Summary

Imagen Ca Local<sup> 2 +</sup> Las señales en las células de mamífero en cultivo

Published: March 03, 2015
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Summary

Here we present techniques for imaging local IP3-mediated Ca2+ events using fluorescence microscopy in intact mammalian cells loaded with Ca2+ indicators together with an algorithm that automates identification and analysis of these events.

Abstract

Citosólica iones Ca2 + a regular diversos aspectos de la actividad celular en casi todos los tipos de células, el control de procesos tan diversos como la transcripción de genes, excitabilidad eléctrica y la proliferación celular. La diversidad y la especificidad de la señalización de Ca2 + se deriva de mecanismos por los que Ca 2 + señales se generan para actuar sobre diferentes escalas de tiempo y espaciales, que van desde las oscilaciones y las ondas de todo el celulares que ocurren durante los períodos de minutos a locales transitorias de Ca2 + microdominios (Ca 2+) bocanadas milisegundos duraderos. Los recientes avances en electrónica se multiplicaron CCD (EMCCD) cámaras permiten ahora para obtener imágenes de Ca 2 + señales locales con una resolución espacial de 128 x 128 píxeles a una velocidad de> 500 marcos seg-1 (fps). Este enfoque es altamente paralelo y permite la monitorización simultánea de cientos de canales o de los sitios de hojaldre en un solo experimento. Sin embargo, las grandes cantidades de datos generados (aproximadamente 1 pe Gbr min) hacer la identificación visual y análisis de Ca 2+ local de eventos impracticable. Aquí describimos y demostrar los procedimientos para la adquisición, la detección y el análisis de IP local 3 mediada por Ca 2 + señales en células de mamífero intactas cargadas de Ca 2+ indicadores utilizando tanto de campo amplio epi-fluorescencia (WF) y la reflexión interna total fluorescencia (TIRF) microscopía. Además, se describe un algoritmo desarrollado en el entorno Python software de código abierto que automatiza la identificación y el análisis de estos Ca 2 + señales locales. El algoritmo localiza sitios de liberación de Ca2 + con resolución sub-pixel; permite la revisión de los datos de usuario; y emite secuencias de tiempo de señales de relación de fluorescencia junto con amplitud y datos cinéticos en una tabla compatible con Excel.

Introduction

Los iones de calcio (Ca2 +) de forma ubicua regulan una amplia gama de procesos biológicos, incluyendo la expresión génica, la secreción y cambios de larga duración en la plasticidad sináptica 1. Una manera a través del cual Ca 2+ puede actuar de una manera tan diverso es a través de los diferentes patrones espaciales y temporales de Ca 2 + señales de una célula puede generar. Por ejemplo, elevaciones globales en citosólico [Ca 2 +] contracción de activación en el tejido muscular liso 2, mientras más pequeño, elevaciones transitorias localizadas (locales Ca 2+ microdominios) estimular la expresión esencial para el aprendizaje y la memoria 3 gen.

Citosólico libre [Ca 2 +] se mantiene a ~ 100 nM en reposo, pero puede aumentar rápidamente a varios micro-molar después de la afluencia de Ca2 + en el citosol a través de canales de Ca2 + de iones permeables situados en la membrana plasmática y por la liberación de Ca2 + intracelular de stores. Nuestro laboratorio se centra en el inositol 1,4,5-trifosfato receptor (IP 3 R), que forma un canal de liberación de Ca 2+ situado en la membrana del retículo endoplasmático (ER). Tras la unión de ambos IP 3 y Ca 2+ a la citosólica sitios del receptor activador, el canal R IP 3 se abre para liberar Ca 2+ secuestrado dentro de la luz del RE. La liberación de Ca 2+ puede permanecer espacialmente restringida a un pequeño grupo de IP 3 Rs para generar un microdomain citosólica local del Ca 2+ (Ca 2+ puff 4) o, dependiendo de la proximidad de los grupos vecinos de IP 3 Rs, puede propagar en una célula mediante la contratación de varios sitios de hojaldre a través de un proceso de Ca2 + inducida por Ca 2 + de liberación (CICR) 5,6.

La introducción de la pequeña molécula fluorescente Ca 2+ colorantes indicadores desarrollado por Roger Tsien 7, junto con la avanzada imagi microscopíang técnicas, ha facilitado en gran medida nuestra comprensión de Ca 2 + señalización. Los recientes avances en cámaras utilizadas para microscopía permiten ahora para obtener imágenes de transitorios de Ca2 + eventos locales, tales como soplos con resolución espacial y temporal sin precedentes. Actualmente cámaras EMCCD disponibles permiten imágenes de 128 x 128 píxeles a> 500 marcos seg -1 (fps) y la nueva generación de semiconductor de óxido metálico complementario (CMOS) cámaras proporcionan una mayor resolución de píxeles, y la velocidad aún más rápida a costa de un poco más alto los niveles de ruido. En conjunción con la reflexión interna (TIRF) microscopía total, ahora es posible de una sola imagen Ca 2+ eventos de canal 8,9. Este enfoque permite la obtención de imágenes de cientos de canales / eventos simultáneamente, mientras que la generación de grandes conjuntos de datos (ca. 1Gb por minuto) que hacen que el tratamiento manual, la identificación visual y análisis impracticable y colocan una responsabilidad en el desarrollo de algoritmos automatizados.

<p class = "jove_content"> A continuación, presentamos los procedimientos y protocolos para la formación de imágenes locales Ca 2 + señales en células de mamífero intactas usando Ca 2+ indicadores fluorescentes. Además, demuestran un algoritmo desarrollado en el entorno Python de código abierto que automatiza la identificación y el análisis de Ca 2+ eventos locales fotografiados por tanto TIRF y amplio campo epi-fluorescencia convencional (WF) microscopía. Aunque estos enfoques se describen en el contexto de IP 3 -generated Ca 2 + señales, que son fácilmente susceptibles de estudiar los cambios locales en citosólico [Ca 2 +] que emanan de una variedad de canales de Ca2 + de iones permeables situados en cualquiera de la superficie membrana o orgánulos intracelulares 8-10.

Protocol

Presentamos los procedimientos detallados para obtener imágenes locales de Ca2 + eventos en neuroblastoma humano SH-SY5Y células. Estos procedimientos pueden ser adaptados a la imagen intracelular de Ca 2 + señales en muchos tipos de células 8-10. 1. Preparación de las células Cultura de las células para obtener imágenes de acuerdo a las instrucciones que aparecen en la página web de su proveedor. Unos pocos días antes de la ima…

Representative Results

La figura 1A muestra una imagen WF de descansar Cal-520 fluorescencia en células de neuroblastoma humano SH-SY5Y también cargados de ci-IP 3. La exposición de estas células a un flash 100 ms UV para foto-release i-IP 3 provocó transitorios de Ca2 + puffs en sitios discretos (señaladas por los círculos blancos en la figura 1A). Trazas fluorescencia medida en estos sitios mostraron una fase ascendente rápido debido a las aberturas transitorios de I…

Discussion

Describimos aquí los protocolos locales para obtener imágenes de Ca 2+ eventos en células de mamífero en cultivo usando Ca 2+ indicadores fluorescentes. Además, se describe un algoritmo con una interfaz de usuario intuitiva que automatiza la identificación y análisis de los datos adquiridos. El procedimiento descrito aquí utilizan el Ca 2+ fluorescente indicador Cal-520, pero muchas otras Ca 2+ tintes sensibles como Fluo-3, Fluo-4, Fluo-8 y Oregon Green BAPTA-1 realiza…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by National Institutes of Health grants GM 100201 to I.F.S, and GM 048071 and GM 065830 to I.P.

Materials

Name Company Catalogue No.
Human Neuroblastoma SH-SY5Y cells ATCC CRL-2266
Cal-520/AM AAT Bioquest Inc. 21130
ci-IP3 (D-23-O-Isopropylidene-6-O-(2-nitro-4.5-dimethoxy)benzyl-myo-Inositol 145-trisphosphate-Hexakis(propionoxymethyl) SiChem cag-iso-2-145-10
DMSO/20% pluronic F127 Invitrogen P-3000MP
EGTA/AM Invitrogen E-1219
35 mm glass-bottom imaging dishes MatTek P35-1.5-14-C

References

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Cite This Article
Lock, J. T., Ellefsen, K. L., Settle, B., Parker, I., Smith, I. F. Imaging Local Ca2+ Signals in Cultured Mammalian Cells. J. Vis. Exp. (97), e52516, doi:10.3791/52516 (2015).

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