Summary

Isolering av CD146<sup> +</sup> Resident Lung Mesenchymale stromale celler fra Rat Lunger

Published: June 17, 2016
doi:

Summary

Denne protokollen beskriver en isolasjons teknikk for å oppnå primær lunge hørende mesenchymal stromale celler fra rotter, ved bruk av enzymatisk fordøyelse, tetthetsgradient separasjon, plast tilslutning og CD146 + magnetiske kuler utvalg.

Abstract

Mesenchymale stromale celler (MSC) er i økende grad anerkjent for deres terapeutiske potensial i et bredt spekter av sykdommer, inkludert lungesykdommer. I tillegg til bruk av benmarg og navlestreng MSC for eksogene celleterapi, er det også økende interesse for reparasjon og regenerativ potensialet bosatt vev MSC. Dessuten har de sannsynligvis ha en rolle i normal organutvikling og er blitt tilskrevet roller i sykdommer, spesielt de med en fibrotisk natur. Den største hinder for studiet av disse hørende vev MSCer er mangelen på en klar markør for isolering og identifisering av disse cellene. Isolasjon teknikken beskrevet her gjelder flere kjennetegn ved lunge bosatt MSC (L-MSC). Etter ofring av rottene blir lunger ble fjernet og skyllet flere ganger for å fjerne blod. Etter mekanisk dissosiasjon av skalpellen, er lungene spaltet i 2-3 timer ved bruk av en blanding av kollagenase type I, nøytral protease og DNase type I. Det som ble oppnåddd enkeltcelle-suspensjon ble deretter vasket og lagt over tettshetsgradient medium (densitet 1,073 g / ml). Etter sentrifugering blir cellene fra den inter vasket og sådd ut i kultur-behandlede kolber. Celler dyrkes i 4-7 dager i fysiologisk 5% O2, 5% CO2-forhold. Å utarme fibroblaster (CD146 -) og for å sikre en befolkning på bare L-MSC (CD146 +), positiv utvelgelse for CD146 + celler utføres gjennom magnetiske kuler utvalg. Oppsummert produserer denne prosedyren pålitelig en befolkning på primær L-MSC for videre in vitro studier og manipulasjon. På grunn av naturen av protokollen, kan det lett bli oversatt til andre eksperimentelle dyremodeller.

Introduction

Mesenchymale stromale celler (MSC) er i økende grad anerkjent for deres terapeutiske potensial i et bredt spekter av sykdommer, inkludert lungesykdommer. I tillegg til bruk av benmarg og navlestreng MSC for eksogene celleterapi, er det også økende interesse for reparasjon og regenerativ potensialet bosatt vev MSC. Under utviklingen, blant annet i lungene, er det mesenchyme en viktig kilde til utviklings signaler, og bosatt MSC er en sannsynlig kandidat til å være i sentrum for dette. Videre er bevis dukker opp som ilegges MSC er gjennomtrengt på voksne sykdommer, inkludert kreft 1,2 og fibrose tre. Den største hinder for studiet av disse hørende vev MSCer er mangelen på en klar markør for isolering og identifisering av disse cellene 4. Stamcelle antigen-1 (Sca-1) ble identifisert i mus som en markør for en rekke forskjellige vev stamceller, og kan anvendes for isolering av L-MSC 5, men har dessverreingen kjent ortologer i andre arter 6. Forskere har rapportert en rekke forskjellige isoleringsmetoder for isolering av L-MSC enten fra lungevev eller væske. Disse varierer fra fluorescens-aktivert cellesortering (FACS) baserte metoder som selekterer for CD31 / CD45 / CD90 + celler 7, CD31 / CD45 / epithelial cell adhesion molecule (EpCAM) – / Sca-1 + -celler til 8, multiresistens transporter ATP bindende kassett G (ABCG2) positive celler 9 eller Hoechst 33342 fargestoff utstrømming 10, til plast etterlevelse 11,12 og migrasjon ut av hakket vev 13.

Fordelene med den her presenterte fremgangsmåten er flere ganger. Ved hjelp av en svak enzymatisk fordøyelse og tetthetsgradient 14, får man alle cellene i tetthetsområdet som inkluderer MSC men ekskluderer epitelceller eller endotelceller. Den påfølgende plast adherenstrinn sikrer at bare den mesenchymal cellene holder seg og bo i kultur, eliminere leukocytter. Viktigst er imidlertid lar CD146 + seleksjonstrinnet for eliminering av fibroblaster, da disse celler ikke uttrykker CD146. Ekspresjon av celleadhesjonsmolekyl CD146 er positivt korrelert med multipotency, og er derfor en god markør for å luke ut fibroblaster fra en mesenchymale cellepopulasjon 15-19. Dette er en fordel i forhold til å bruke CD90 som en seleksjonsmarkør, som det ikke er bare uttrykt i MSC men også i lipofibroblasts 5,20. I denne protokoll har vi eksplisitt valgt en på magnetiske kuler valg, som det er mildere på cellene, og hele prosedyren kan utføres i sterile betingelser. En annen viktig fordel med denne isolasjonsmetoden i motsetning til den utvekst metode, er at det er forholdsvis rask, 6-10 dager i motsetning til en måned eller mer for utveksten metode. Tre til fem dager etter den første isolering av mesenchymale befolkningen er klar for CD146 + sele Dette skjer; etter ytterligere tre til fem dager CD146 + cellene er klare til å bli brukt til eksperimenter eller kan bli frosset for senere bruk. Den reduserte tiden av kultur forbedrer kvaliteten på cellene som MSC transdifferentiate mot fibroblaster i forlenget ex vivo kultur 19. Til slutt, på grunn av naturen av protokollen, er det mulig å anvende denne fremgangsmåte for andre arter ved ganske enkelt å velge egnede antistoffer, eller til og med til andre organsystemer ved å justere valg av fordøyelsesenzymer og inkubasjonstid.

En detaljert protokoll av denne isolasjonsmetoden er gitt nedenfor, og en skjematisk oversikt over isolasjon og påfølgende valg av CD146 + undergruppe er gitt i Figur 1A og 1B henholdsvis. I tillegg er detaljer inkludert for aging, frysing og tining disse cellene.

ad / 53782 / 53782fig1.jpg "/>
Figur 1. Skjematisk oversikt over isolasjonen av pulmonale mesenchymale celler (A) og etterfølgende CD146 + valget av celler (B), min = minutter.; EDTA = Ethylenediaminetetraacetic syre; 2. Ab = sekundært antistoff; a-CD146 Ab = primære anti-CD146 antistoff; ve celler = CD146 negative celler; + ve celler = CD146-positive celler. Klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Protocol

Alle prosedyrer ble godkjent av Animal Care komité University of Ottawa (dyreetikk protokollen Ohrí-1696). Dyr behandling ble utført i samsvar med institusjonens retningslinjer. 1. Isolering av Lung Mesenchymale stromale celler Forbered enzymet blandingen i en 50 ml tube: veie 30 U nøytral Protease, 2500 U Collage I og 500 U DNAse I. Disse beløpene nok for lungene til en voksen mus eller rotte valp. Forbered på dag av isolasjon og oppbevares ved 4 ° C inntil bruk. …

Representative Results

To av de mest pålitelige fysiske egenskapene til MSC, tetthet og plast tilslutning, blir brukt i den første del av denne protokollen for å oppnå den mesenchymale cellefraksjon i lungene som inneholder L-MSC. Selv om densitetsgradient mellomfase vil omfatte monocytter og makrofager i tillegg til lunge mesenchymale celler, plast tilslutning fulgt av 3-5 dagers dyrking sørger for at bare de lunge mesenchymale celler forbli. Faktisk denne cellen befolkningen uttrykker de klassiske MSC o…

Discussion

Isolering og kultur av primær L-MSC presenterer en mulighet til å bedre forstå deres funksjon og deres samspill med andre cellepopulasjoner på cellenivå, og deres rolle i lunge utvikling, helse og sykdom. Dette er særlig viktig som mangel på en spesifikk markør enkelt av disse cellene gjør det nesten umulig å studere disse cellene in situ. Som med alle primære cellepopulasjoner, bør man huske på at disse cellene er mer sannsynlig å endre sin karakter jo lengre de blir holdt i kultur 19

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JJPC is supported by a Canadian Institutes of Health Research (CIHR) postdoctoral fellowship. MAM receives a merit scholarship from the German National Academic Foundation – Studienstiftung des Deutschen Volkes and is supported by a grant from the EFCNI (European Foundation for the Care of the Newborn Infant). BT is supported by CIHR, the Canadian Lung Association, the Stem Cell Network and the Children’s Hospital of Eastern Ontario Research Institute.

Materials

Neutral Protease Worthington Biochemical Corporation LS02104 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
Collagenase I Worthington Biochemical Corporation LS004196 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
DNAse I Sigma-Aldrich D5025 Prepare on day of isolation and store at 4°C until use
Pentobarbital sodium (Euthanyl) Bimeda-MTC Animal Health Inc, Dublin, Ireland Use 0.2 mL for rat pups between 20-30g; larger animals may need more.
Dulbecco’s PBS + Sodium-pyruvate + Glucose Life Technologies 14287-072 Very crucial to use this type of D-PBS, as the calcium and magnesium that are present in this D-PBS facilitate facilitate the enzymatic digestion
Ficoll-Paque PREMIUM (1.073 g/cm3) GE Healthcare 17-5446-52 Density gradient media. To obtain a good interphase, it is crucial that the layering of the single cell suspension occurs at a >45o angle at very low speed, and that the subsequent centrifugation is done at 19oC.
αMEM Sigma-Aldrich M8042 Warm in 37oC water bath before use
200 mM L-Glutamine Life Technologies 25030-164
100x Antibiotic-Antimycotic Life Technologies 15240-062 Penicillin/Streptomycin/Fungizone
M-280 Dynabeads Life Technologies 11205D Magnetic beads
biotinylated polyclonal rabbit-anti-mouse IgG Dako, Agilent Technologies E0464 Biotinylated secondary antibody that matches with the anti-rat CD146 antibody described below
DynaMag5-magnet Life Technologies 12303D Magnet that is recommended for use with Dynabeads. NOTE: magnet should be chosen based on the manufacturer’s instructions of the magnet beads of choice.
TrypLE express  Life Technologies 12605-028 Gentle non-trypsin alternative, use 1 mL of TrypLE express/ 25cm2 surface area. After detachment, 10 mL L-MSC culture medium is sufficient to inactivate 3 mL TrypLE
anti-rat CD146 antibody Lifespan Biosciences Inc. C35841 12.5 μl per 0.5 x 106 cells
Pentaspan (pentastarch solution) Bristol-Myers Squibb Canada Can be obtained through local blood donation services or hematology departments. Alternatively, one could use the PSI 20% Pentastarch solution (Preservation Solutions, PST001) diluted 1:1 with 0.9% NaCl.
Mr.Frosty freezing container ThermoFisher Scientific 5100-0001 Improves viability when freezing L-MSCs overnight at -80oC

References

  1. Bhowmick, N. A., Neilson, E. G., Moses, H. L. Stromal fibroblasts in cancer initiation and progression. Nature. 432, 332-337 (2004).
  2. Wei, H. J., et al. FOXF1 mediates mesenchymal stem cell fusion-induced reprogramming of lung cancer cells. Oncotarget. 5, 9514-9529 (2014).
  3. Marriott, S., et al. ABCG2pos lung mesenchymal stem cells are a novel pericyte subpopulation that contributes to fibrotic remodeling. Am J Physiol Cell Physiol. 307, 684-698 (2014).
  4. Collins, J. J., Thebaud, B. Lung mesenchymal stromal cells in development and disease: to serve and protect. Antioxid Redox Signal. 21, 1849-1862 (2014).
  5. McQualter, J. L., et al. Endogenous fibroblastic progenitor cells in the adult mouse lung are highly enriched in the sca-1 positive cell fraction. Stem Cells. 27, 623-633 (2009).
  6. Holmes, C., Stanford, W. L. Concise review: stem cell antigen-1: expression, function, and enigma. Stem Cells. 25, 1339-1347 (2007).
  7. Gottschling, S., et al. Mesenchymal stem cells in non-small cell lung cancer–different from others? Insights from comparative molecular and functional analyses. Lung Cancer. 80, 19-29 (2013).
  8. Bertoncello, I., McQualter, J. Isolation and clonal assay of adult lung epithelial stem/progenitor cells. Current protocols in stem cell biology. , (2011).
  9. Jun, D., et al. The pathology of bleomycin-induced fibrosis is associated with loss of resident lung mesenchymal stem cells that regulate effector T-cell proliferation. Stem Cells. 29, 725-735 (2011).
  10. Majka, S. M., et al. Identification of novel resident pulmonary stem cells: form and function of the lung side population. Stem Cells. 23, 1073-1081 (2005).
  11. Hennrick, K. T., et al. Lung cells from neonates show a mesenchymal stem cell phenotype. Am J Respir Crit Care Med. 175, 1158-1164 (2007).
  12. Salama, M., et al. Endothelin-1 governs proliferation and migration of bronchoalveolar lavage-derived lung mesenchymal stem cells in bronchiolitis obliterans syndrome. Transplantation. 92, 155-162 (2011).
  13. Hoffman, A. M., et al. Lung-derived mesenchymal stromal cell post-transplantation survival, persistence, paracrine expression, and repair of elastase-injured lung. Stem Cells Dev. 20, 1779-1792 (2011).
  14. Grisendi, G., et al. GMP-manufactured density gradient media for optimized mesenchymal stromal/stem cell isolation and expansion. Cytotherapy. 12, 466-477 (2010).
  15. Bardin, N., et al. S-Endo 1, a pan-endothelial monoclonal antibody recognizing a novel human endothelial antigen. Tissue antigens. 48, 531-539 (1996).
  16. Covas, D. T., et al. Multipotent mesenchymal stromal cells obtained from diverse human tissues share functional properties and gene-expression profile with CD146+ perivascular cells and fibroblasts. Exp Hematol. 36, 642-654 (2008).
  17. Russell, K. C., et al. In vitro high-capacity assay to quantify the clonal heterogeneity in trilineage potential of mesenchymal stem cells reveals a complex hierarchy of lineage commitment. Stem Cells. 28, 788-798 (2010).
  18. Sorrentino, A., et al. Isolation and characterization of CD146+ multipotent mesenchymal stromal cells. Exp Hematol. 36, 1035-1046 (2008).
  19. Halfon, S., Abramov, N., Grinblat, B., Ginis, I. Markers distinguishing mesenchymal stem cells from fibroblasts are downregulated with passaging. Stem Cells Dev. 20, 53-66 (2011).
  20. McGowan, S. E., Torday, J. S. The pulmonary lipofibroblast (lipid interstitial cell) and its contributions to alveolar development. Annu Rev Physiol. 59, 43-62 (1997).
  21. Dulbecco, R., Vogt, M. Plaque formation and isolation of pure lines with poliomyelitis viruses. The Journal of experimental medicine. 99, 167-182 (1954).
  22. Hayakawa, J., et al. 5% dimethyl sulfoxide (DMSO) and pentastarch improves cryopreservation of cord blood cells over 10% DMSO. Transfusion. 50, 2158-2166 (2010).
  23. Sarugaser, R., Hanoun, L., Keating, A., Stanford, W. L., Davies, J. E. Human mesenchymal stem cells self-renew and differentiate according to a deterministic hierarchy. PLoS One. 4, 6498 (2009).
  24. Prockop, D. J. Repair of tissues by adult stem/progenitor cells (MSCs): controversies, myths, and changing paradigms. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 17, 939-946 (2009).
  25. Respiratory Physiology. UCL Available from: https://www.ucl.ac.uk/anesthesia/people/RespPhysiolLong.pdf (2015)
  26. Boron, W. F., Boulpaep, E. L. . Medical Physiology. 2nd edn. , (2009).
  27. Carreau, A., El Hafny-Rahbi, B., Matejuk, A., Grillon, C., Kieda, C. Why is the partial oxygen pressure of human tissues a crucial parameter? Small molecules and hypoxia. J Cell Mol Med. 15, 1239-1253 (2011).
  28. Heller, H., Brandt, S., Schuster, K. D. Determination of alveolar-capillary O2 partial pressure gradient by using 15NO. Nitric oxide : biology and chemistry / official journal of the Nitric Oxide Society. 12, 127-128 (2005).
  29. Mohyeldin, A., Garzon-Muvdi, T., Quinones-Hinojosa, A. Oxygen in stem cell biology: a critical component of the stem cell niche. Cell stem cell. 7, 150-161 (2010).
  30. Simon, M. C., Keith, B. The role of oxygen availability in embryonic development and stem cell function. Nature reviews. Molecular cell biology. 9, 285-296 (2008).
  31. Le, Q. T., et al. An evaluation of tumor oxygenation and gene expression in patients with early stage non-small cell lung cancers. Clin Cancer Res. 12, 1507-1514 (2006).
  32. Krampera, M., et al. Immunological characterization of multipotent mesenchymal stromal cells-The International Society for Cellular Therapy (ISCT) working proposal. Cytotherapy. , (2013).
  33. Corselli, M., et al. Identification of perivascular mesenchymal stromal/stem cells by flow cytometry. Cytometry. Part A : the journal of the International Society for Analytical Cytology. 83, 714-720 (2013).
  34. Russell, K. C., et al. Cell-Surface Expression of Neuron-Glial Antigen 2 (NG2)and Melanoma Cell Adhesion Molecule (CD146) in Heterogeneous Cultures of Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells. Tissue engineering. Part A. , (2013).
  35. Lv, F. J., Tuan, R. S., Cheung, K. M., Leung, V. Y. Concise review: the surface markers and identity of human mesenchymal stem cells. Stem Cells. 32, 1408-1419 (2014).
  36. Dagur, P. K., et al. Secretion of interleukin-17 by CD8+ T cells expressing CD146 (MCAM). Clinical immunology. 152, 36-47 (2014).
  37. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell stem cell. 3, 301-313 (2008).
  38. da Silva Meirelles, L., et al. Cultured human adipose tissue pericytes and mesenchymal stromal cells display a very similar gene expression profile. Stem Cells Dev. , (2015).
  39. Caplan, A. I. All MSCs are pericytes. Cell stem cell. 3, 229-230 (2008).
  40. Barkauskas, C. E., et al. Type 2 alveolar cells are stem cells in adult lung. J Clin Invest. 123, 3025-3036 (2013).
  41. McGowan, S. E., McCoy, D. M. Regulation of fibroblast lipid storage and myofibroblast phenotypes during alveolar septation in mice. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 307, 618-631 (2014).
  42. Chen, L., Acciani, T., Le Cras, T., Lutzko, C., Perl, A. K. Dynamic regulation of platelet-derived growth factor receptor alpha expression in alveolar fibroblasts during realveolarization. Am J Respir Cell Mol Biol. 47, 517-527 (2012).
  43. Zhou, S., et al. The ABC transporter Bcrp1/ABCG2 is expressed in a wide variety of stem cells and is a molecular determinant of the side-population phenotype. Nat Med. 7, 1028-1034 (2001).
  44. Bonyadi, M., et al. Mesenchymal progenitor self-renewal deficiency leads to age-dependent osteoporosis in Sca-1/Ly-6A null mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 5840-5845 (2003).
  45. Ito, C. Y., Li, C. Y., Bernstein, A., Dick, J. E., Stanford, W. L. Hematopoietic stem cell and progenitor defects in Sca-1/Ly-6A-null mice. Blood. 101, 517-523 (2003).
  46. Chow, K., et al. Dysfunctional resident lung mesenchymal stem cells contribute to pulmonary microvascular remodeling. Pulmonary circulation. 3, 31-49 (2013).
check_url/53782?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Collins, J. J., Möbius, M. A., Thébaud, B. Isolation of CD146+ Resident Lung Mesenchymal Stromal Cells from Rat Lungs. J. Vis. Exp. (112), e53782, doi:10.3791/53782 (2016).

View Video