Summary

طرائق لتقييم السمسة والمناعة من احتراق التبغ الاستعدادات المنتج

Published: January 10, 2015
doi:

Summary

Using optimized human peripheral blood mononuclear cell (PBMC) ex vivo assays, we showed that a combustible tobacco product preparation markedly suppresses receptor-mediated intracellularly secreted cytokines and cytolytic ability of effector PBMCs. These rapid assays may be useful in product evaluation and understanding the potential long-term effects of tobacco exposure.

Abstract

ومن بين التغييرات الفيزيولوجية المرضية الأخرى، والتعرض المزمن لدخان السجائر يسبب التهاب وقمع المناعي، والتي تم ربطها إلى زيادة التعرض للمدخنين للعدوى الميكروبية وحدوث الأورام. خارج الحي قمع الردود بوساطة مستقبلات المناعة في خلايا الدم وحيدات النوى الطرفية البشرية (PBMCs) تعامل مع مكونات الدخان هو نهج جذابة لدراسة آليات وتقييم الآثار المحتملة على المدى الطويل من التعرض لمنتجات التبغ. هنا، نحن الأمثل طرق لأداء خارج الحي المقايسات باستخدام PBMCs تحفزها lipopolysaccharide في البكتيري، وتول مثل مستقبلات 4 يجند. آثار كله المتوسطة مكيفة الدخان (WS-CM)، وقد تم التحقيق لإعداد منتجات التبغ قابل للاحتراق (TPP)، والنيكوتين على إفراز خلوى وقتل الخلية المستهدفة من قبل PBMCs في المقايسات فيفو السابقين. وتبين لنا أن السيتوكينات يفرز IFN-γ، TNF، IL-10، IL-6، وIL-8 والسيتوكينات داخل الخلايا IFN-قمعت 47 ؛، TNF-α، وMIP-1α في PBMCs WS-CM يتعرض. تم تخفيض وظيفة لحل الخلايا من PBMCs المستجيب، على النحو الذي يحدده مقايسة قتل الخلية المستهدفة K562 أيضا عن التعرض لWS-CM. كان النيكوتين الحد الأدنى من الفعالية في هذه المقايسات. وباختصار، فإننا نقدم مجموعة من تحسين فحوصات لتقييم آثار TPPs في المقايسات فيفو السابقين، وهذه الطرق يمكن تكييفه بسهولة لاختبار المنتجات الأخرى ذات الاهتمام.

Introduction

مجموعة كبيرة من نقاط المعرفة إلى الآثار الصحية السلبية للتدخين السجائر المزمنة، بما في ذلك أمراض القلب والأوعية الدموية، ومرض الانسداد الرئوي المزمن (COPD) وسرطان 1،2. وقد عرفت تدخين السجائر المزمنة أن تسبب الالتهاب وقمع المناعي، ويتم الإبلاغ عن هذه التعديلات للمساهمة في زيادة خطر العدوى الميكروبية والسرطان لدى المدخنين 3. في المختبر وتقنيات فيفو السابقين مفيدة في توضيح الأساس الجزيئي للآثار المرضية في جسم المريض ل يتم الاعتراف دخان السجائر 4-9 (الجدول 1)، وكأدوات هامة لتوجيه التنظيم الناشئة من منتجات التبغ المختلفة 10،11.

على سبيل المثال، لقد أثبتنا أن الاستعدادات القابلة للاحتراق منتجات التبغ (TPPs) مثل كله المتوسطة مكيفة الدخان (WS-CM) ومجموع الجسيمات (TPM) هي أكثر بكثير السامة للخلايا والضارة لDNA من TPPs غير قابلة للاحتراق أو النيكوتين 12،13. وتمشيا مع الأعمال المنشورة، أفيد مؤخرا أن TPPs قابل للاحتراق أو النيكوتين 12،13. وتمشيا مع الأعمال المنشورة، ونحن ذكرت مؤخرا ان TPPs احتراق تسبب المناعة ملحوظ. ومما يدل على ذلك عن طريق قمع النابعة مثل مستقبلات (TLR) -ligands، حفز إفراز السيتوكينات، واستهدفت خلية (K562) قتل من قبل PBMCs في نموذج خارج الحي 14. ونظرا لأهمية التهاب في السجائر عمليات المرض التي يسببها الدخان، ويرد مزيد من التحسين من الظروف فحص لتقييم الآثار تغييري المناعية للدخان السجائر في هذا التقرير.

وخارج الحي فحوصات قياس عادة داخل الخلايا ويفرز السيتوكينات فضلا عن وظيفة لحل الخلايا السامة للخلايا T والخلايا القاتلة الطبيعية في الخلية K562 مما أسفر عن مقتل 14 المقايسات. المقايسات تضمنت ما قبل الحضانة مع WS-CM والنيكوتين والتحفيز لاحق من PBMCالصورة مع TLR منبهات على مدى 3 أيام؛ يتم تنفيذ قراءات النهائية باستخدام فحوصات انزيم مرتبط المناعي (ELISAs) و / أو التدفق الخلوي. نحن تستخدم lipopolysaccharide في البكتيري (LPS)، والتي تربط لمستقبلات TLR-4 ويحفز PBMCs مما أدى إلى إنتاج السيتوكينات داخل الخلايا وإفراز السيتوكينات. بالإضافة إلى تعظيم الاستفادة من مختلف خطوات الفحص لتقييم الآثار المناعية للTPPs، ونحن أيضا الأساليب الحالية لعزل PBMCs، المقايسات موت الخلايا، وIL-8 الكمي. ويمكن تطبيق هذه الأساليب لمعالجة المسائل البحثية الأخرى ومزيد من الصقل لتقييم منتجات التبغ في سياق تنظيمي.

الجدول 1. نشرت تقارير في المختبر، وبحكم فيفو طرق تستخدم لدراسة varilus الآثار المرضية في جسم المريض من الاستعدادات منتجات التبغ CS، ودخان السجائر المتوسطة؛ CSC، دخان السجائر المكثفات. CSE، والسجائر استخراج الدخان. ELISA، انزيم مرتبط المناعي فحص. GADPH، غليسيرألدهيد نازعة 3-الفوسفات. QPCR، الكمي تفاعل البلمرة المتسلسل. RT، في الوقت الحقيقي البلمرة المتسلسل الكمي التفاعل؛ TS، دخان التبغ.

المؤلف (سنة الدراسة) LAAN وآخرون (2004) مودي وآخرون (2004) أولتمان وآخرون (2005) Vayssier (1998) Witherden وآخرون (2004) Birrell وآخرون (2008)
الخلايا المستخدمة خلايا البطانة الشعب الهوائية الإنسان (BEAS-2B)، العدلات الإنسان الخلايا الظهارية السنخية الإنسان (A549) الهوائية السلس خلايا العضلات الإنسان (HASMC) خلايا U937 premonocytic الإنسان، وحيدات الإنسان نوع السنخية II الخلايا الظهارية (ATII) وحيدي البشريخط الخلية (THP-1)، الضامة رئة الإنسان
TPP المستخدمة CSE CSC CSE TS CSE CS
الطريقة المستخدمة ELISA، QPCR، والهجرة، والتحول electromobility Immunohisto الكيمياء، الكهربي، مجموعة Arrayscan، RT-PCR، ELISA ELISA، RT-PCR، QPCR، الكهربي تحول جل التنقل المجهر الضوئي، المجهر الإلكتروني، الكهربي، ELISA QPCR، ELISA، طقم-toxate E (سيغما)، لوحة P65 فحص (TransAM)، الكهربي، ومختلف مجموعات المناعية
قياس IL-8، GM-CF، AP-1، NF كيلوبايت، والهجرة acetyltransferases هيستون، deacetylases هيستون، NF كيلوبايت، IL-8، بي كيلوبايت-α، GADPH HO-1، GADPH، RANTES، IL-8، eotaxin حرارة بروتينات الصدمة / الإجهاد (HSP / HSP70)، HF عامل النسخ، NF كيلوبايت،TNF-α بروتين بالسطح (SP-A، SP-C)، IL-8، MCP-1، GRO-α، TNF-α، IL-1β، IFN-γ IL-8، IL-1β، IL-6، TNF-α، MIP1-α، GRO-α، MAPK / JNK / ERK الفسفرة، cJUN: الحمض النووي ملزمة، الجلوتاثيون، P65: الحمض النووي ملزمة
النتيجة النهائية CSE أسفل ينظم إنتاج السيتوكينات عبر قمع AP-1 التنشيط. H 2 O 2 و CSC تعزيز أستلة من البروتينات هيستون، وانخفاض النشاط deacetylase هيستون، تفاضلي تنظيم الإفراج proinflammatory سايتوكاين. قد يسبب دخان السجائر إطلاق سراح IL-8 من HASMC، تتعزز TNF-α، و 20٪ CSE أقل IL-8 الإفراج عنهم، تثبيط eotaxin وRANTES بدخان السجائر. TS تنشيط عامل HF النسخ، والذي كان مرتبطا مع HSP70 overexpression وتثبيط NFkB النشاط وإطلاق TNF-α ملزمة. انخفاض ATII مستويات chemokine المستمدة من خلية وسطا alveoإصلاح لار، والمساهمة في السجائر التي يسببها الدخان ضرر السنخية وانتفاخ الرئة. توفر البيانات تفسير الآلية لماذا زادت المدخنين التهابات الجهاز التنفسي. ويرافق قمع الاستجابة الفطرية زيادة في IL-8.

Protocol

تم الحصول على موافقة خطية مطلعة أن تفعل هذه الدراسة في وحدة الأبحاث السريرية المحلية في ظل موافقة IRB، في الممارسات السريرية الجيدة: ملاحظة. تجهيز الدم، يتم تنفيذ عزل PBMCs وغيرها من تجارب زراعة الخلايا تحت ظروف معقمة، وذلك باستخدام إمدادات معقمة الميكروبيولوجية والكوا…

Representative Results

وعرضت النتائج على النحو يعني الخطأ ± المعياري للمتوسط ​​(أربع عينات المانحة). تم إجراء اختبار t الطالب بين عينات مراقبة المعالجة وغير المعالجة باستخدام برنامج إكسل وكذلك مقارنات اختبار t لجميع العلاجات مع الضوابط المقابلة الخاصة بهم. وأشار إلى الأهمية الإحصائية عن ?…

Discussion

نحن وآخرون قد أظهرت في وقت سابق ان علاج PBMCs مع TPPs يقمع عدة ردود، بما في ذلك التعبير وإفراز السيتوكينات وتدابير وظيفية مثل قتل الخلية المستهدفة 14. الطرق التجريبية وصفها في الأعمال السابقة تتطلب فترات حضانة أطول وكانت متواضعة في حجم 14. وبالنظر إلى التطبيقات …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويتم تمويل هذا العمل من قبل RJ شركة التبغ رينولدز (RJRT) بموجب اتفاق البحوث التعاونية مع جامعة ويك فوريست مدرسة الطب. GL براساد هو موظف بدوام كامل من RJRT.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
12 X 75 tubes BD Falcon 352058
15 ml conical tubes Corning 430790
2 mL Microtubes Axygen MCT-150-C-S
3R4F reference cigarettes   Univ. of Kentucky, College of Agriculture 3R4F
50 ml conical tubes Corning 430828
500 ml bottle Corning 430282
7AAD BD Pharmingen 559925
96 well flat bottom plate Termo Nunc 439454
96 well round bottom plates BD Falcon 353077
Cell culture hood Thermo Scientific 1300 Series A2
Centrifuge Eppendorf 58110R
CFSE Molecular Probes Life Technologies C34554
Cluster tubes Corning 4401 Harmful if swallowed, carcinogen
Cytofix/Cytoperm (Permwash) BD Biosciences 555028 Flammable
DMSO (Dimethyl sulfoxide ) Sigma-Aldrich D8418
DPBS Lonza 17-512F
FBS Sigma-Aldrich F2442
FCAP Array BD Biosciences 652099 Software analyzes CBA data
Filter unit Nalgene 156-4020
Flow Cytometer BD Biosciences FACS Canto II  8 colors, at Ex 405 and Em785.
Flow Cytometer BD Biosciences FACS Calibur  4 colors at Ex 495 and Em 785.
Flow cytometry analysis software Tree Star FlowJo
Freezing Container Nalgene 5100-0001 Contains DMSO,  irritant
GogliPlug BD Biosciences 555029 Carcinogen, Irritant, Corrosive 
H2SO4 Sigma-Aldrich 339741
Human Inflammatory Cytokine Kit BD Biosciences 551811
IFN-γ V-500 Antibody BD Horizon 561980  skin sensitizer
IL-8 ELISA Kit R and D Systems DY208
Isolation Buffer Isolymph, CTL Scientific Corp. 1114868 Flammable liquid, Irritant 
Isopropyl alcohol Sigma-Aldrich W292907
L-Glutamine Gibco Life Technologies 25030-081
LPS Sigma-Aldrich L2630
MIP1-α PE Antibody BD Pharmingen 554730 Acute toxicity, Oral
Monensin Sigma-Aldrich M5273
NaCl Sigma-Aldrich S7653
Nicotine Sigma-Aldrich N3876 Acute toxicity, Environmental hazard
Parafilm Bemis “M”
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148 Flammable, Skin irritation 
Pen/strep Gibco Life Technologies 15140-122
RPMI 1640 Gibco Life Technologies 11875-093
Running buffer MACS Running Buffer, Miltenyi Biotech 130-091-221
Th1/Th2 CBA Kit BD Biosciences 551809
TNF-α Alexa Fluor 488 Antibody BioLegend 502915
Transfer pipette Fisher Scientific 13-711-20
Tris Base Sigma-Aldrich T1503

References

  1. . . How Tobacco Smoke Causes Disease: The Biology and Behavioral Basis for Smoking-Attributable Disease, A Report of the Surgeon General. , (2010).
  2. Zeller, M., Hatsukami, D. The Strategic Dialogue on Tobacco Harm Reduction: a vision and blueprint for action in the US. Tob. Control. 18, 324-332 (2009).
  3. Sopori, M. Effects of cigarette smoke on the immune system. Nature Reviews Immunology. 2, 372-377 (2002).
  4. Birrell, M. A., Wong, S., Catley, M. C., Belvisi, M. G. Impact of tobacco-smoke on key signaling pathways in the innate immune response in lung macrophages. J. Cell Physiol. 214, 27-37 (2008).
  5. Laan, M., Bozinovski, S., Anderson, G. P. Cigarette smoke inhibits lipopolysaccharide-induced production of inflammatory cytokines by suppressing the activation of activator protein-1 in bronchial epithelial cells. J. Immunol. 173, 4164-4170 (2004).
  6. Moodie, F. M., et al. Oxidative stress and cigarette smoke alter chromatin remodeling but differentially regulate NF-kappaB activation and proinflammatory cytokine release in alveolar epithelial cells. Faseb J. 18, 1897-1899 (2004).
  7. Oltmanns, U., Chung, K. F., Walters, M., John, M., Mitchell, J. A. Cigarette smoke induces IL-8, but inhibits eotaxin and RANTES release from airway smooth muscle. Respir. Res. 6, 74 (2005).
  8. Vayssier, M., Favatier, F., Pinot, F., Bachelet, M., Polla, B. S. Tobacco smoke induces coordinate activation of HSF and inhibition of NFkappaB in human monocytes: effects on TNFalpha release. Biochem. Biophys. Res. Commun. 252, 249-256 (1998).
  9. Witherden, I. R., Vanden Bon, E. J., Goldstraw, P., Ratcliffe, C., Pastorino, U., Tetley, T. D. Primary human alveolar type II epithelial cell chemokine release: effects of cigarette smoke and neutrophil elastase. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 30, 500-509 (2004).
  10. Hatsukami, D. K., Biener, L., Leischow, S. J., Zeller, M. R. Tobacco and nicotine product testing. Nicotine Tob. Res. 14, 7-17 (2012).
  11. Ashley, D. L., Backinger, C. L., van Bemmel, D. M., Neveleff, D. J. Tobacco Regulatory Science: Research to Inform Regulatory Action at the Food and Drug Administration’s Center for Tobacco Products. Nicotine Tob. Res. , (2014).
  12. Arimilli, S., Damratoski, B. E., Bombick, B., Borgerding, M. F., Prasad, G. L. Evaluation of cytotoxicity of different tobacco product preparations. Regul. Toxicol. Pharmacol. 64, 350-360 (2012).
  13. Gao, H., Prasad, G. L., Zacharias, W. Differential cell-specific cytotoxic responses of oral cavity cells to tobacco preparations. Toxicol In Vitro. , (2012).
  14. Arimilli, S., Damratoski, B. E., Prasad, G. L. Combustible and non-combustible tobacco product preparations differentially regulate human peripheral blood mononuclear cell functions. Toxicol. In Vitro. 27, 1992-2004 (2013).
  15. Arimilli, S., Damratoski, B. E., Chen, P., Jones, B. A., Prasad, G. L. Rapid isolation of leukocyte subsets from fresh and cryopreserved peripheral blood mononuclear cells in clinical research. Cryo Letters. 33, 376-384 (2012).
  16. Schmid, I., Krall, W. J., Uittenbogaart, C. H., Braun, J., Giorgi, J. V. Dead cell discrimination with 7-amino-actinomycin D in combination with dual color immunofluorescence in single laser flow cytometry. Cytometry. 13, 204-208 (1992).
  17. Kim, G. G., Donnenberg, V. S., Donnenberg, A. D., Gooding, W., Whiteside, T. L. A novel multiparametric flow cytometry-based cytotoxicity assay simultaneously immunophenotypes effector cells: comparisons to a 4 h 51Cr-release assay. J. Immunol. Methods. 325, 51-66 (2007).
  18. Taga, K., Yamauchi, A., Kabashima, K., Bloom, E. T., Muller, J., Tosato, G. Target-induced death by apoptosis in human lymphokine-activated natural killer cells. Blood. 87, 2411-2418 (1996).
check_url/52351?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Arimilli, S., Damratoski, B. E., G.L., P. Methods to Evaluate Cytotoxicity and Immunosuppression of Combustible Tobacco Product Preparations. J. Vis. Exp. (95), e52351, doi:10.3791/52351 (2015).

View Video