Summary

Förfarande för att utvärdera effektiviteten av flockningsmedel för att avlägsna dispergerade partiklarna från växtextrakt

Published: April 09, 2016
doi:

Summary

The design-of-experiments procedure presented here allows the evaluation of different flocculants in terms of their ability to aggregate dispersed particles in plant extracts, thus reducing turbidity and the costs of downstream processing.

Abstract

Plants are important to humans not only because they provide commodities such as food, feed and raw materials, but increasingly because they can be used as manufacturing platforms for added-value products such as biopharmaceuticals. In both cases, liquid plant extracts may need to be clarified to remove particulates. Optimal clarification reduces the costs of filtration and centrifugation by increasing capacity and longevity. This can be achieved by introducing charged polymers known as flocculants, which cross-link dispersed particles to facilitate solid-liquid separation. There are no mechanistic flocculation models for complex mixtures such as plant extracts so empirical models are used instead. Here a design-of-experiments procedure is described that allows the rapid screening of different flocculants, optimizing the clarification of plant extracts and significantly reducing turbidity. The resulting predictive models allow the identification of robust process conditions and sets of polymers with complementary properties, e.g. effective flocculation in extracts with specific conductivities. The results presented for tobacco leaf extracts can easily be adapted to other plant species or tissues and will thus facilitate the development of more cost-effective downstream processes for commodities and plant-derived pharmaceuticals.

Introduction

Växter är allmänt används för att producera livsmedelsråvaror såsom fruktjuicer, men de kan också utvecklas som plattformar för tillverkning av högre värde biofarmaceutiska produkter 1-3. I båda fallen, nedströms (DSP) börjar ofta med extraktion av vätskor från vävnader såsom blad eller frukter, följt av klargörande av partikelbemängd extrakt 4,5. För tillverkning av biologiska läkemedel, kan kostnaderna för DSP står för upp till 80% av de totala produktionskostnaderna 6,7 och detta delvis återspeglar den höga partikelbördan närvarande i extrakt framställda av störande metoder såsom bladbaserade homogenisering 8,9 . Även rationell urval av filterskikt för att matcha partikelstorleksfördelningen i extraktet kan öka filterkapacitet och minska kostnaderna 10,11, kan förbättringen aldrig överstiga ett tak på absoluta kapacitet definieras av antalet partiklar som måste bevaras perenhet av filterytan för att uppnå förtydligande.

Taket kan lyftas om färre partiklar når ytan av de finaste filter i filtrerings tåg, och detta kan uppnås om spridda partiklar blandas med polymerer som är kända som flockningsmedel som främjar aggregering att bilda stora flockar 12. Sådana flockar kan behållas längre uppströms av grövre och billigare påsfilter, vilket minskar partikelbördan når finare och dyrare djupfilter. Polymer måste ha säkerhetsprofiler som är lämpliga för sina ansökningar, till exempel för bioläkemedel de måste vara kompatibel med god tillverkningssed (GMP), och typiskt måste ha en molmassa> 100 kDa och kan antingen vara neutral eller debiteras 13. Medan neutrala flockuleringsmedel fungerar däremot i allmänhet genom tvärbindning dispergerade partiklarna orsakar deras aggregering och bildandet av flockar med diametrar> 1 mm 11, laddade polymerer neutralisera laddningen av dispersed partiklar, vilket minskar deras löslighet och därmed orsakar utfällning 14.

Flockning kan förbättras genom att justera parametrar såsom pH eller konduktivitet, och typen polymer eller koncentration, för att matcha egenskaperna hos extraktet 15,16. För tobaksextrakt förbehandlats med 0,5-5,0 g L -1 polyetylenimin (PEI), en mer än två-faldig ökning av djupfilter kapacitet rapporterades i en 100-L pilotskala process. Kostnaden för denna polymer är mindre än € ​​10 kg -1 så dess införande i processen resulterat i kostnadsbesparingar på cirka 6000 € för filter och förbrukningsartiklar per sats 16 eller ännu mer när de kombineras med cellulosabaserat filterhjälpmedel 17. Trots detta är prediktiva modeller som krävs för att utvärdera a priori ekonomiska fördelarna med flockningsmedel eftersom deras integration kan kräva håll stegen 15-30 min 16,18, vilket resulterar i ytterligare investeringskostnader för lagringtankar. Men det finns för närvarande inga mekanistiska modeller som kan förutsäga resultatet av dessa experiment på grund av den komplicerade karaktären av flockning. Därför var en mer lämplig utformning-of-experiment (DOE) metod 19 utvecklats som beskrivs i denna artikel. Ett protokoll för den allmänna DoE förfarande har nyligen publicerats 20.

Små produkter finns nu tillgängliga för high-throughput screening av flockningsförhållanden 21. Dock kan dessa enheter inte realistiskt simulera förhållanden under flockning av växtextrakt, eftersom dimensionerna hos reaktionskärlet (~ 7 mm för brunnar på en 96-brunnar) och partiklar eller flockar kan vara mindre än en storleksordning isär. Detta kan påverka blanda mönster och därmed prognosförmåga av modellen. Dessutom kan det vara svårt att skala ner processer som involverar utfällning på grund av icke-linjära förändringar i blandnings beteende och fällning staheten 22. Därför denna artikel beskriver en bänk-top-skala screeningsystem med en kapacitet på 50-75 prover per dag, ger resultat som är skalbara från den ursprungliga 20 ml reaktionsvolym till en 100 L pilotskala process 16. När de kombineras med en DoE tillvägagångssätt, ger detta de prediktiva modeller som ska användas för processoptimering och dokumentation som en del av en kvalitet-för-designkoncept.

Metoden som beskrivs nedan kan också anpassas till biologiska läkemedel som produceras i cellkultur-baserade processer, där flockningsmedel är också betraktas som en kostnadsbesparande verktyg 23. Den kan också användas för att modellera den utfällning av målproteiner från ett råextrakt som en del av en strategi för rening, såsom visats för β-glukuronidas som produceras i raps, majs och sojaböna 24,25. Kan hittas En detaljerad beskrivning av flockningsegenskaper på andra ställen 16,26 och det är viktigt att säkerställa att polymer concentrheten är antingen icke-toxiska eller under skadliga nivåer i slutprodukten 11.

Protocol

1. Utveckla en tillräcklig experimentell strategi Identifiera de miljömässiga och processparametrar som är relevanta för flockningsförfarande som skall upprättas eller optimeras, dvs vilka faktorer har den starkaste effekten på flockning. Vanligtvis finns det flera sådana parametrar så ett DOE tillvägagångssätt som nyligen beskrivits 20 är nödvändig på grund av bristen på mekanistiska modeller. Välj parametrar (faktorer) baserat på litteraturdata 12,…

Representative Results

Flockning av tobaksextrakt med olika polymerer Den ovan beskrivna metoden användes med framgång för att utveckla ett förfarande för flockning av tobaksextrakt under tillverkningen av en monoklonal antikropp (HIV-neutraliserande antikropp 2G12) och ett fluorescerande protein (DsRed) (Figur 1) 16, och har sedan överförts till andra proteiner, inklusive lektiner, malariavaccinkandidater och fusi…

Discussion

Den viktigaste aspekten att tänka på när inrätta ett DOE att karakterisera partikelflock är att konstruktionen måste i princip kunna upptäcka och beskriva de förväntade eller möjliga effekter 36,38, t ex påverkan av pH, polymertyp och polymerkoncentration 16. Därför är det viktigt att utvärdera den del av design utrymme (FDS) innan den verkliga experiment. FDS är den del av den flerdimensionella experimentella utrymmet (som omfattas av konstruktionsfaktorer, t.ex.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

I would like to acknowledge Dr. Thomas Rademacher for providing the transgenic tobacco seeds and Ibrahim Al Amedi for cultivating the tobacco plants. I wish to thank Dr. Richard M Twyman for editorial assistance and Prof. Dr. Rainer Fischer for fruitful discussions. This work was funded in part by the European Research Council Advanced Grant ”Future-Pharma”, proposal number 269110, the Fraunhofer-Zukunftsstiftung (Fraunhofer Future Foundation) and the Fraunhofer-Gesellschaft Internal Programs under Grant No. Attract 125-600164.

Materials

2100P Portable Turbidimeter Hach 4650000 Turbidimeter
2G12 antibody Polymun AB002 Reference antibody
Biacore T200 GE Healthcare 28-9750-01 SPR device
BP-410 Furh 2632410001 Bag filter
Catiofast VSH BASF 79002360 Flocculating agent
Centrifuge 5415D Eppendorf 5424 000.410 Centrifuge
Centrifuge tube 15 mL Labomedic 2017106 Reaction tube
Centrifuge tube 50 mL self-standing Labomedic 1110504 Reaction tube
Chitosan Carl Roth GmbH 5375.1 Flocculating agent
Design-Expert(R) 8 Stat-Ease, Inc. n.a. DoE software
Disodium phosphate Carl Roth GmbH  4984.3  Media component
Ferty 2 Mega Kammlott 5.220072 Fertilizer
Forma -86C ULT freezer ThermoFisher 88400 Freezer
Greenhouse n.a. n.a. For plant cultivation
Grodan Rockwool Cubes 10x10cm Grodan 102446 Rockwool block
HEPES Carl Roth GmbH 9105.3 Media component
K700P 60D Pall 5302305 Depth filter layer
KS50P 60D Pall B12486 Depth filter layer
Miracloth Labomedic 475855-1R Filter cloth
MultiLine Multi 3410 IDS WTW WTW_2020 pH meter / conductivity meter
Osram cool white 36 W Osram 4930440 Light source
Phytotron Ilka Zell n.a. For plant cultivation
Polymin P BASF 79002360 Flocculating agent
POLYTRON PT 6100 D Kinematica 11010110 Homogenization device with custom blade tool
Protein A Life technologies 10-1006 Antibody binding protein
Sodium chloride Carl Roth GmbH P029.2 Media component
Synergy HT BioTek SIAFRT Fluorescence plate reader
TRIS Carl Roth GmbH 4855.3 Media component
Tween-20 Carl Roth GmbH 9127.3 Media component
VelaPad 60 Pall VP60G03KNH4 Filter housing
Zetasizer Nano ZS Malvern ZEN3600 DLS particle size distribution measurement

References

  1. Godfray, H. C. J., et al. Food Security: The Challenge of Feeding 9 Billion People. Science. 327, 812-818 (2010).
  2. Fischer, R., Schillberg, S., Buyel, J. F., Twyman, R. M. Commercial aspects of pharmaceutical protein production in plants. Curr. Pharm. Des. 19, 5471-5477 (2013).
  3. Pastores, G. M., et al. A Phase 3, multicenter, open-label, switchover trial to assess the safety and efficacy of taliglucerase alfa, a plant cell-expressed recombinant human glucocerebrosidase, in adult and pediatric patients with Gaucher disease previously treated with imiglucerase. Blood Cells Mol. Dis. 53, 253-260 (2014).
  4. De Paepe, D., et al. A comparative study between spiral-filter press and belt press implemented in a cloudy apple juice production process. Food Chem. 173, 986-996 (2015).
  5. Buyel, J. F., Twyman, R. M., Fischer, R. Extraction and downstream processing of plant-derived recombinant proteins. Biotechnol. Adv. 33, 902-913 (2015).
  6. Wilken, L. R., Nikolov, Z. L. Recovery and purification of plant-made recombinant proteins. Biotechnol. Adv. 30, 419-433 (2012).
  7. Buyel, J. F. Process development trategies in plant molecular farming. Curr. Pharm. Biotechnol. 16, 966-982 (2015).
  8. Hassan, S., Keshavarz-Moore, E., Ma, J., Thomas, C. Breakage of transgenic tobacco roots for monoclonal antibody release in an ultra-scale down shearing device. Biotechnol. Bioeng. 111, 196-201 (2014).
  9. Hassan, S., van Dolleweerd, C. J., Ioakeimidis, F., Keshavarz-Moore, E., Ma, J. K. Considerations for extraction of monoclonal antibodies targeted to different subcellular compartments in transgenic tobacco plants. Plant Biotechnol. J. 6, 733-748 (2008).
  10. Buyel, J. F., Fischer, R. Scale-down models to optimize a filter train for the downstream purification of recombinant pharmaceutical proteins produced in tobacco leaves. Biotechnol. J. 9, 415-425 (2014).
  11. Buyel, J. F., Fischer, R. Downstream processing of biopharmaceutical proteins produced in plants: the pros and cons of flocculants. Bioengineered. 5, 138-142 (2014).
  12. Gregory, J., Barany, S. Adsorption and flocculation by polymers and polymer mixtures. Adv. Colloid Interface Sci. 169, 1-12 (2011).
  13. Zhou, Y., Franks, G. V. Flocculation mechanism induced by cationic polymers investigated by light scattering. Langmuir. 22, 6775-6786 (2006).
  14. Runkana, V., Somasundaran, P., Kapur, P. C. Mathematical modeling of polymer-induced flocculation by charge neutralization. J. Colloid Interface Sci. 270, 347-358 (2004).
  15. Hjorth, M., Jorgensen, B. U. Polymer flocculation mechanism in animal slurry established by charge neutralization. Water Res. 46, 1045-1051 (2012).
  16. Buyel, J. F., Fischer, R. Flocculation increases the efficacy of depth filtration during the downstream processing of recombinant pharmaceutical proteins produced in tobacco. Plant Biotechnol. J. 12, 240-252 (2014).
  17. Buyel, J. F., Opdensteinen, P., Fischer, R. Cellulose-based filter aids increase the capacity of depth filters during the downstream processing of plant-derived biopharmaceutical proteins. Biotechnol. J. 10, 584-591 (2014).
  18. Yasarla, L. R., Ramarao, B. V. Dynamics of Flocculation of Lignocellulosic Hydrolyzates by Polymers. Ind. Eng. Chem. Res. 51, 6847-6861 (2012).
  19. Montgomery, D. C. . Design and Analysis of Experiments. , (2007).
  20. Buyel, J. F., Fischer, R. Characterization of complex systems using the design of experiments approach: transient protein expression in tobacco as a case study. J. Vis. Exp. , e51216 (2014).
  21. Espuny Garcia Del Real, G., Davies, J., Bracewell, D. G. Scale-down characterization of post-centrifuge flocculation processes for high-throughput process development. Biotechnol. Bioeng. 111, 2486-2498 (2014).
  22. Rathore, A. S., Sofer, G. . Process Validation in Manufacturing of Biopharmaceuticals, 3rd edn, Vol. 1. , (2012).
  23. Kang, Y., et al. Development of a Novel and Efficient Cell Culture Flocculation Process Using a Stimulus Responsive Polymer to Streamline Antibody Purification Processes. Biotechnol. Bioeng. 110, 2928-2937 (2013).
  24. Menkhaus, T. J., Eriksson, S. U., Whitson, P. B., Glatz, C. E. Host selection as a downstream strategy: Polyelectrolyte precipitation of beta-glucuronidase from plant extracts. Biotechnol. Bioeng. 77, 148-154 (2002).
  25. Holler, C., Vaughan, D., Zhang, C. M. Polyethyleneimine precipitation versus anion exchange chromatography in fractionating recombinant beta-glucuronidase from transgenic tobacco extract. J. Chromatogr. A. 1142, 98-105 (2007).
  26. Buyel, J. F., Fischer, R. Synthetic polymers are more effective than natural flocculants for the clarification of tobacco leaf extracts. J. Biotechnol. 195, 37-42 (2014).
  27. Pearson, C. R., Heng, M., Gebert, M., Glatz, C. E. Zeta potential as a measure of polyelectrolyte flocculation and the effect of polymer dosing conditions on cell removal from fermentation broth. Biotechnol. Bioeng. 87, 54-60 (2004).
  28. Buyel, J. F., Gruchow, H. M., Boes, A., Fischer, R. Rational design of a host cell protein heat precipitation step simplifies the subsequent purification of recombinant proteins from tobacco. Biochem. Eng. J. 88, 162-170 (2014).
  29. Wang, S., Liu, C., Li, Q. Impact of polymer flocculants on coagulation-microfiltration of surface water. Water Res. 47, 4538-4546 (2013).
  30. Menkhaus, T. J., Anderson, J., Lane, S., Waddell, E. Polyelectrolyte flocculation of grain stillage for improved clarification and water recovery within bioethanol production facilities. Bioresour. Technol. 101, 2280-2286 (2010).
  31. Mune, M. A. M., Minka, S. R., Mbome, I. L. Optimising functional properties during preparation of cowpea protein concentrate. Food Chem. 154, 32-37 (2014).
  32. Buyel, J. F., Fischer, R. Predictive models for transient protein expression in tobacco (Nicotiana tabacum L.) can optimize process time, yield, and downstream costs. Biotechnol. Bioeng. 109, 2575-2588 (2012).
  33. Buyel, J. F., Kaever, T., Buyel, J. J., Fischer, R. Predictive models for the accumulation of a fluorescent marker protein in tobacco leaves according to the promoter/5’UTR combination. Biotechnol. Bioeng. 110, 471-482 (2013).
  34. Buyel, J. F., Fischer, R. A juice extractor can simplify the downstream processing of plant-derived biopharmaceutical proteins compared to blade-based homogenizers. Process Biochem. 50, 859-866 (2014).
  35. Anderson, M. J., Whitcomb, P. J. . DOE Simplified: Practical Tools for Effective Experimentation. Vol. 1. 1, (2000).
  36. Anderson, M. J., Whitcomb, P. J. . Response Surface Methods Simplified. , (2005).
  37. Buyel, J. F., Fischer, R. Generic chromatography-based purification strategies accelerate the development of downstream processes for biopharmaceutical proteins produced in plants. Biotechnol. J. 9, 566-577 (2014).
  38. Myers, R. H., Montgomery, D. C., Anderson-Cook, C. M. . Response Surface Methodology: Process and Product Optimization Using Designed Experiments. , (2009).
check_url/53940?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Buyel, J. F. Procedure to Evaluate the Efficiency of Flocculants for the Removal of Dispersed Particles from Plant Extracts. J. Vis. Exp. (110), e53940, doi:10.3791/53940 (2016).

View Video