Summary

Stencil Micropatterning of Human Pluripotent stamceller for undersøkelser romlige organiseringen av differensiering Fates

Published: June 17, 2016
doi:

Summary

Menneskelige pluripotente stamceller (hPSCs) har den iboende evne til å differensiere og selvtillit organisere inn i forskjellige vev mønstre; selv om dette krever presentasjon av romlige miljø gradienter. Vi presenterer sjablong micropatterning som en enkel og robust metode for å generere biokjemiske og mekaniske gradienter for å styre hPSC differensieringsmønster.

Abstract

Human pluripotent stem cells (hPSCs), including embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells, have the intrinsic ability to differentiate into all three germ layers. This makes them an attractive cell source for regenerative medicine and experimental modeling of normal and diseased organogenesis. However, the differentiation of hPSCs in vitro is heterogeneous and spatially disordered. Cell micropatterning technologies potentially offer the means to spatially control stem cell microenvironments and organize the resultant differentiation fates. Micropatterning hPSCs needs to take into account the stringent requirements for hPSC survival and maintenance. Here, we describe stencil micropatterning as a method that is highly compatible with hPSCs. hPSC micropatterns are specified by the geometries of the cell stencil through-holes, which physically confine the locations where hPSCs can access and attach to the underlying extracellular matrix-coated substrate. Due to this mode of operation, there is greater flexibility to use substrates that can adequately support hPSCs as compared to other cell micropatterning methods. We also highlight critical steps for the successful generation of hPSC micropatterns. As an example, we demonstrate that stencil micropatterning of hPSCs can be used to modulate spatial polarization of cell-cell and cell-matrix adhesions, which in turn determines mesoendoderm differentiation patterns. This simple and robust method to micropattern hPSCs widens the prospects of establishing experimental models to investigate tissue organization and patterning during early embryonic development.

Introduction

Humane pluripotente stamceller (hPSCs), inkludert embryonale stamceller (hESCs) og induserte pluripotente stamceller (hiPSCs), allment utnyttes i regenerativ medisin samt eksperimentelle modellering av normal og sykelig organogenese på grunn av deres differensiering potensial inn i cellen linjer av alle tre bakterie lag 1,2. Differensieringen skjebne hPSCs er svært følsomme for lokale miljøfaktorer som kan modulerer autokrine eller parakrine signaliserer en samt mechanotransduction prosesser mediert av fysiske signaler 3-5. Cell micropatterning omfatter et sett av teknikker som er utviklet for å romlig organisere geometri og plassering av en cellepopulasjon som et middel for å kontrollere den lokale mobilmikromiljøet, slik som celle-celle interaksjoner 6 og celle-matriks interaksjoner 3. I sammenheng med hPSCs har celle micropatterning vært ansatt for å oppnå betydelige innsikt i hvordan nisje-avhengigeent autokrint signale modulerer hESC pluripotency-differensiering beslutninger 7 og organisasjon i tidlig embryonale differensieringsmønster 6. 2D og 3D micropatterned hPSCs har blitt brukt til å styre kolonien størrelsen på flercellede mønstre, som i sin tur påvirket differensiering beslutninger i de tre bakterie lag 8,9. Vi har anvendt flercellede hPSC micropatterns å modulere den grad av celle-celle og celle-matriks-vekselvirkninger innenfor et hPSC koloni å undersøke hvordan integrin-E-cadherin krysstale kan gi opphav til celle skjebne heterogenitet 10. Demonstrasjonene fra de ovennevnte rapporter åpne nye veier mot anvendelsen av flercellede micropatterns av hPSCs som eksperimentelle modeller for narkotika toksisitet screening for utviklings sykdommer 11, for å studere effekten av vekstfaktorer og hormoner i løpet av vev eller organ utvikling, og å rakne dannelsen av vev mønstre.

En myriade av celle micropatterNing teknikker har blitt utviklet som anmeldt av Falconnet et. al. 12, men bare en håndfull, for eksempel mikro-kontakt utskrift 7,8,13, mikrokultur 14,15, photopatterning 6 og microstencils 16 har blitt implementert med hPSCs. Utfordringen med micropatterning hPSCs ligger i deres sårbarhet og strenge krav om konkrete ekstracellulære matriser (ECM) og vekstvilkår for cellebinding og overlevelse. For 2D hPSC mønstre, er mikro-kontakt utskrift en av de vanligste metodene for å generere hPSC micropatterns på vev kultur og glass underlag 13. Fremgangsmåten kan brukes til å påføre mønster felles ECM som brukes i hPSC kultur, inkludert laminin og basalmembran matriser, slik som Matrigel. Imidlertid, er det vanligvis krever en totrinns belegningsprosess hjulpet av poly-D-lysin, og trenger spesielle inerte atmosfæriske og fuktighetsforhold for å lage stabile ECM micropatterns for hPSCs å feste på 6,13. Den fremste hensyn til hver micropatterning metode er om overflaten ombygging regime kan generere hPSC-lim ECM mønstre på ønsket geometrisk oppløsning mens uspesifikke cellebinding minimere til de omkringliggende områdene.

Her rapporterer vi bruk av sjablongen micropatterning som en enkel metode for å generere hPSC micropatterns uten ytterligere overflatemodifikasjonstrinn før generering av selvklebende ECM mønstre for hPSCs å feste på. Cellen sjablongen består av en tynn membran, for eksempel polydimetylsiloksan (PDMS) ark, med mikron til millimeter størrelse, gjennomgående hull forseglet på en cellekultur substrat for fysisk å inneholde ECM belegg og deretter sådd hPSCs. Som sjablong mønster virker ved fysisk tilbakeholdende det sted hvor hPSC kan få tilgang til og festes direkte på den underliggende ECM belagte substrat, er denne metode som er kompatibel med forskjellige substrater som kan støtte hPSC kulturer. De eneste requirement er at valg av sjablongen materiale kan danne en reversibel tetning med substratet. Disse substrater inkluderer konvensjonelle vevskulturpolystyren (TCPS) 17, ligand-konjugerte substrater 18, samt elastomere substrater med avstembar stivhet (f.eks., PDMS) 19. Denne metoden gir også belegg av forskjellig ECM, som vitronectin (eller VTN protein), laminin og basalmembran matriser (f.eks Matrigel og Geltrax) for å få riktig feste og differensiering av hPSCs. Derfor kan vi overføre optimalisert ECM-substrat konfigurasjoner for en bestemt hPSC linje til sjablong micropatterning for optimal celle-matrix adhesjon, overlevelse og differensiering. Nylig har en lignende metode også blitt rapportert til å dirigere hepatisk differensiering av micropatterning hESCs ved hjelp av poly (metylmetakrylat) (PMMA) mikro sjablong matriser 16.

Celle sjablonger kan fremstilles av forskjellige materialer, inkludert møttals 20,21, poly (p-xylylen) polymerer 22,23, PMMA 16 og mest, PDMS 24-28. Silisium og poly (p-xylylen) polymerer sjabloner krever direkte etsning av de gjennomgående hullene med spesialutstyr 20-23, noe som begrenser deres biologiske tilgjengelighet til brukerne. PDMS sjabloner kan fremstilles ved forskjellige metoder, avhengig av trekkstørrelse nødvendig, noe som er typisk i området fra 3 mikrometer til 2000 mikrometer 11,26-29. Hvis små funksjoner er ønskelig, kan tynne spraye plater produseres ved trykk molding PDMS pre-polymer på en microfabricated silisium mal som inneholder relieffer av de micropatterns 28. For funksjoner> 1000 mikrometer, gir et CO 2 laser cutter en enkel og rimelig metode for å direkte kutte mønstrene på en pre-støpt PDMS ark under sjablongen fabrikasjon. Den resirkulering av PDMS sjablonger gjør dem også kostnadseffektivt å gjennomføre en rekke eksperimenter med tilstrekkelig konsistens.

<p class = "jove_content"> Her presenterer vi detaljert metodikk for fabrikasjon av en PDMS sjablong med 1000 mikrometer funksjoner ved laserskjæring og generering av hESC micropatterns. Disse hESC micropatterns ble anvendt for å modulere den grad av integrin og E-cadherin mediert adhesjon innenfor en sammenhengende hESC koloni for derved å undersøke hvordan romlig polarisering av celleadhesjon resulterte i celle skjebne heterogenitet 10.

Protocol

MERK: Denne protokollen beskriver fabrikasjon av PDMS sjablong med 1000 mikrometer mønstre av laserskjæring og micropatterning av hESC linje, H9 bruke PDMS sjablong. 1. Design og fabrikasjon av PDMS Stencil for Micropatterning Design spraye arket med gjennomgående hull med ønsket geometri og størrelse (f.eks 1000 mikrometer sirkler) og sjablongen pakning bruker dataassistert design software 10. Laser-kutt spraye arket og pakning på 120-150 nm og…

Representative Results

I denne artikkelen beskriver vi fabrikasjon av en celle sjablong ved hjelp av en laser cutter å generere 1000 mikrometer funksjoner. Sjablongen var sammensatt av 2 deler: en tynn spraye ark (ca. 100-200 mikrometer tykk) inneholdende micropattern gjennomgående hull, og et PDMS pakning for å inneholde den ECM beleggløsningen eller cellesuspensjon. Her ble 127 mikrometer og 2 mm tykke kommersielt tilgjengelige PDMS ark anvendes som spraye ark og pakning henholdsvis. Andre fremgangsmåte…

Discussion

Fabrikasjon av micropatterning sjablonger

Stencil micropatterning gir en ideell metode for å generere hPSC micropatterns for å undersøke nisje-mediert differensiering mønster. Den viktigste fordelen med sjablongen mønster i forhold til andre micropatterning teknikker, slik som mikrokontakttrykking og photopatterning, er at den ikke krever overflatemodifisering og kan implementeres på konvensjonelle TCPS substrater. Derfor kan optimaliserte dyrkningsmedier og E…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet støttes av NUS Oppstart stipend (R-397-000-192-133) og ETPL Gap fondet (R-397-000-198-592). GS er en NUS Forskning lærd. Forfatterne ønsker å takke dr Jiangwa Xing for henne teknisk support på celle micropatterning.

Materials

 2 mm thick PDMS sheet Specialty Silicone Products Inc., USA SSPM823-.005 Used to form reservoir for stencil
120-150 μm thick PDMS sheet Specialty Silicone Products Inc., USA SSPM823-.040 Used to form stencil 
60 mm petri dish  Nunc Nunclon Delta 150326 Substrate for micropatterning
Accutase Accutase, Merck Millipore, Singapore SCR005 Enzyme to break H9 Cells into single cells
Activin   R&D Systems, Singapore 338-AC-010 Growth factor for H9 differentiation
BMP4  R&D Systems, Singapore 338-BP-010 Growth factor for H9 differentiation
Plasma system   Femto Science, Korea CUTE-MP For plasma oxidation of stencil
Dispase StemCell™ Technologies, Singapore 7923 Enzyme used to weaken the cell-ECM adhesion during passaging
DMEM/F12 GIBCO, USA 11330032 Basal medium for H9 cells
FGF2  R&D Systems, Singapore 233–FB–025 Growth factor for H9 differentiation
H9 Cell line WiCell Research Institute, Inc., USA WA09 Human embryonic stem cells
hESC-qualified basement membrane matrix Matrigel, BD Biosciences, Singapore 354277 Extra-cellular matrix coating to support growth of H9 cells
Inverted microscope Leica Microsystems, Singapore DMi1 For capturing bright-field images
Laser cutter Epilog Helix 24 Laser System Used to generate through holes in PDMS sheet
mTeSR1 medium  StemCell™ Technologies, Singapore 5850 Maintainence medium for H9 cells
PDMS  SYLGARD® 184, Dow Corning Co., USA 3097358-1004 Used for sticking the PDMS stencil and reservior
ROCKi Y27632 Calbiochem, Merck Millipore, Singapore 688000 Maintains H9 cells as single cells 
STEMdiff APEL medium  StemCell™ Technologies, Singapore 5210 Differentiation medium for H9 cells
Polyethylene terephthalate film SureMark Singapore SQ-6633 Used to form stencil 
Cell culture compatible non-ionic surfactant Pluronic acid F-127, Sigma, Singapore P2443 Passivating reagent to repel cell adhesion in non-micropatterned substrates

References

  1. Graf, T., Stadtfeld, M. Heterogeneity of embryonic and adult stem cells. Cell Stem Cell. 3 (5), 480-483 (2008).
  2. Nishikawa, S., Goldstein, R. A., Nierras, C. R. The promise of human induced pluripotent stem cells for research and therapy. Nat Rev Mol Cell Biol. 9 (9), 725-729 (2008).
  3. Guilak, F., Cohen, D. M., Estes, B. T., Gimble, J. M., Liedtke, W., Chen, C. S. Control of stem cell fate by physical interactions with the extracellular matrix. Cell Stem Cell. 5 (1), 17-26 (2009).
  4. Dalby, M. J., Gadegaard, N., Oreffo, R. O. Harnessing nanotopography and integrin-matrix interactions to influence stem cell fate. Nat Mater. 13 (6), 558-569 (2014).
  5. Joddar, B., Ito, Y. Artificial niche substrates for embryonic and induced pluripotent stem cell cultures. J Biotechnol. 168 (2), 218-228 (2013).
  6. Warmflash, A., Sorre, B., Etoc, F., Siggia, E. D., Brivanlou, A. H. A method to recapitulate early embryonic spatial patterning in human embryonic stem cells. Nat Methods. 11 (8), 847-854 (2014).
  7. Peerani, R., et al. Niche-mediated control of human embryonic stem cell self-renewal and differentiation. EMBO J. 26 (22), 4744-4755 (2007).
  8. Lee, L. H., Peerani, R., Ungrin, M., Joshi, C., Kumacheva, E., Zandstra, P. Micropatterning of human embryonic stem cells dissects the mesoderm and endoderm lineages. Stem Cell Res. 2 (2), 155-162 (2009).
  9. Hwang, Y. S., Chung, B. G., Ortmann, D., Hattori, N., Moeller, H. C., Khademhosseini, A. Microwell-mediated control of embryoid body size regulates embryonic stem cell fate via differential expression of WNT5a and WNT11. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (40), 16978-16983 (2009).
  10. Toh, Y. C., Xing, J., Yu, H. Modulation of integrin and E-cadherin-mediated adhesions to spatially control heterogeneity in human pluripotent stem cell differentiation. Biomaterials. 50, 87-97 (2015).
  11. Xing, J., Toh, Y. C., Xu, S., Yu, H. A method for human teratogen detection by geometrically confined cell differentiation and migration. Sci Rep. 5, 10038 (2015).
  12. Falconnet, D., Csucs, G., Grandin, H. M., Textor, M. Surface engineering approaches to micropattern surfaces for cell-based assays. Biomaterials. 27 (16), 3044-3063 (2006).
  13. Bauwens, C. L., et al. Control of human embryonic stem cell colony and aggregate size heterogeneity influences differentiation trajectories. Stem Cells. 26 (9), 2300-2310 (2008).
  14. Khademhosseini, A., et al. Co-culture of human embryonic stem cells with murine embryonic fibroblasts on microwell-patterned substrates. Biomaterials. 27 (36), 5968-5977 (2006).
  15. Mohr, J. C., de Pablo, J. J., Palecek, S. P. 3-D microwell culture of human embryonic stem cells. Biomaterials. 27 (36), 6032-6042 (2006).
  16. Yao, R., et al. Hepatic differentiation of human embryonic stem cells as microscaled multilayered colonies leading to enhanced homogeneity and maturation. Small. 10 (21), 4311-4323 (2014).
  17. Mei, Y., et al. Combinatorial development of biomaterials for clonal growth of human pluripotent stem cells. Nat Mater. 9 (9), 768-778 (2010).
  18. Melkoumian, Z., et al. Synthetic peptide-acrylate surfaces for long-term self-renewal and cardiomyocyte differentiation of human embryonic stem cells. Nat Biotechnol. 28 (6), 606-610 (2010).
  19. Evans, N. D., et al. Substrate stiffness affects early differentiation events in embryonic stem cells. Eur Cell Mater. 18, 1-13 (2009).
  20. Carter, S. B. Haptotactic islands: a method of confining single cells to study individual cell reactions and clone formation. Exp Cell Res. 48 (1), 189-193 (1967).
  21. Jimbo, Y., Robinson, H. P., Kawana, A. Simultaneous measurement of intracellular calcium and electrical activity from patterned neural networks in culture. IEEE Trans Biomed Eng. 40 (8), 804-810 (1993).
  22. Wright, D., et al. Reusable, reversibly sealable parylene membranes for cell and protein patterning. J Biomed Mater Res. A. 85 (2), 530-538 (2008).
  23. Jinno, S., et al. Microfabricated multilayer parylene-C stencils for the generation of patterned dynamic co-cultures. J Biomed Mater Res A. 86 (1), 278-288 (2008).
  24. Jackman, R. J., Duffy, D. C., Cherniavskaya, O., Whitesides, G. M. Using elastomeric membranes as dry resists and for dry lift-off. Langmuir. 15 (8), 2973-2984 (1999).
  25. Folch, A., Jo, B. H., Hurtado, O., Beebe, D. J., Toner, M. Microfabricated elastomeric stencils for micropatterning cell cultures. J Biomed Mater Res. 52 (2), 346-353 (2000).
  26. Park, J., et al. Microfabrication-based modulation of embryonic stem cell differentiation. Lab Chip. 7 (8), 1018-1028 (2007).
  27. Choi, J. H., Lee, H., Jin, H. K., Bae, J. S., Kim, G. M. Micropatterning of neural stem cells and Purkinje neurons using a polydimethylsiloxane (PDMS) stencil. Lab Chip. 12 (23), 5045-5050 (2012).
  28. Li, W., et al. NeuroArray: a universal interface for patterning and interrogating neural circuitry with single cell resolution. Sci Rep. 4, 4784 (2014).
  29. Guvanasen, G. S., Mancini, M. L., Calhoun, W. A., Rajaraman, S., DeWeerth, S. P. Polydimethylsiloxane Microstencils Molded on 3-D-Printed Templates. J Microelectromech S. 23 (5), 1045-1053 (2014).
  30. Palchesko, R. N., Zhang, L., Sun, Y., Feinberg, A. W. Development of polydimethylsiloxane substrates with tunable elastic modulus to study cell mechanobiology in muscle and nerve. PLoS One. 7 (12), 51499 (2012).
  31. Chowdhury, F., et al. Material properties of the cell dictate stress-induced spreading and differentiation in embryonic stem cells. Nat Mater. 9 (1), 82-88 (2010).
  32. Gjorevski, N., Boghaert, E., Nelson, C. M. Regulation of Epithelial-Mesenchymal Transition by Transmission of Mechanical Stress through Epithelial Tissues. Cancer Microenviron. 5 (1), 29-38 (2012).
  33. Thery, M. Micropatterning as a tool to decipher cell morphogenesis and functions. J Cell Sci. 123, 4201-4213 (2010).
  34. Eroshenko, N., Ramachandran, R., Yadavalli, V. K., Rao, R. R. Effect of substrate stiffness on early human embryonic stem cell differentiation. J Biol Eng. 7 (1), 7 (2013).
check_url/54097?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sahni, G., Yuan, J., Toh, Y. Stencil Micropatterning of Human Pluripotent Stem Cells for Probing Spatial Organization of Differentiation Fates. J. Vis. Exp. (112), e54097, doi:10.3791/54097 (2016).

View Video