum. Autonomic neuroscience : basic & clinical. 176, 70-77 (2013).
  20. Warner, F. J., Miller, R. C., Burcher, E. Human tachykinin NK2 receptor: a comparative study of the colon and urinary bladder. Clin Exp Pharmacol Physiol. 30, 632-639 (2003).
  21. Zoubek, J., Somogyi, G. T., De Groat, W. C. A comparison of inhibitory effects of neuropeptide Y on rat urinary bladder, urethra, and vas deferens. The American journal of physiology. 265, 537-543 (1993).
  22. Warner, F. J., Miller, R. C., Burcher, E. Structure-activity relationship of neurokinin A(4-10) at the human tachykinin NK(2) receptor: the effect of amino acid substitutions on receptor affinity and function. Biochem Pharmacol. 63, 2181-2186 (2002).
  23. Warner, F. J., Mack, P., Comis, A., Miller, R. C., Burcher, E. Structure-activity relationships of neurokinin A (4-10) at the human tachykinin NK(2) receptor: the role of natural residues and their chirality. Biochem Pharmacol. 61, 55-60 (2001).
  24. Dion, S., et al. Structure-activity study of neurokinins: antagonists for the neurokinin-2 receptor. Pharmacology. 41, 184-194 (1990).
  25. Somogyi, G. T., Zernova, G. V., Yoshiyama, M., Yamamoto, T., de Groat, W. C. Frequency dependence of muscarinic facilitation of transmitter release in urinary bladder strips from neurally intact or chronic spinal cord transected rats. British journal of pharmacology. 125, 241-246 (1998).
  26. Andersson, K. E., Wein, A. J. Pharmacology of the lower urinary tract: basis for current and future treatments of urinary incontinence. Pharmacological reviews. 56, 581-631 (2004).
  27. D’Agostino, G., Condino, A. M., Gallinari, P., Franceschetti, G. P., Tonini, M. Characterization of prejunctional serotonin receptors modulating [3H]acetylcholine release in the human detrusor. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics. 316, 129-135 (2006).
  28. Hawthorn, M. H., Chapple, C. R., Cock, M., Chess-Williams, R. Urothelium-derived inhibitory factor(s) influences on detrusor muscle contractility in vitro. British journal of pharmacology. 129, 416-419 (2000).
  29. Chaiyaprasithi, B., Mang, C. F., Kilbinger, H., Hohenfellner, M. Inhibition of human detrusor contraction by a urothelium derived factor. J Urol. 170, 1897-1900 (2003).
  30. Testa, R., et al. Effect of different 5-hydroxytryptamine receptor subtype antagonists on the micturition reflex in rats. BJU international. 87, 256-264 (2001).
  31. Craggs, M. D., Rushton, D. N., Stephenson, J. D. A putative non-cholinergic mechanism in urinary bladders of New but not Old World primates. J Urol. 136, 1348-1350 (1986).
  32. Fry, C. H., Bayliss, M., Young, J. S., Hussain, M. Influence of age and bladder dysfunction on the contractile properties of isolated human detrusor smooth muscle. BJU international. 108, 91-96 (2011).
  33. Kennedy, C., Tasker, P. N., Gallacher, G., Westfall, T. D. Identification of atropine- and P2X1 receptor antagonist-resistant, neurogenic contractions of the urinary bladder. The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience. 27, 845-851 (2007).
  34. Levin, R. M., Danek, M., Whitbeck, C., Haugaard, N. Effect of ethanol on the response of the rat urinary bladder to in vitro ischemia: protective effect of alpha-lipoic acid. Molecular and cellular biochemistry. 271, 133-138 (2005).
  35. Malysz, J., Afeli, S. A., Provence, A., Petkov, G. V. Ethanol-mediated relaxation of guinea pig urinary bladder smooth muscle: Involvement of BK and L-type Ca2+ channels. American journal of physiology. Cell physiology. 306, 45-58 (2013).
  36. Longhurst, P. A., Briscoe, J. A., Rosenberg, D. J., Leggett, R. E. The role of cyclic nucleotides in guinea-pig bladder contractility. British journal of pharmacology. 121, 1665-1672 (1997).
  37. Takahashi, R., Yunoki, T., Naito, S., Yoshimura, N. Differential effects of botulinum neurotoxin A on bladder contractile responses to activation of efferent nerves, smooth muscles and afferent nerves in rats. J Urol. 188, 1993-1999 (2012).
  38. Sadananda, P., Chess-Williams, R., Burcher, E. Contractile properties of the pig bladder mucosa in response to neurokinin A: a role for myofibroblasts. British journal of pharmacology. 153, 1465-1473 (2008).
  39. Liu, G., Daneshgari, F. Alterations in neurogenically mediated contractile responses of urinary bladder in rats with diabetes. American journal of physiology. Renal physiology. 288, 1220-1226 (2005).
check_url/51807?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kullmann, F. A., Daugherty, S. L., de Groat, W. C., Birder, L. A. Bladder Smooth Muscle Strip Contractility as a Method to Evaluate Lower Urinary Tract Pharmacology. J. Vis. Exp. (90), e51807, doi:10.3791/51807 (2014).

View Video