Summary

Genetic Engineering av en ukonvensjonell gjær for fornybar Biodrivstoff og biokjemiske Produksjon

Published: September 20, 2016
doi:

Summary

We herein report methods on the molecular genetic manipulation of the Yarrowia lipolytica Po1g strain for improved gene deletion efficiency. The resulting engineered Y. lipolytica strains have potential applications in biofuel and biochemical production.

Abstract

Yarrowia lipolytica er en ikke-patogene, dimorfe og strengt aerobe gjær arter. På grunn av sin karakteristiske fysiologiske funksjoner og metabolske egenskaper, er denne ukonvensjonelle gjær ikke bare en god modell for studiet av den grunnleggende natur av sopp differensiering, men er også en lovende mikrobiell plattform for biokjemisk produksjon og forskjellige bioteknologiske anvendelser som krever omfattende genetiske manipulasjoner. Men, genetiske manipulasjoner av Y. lipolytica har vært begrenset på grunn av mangel på en effektiv og stabil genetisk transformasjon system samt svært høy forekomst av ikke-homolog rekombinasjon som kan hovedsakelig tilskrives KU70 genet. Her rapporterer vi en enkel og hurtig protokoll for effektiv genetisk transformasjon og for genet delesjon i Y. lipolytica Po1g. Først, en protokoll for effektiv omforming av eksogent DNA inn i Y. lipolytica Po1g ble etablert. Second, for å oppnå forbedret dobbel-crossover homolog rekombinasjon hastighet for ytterligere sletting av målgener ble KU70 genet slettet ved å transformere et avbrudd kassett bærer 1 kb homologi armer. Tredje, for å demonstrere den forbedrede genet sletting effektivitet etter sletting av KU70 genet, vi individuelt slettet 11 mål gener som koder alkohol dehydrogenase og alkoholoksidase bruke de samme prosedyrer på belastningen KU70 knockout-plattformen. Det ble observert at frekvensen av homolog rekombinasjon nøyaktig økt betraktelig, fra mindre enn 0,5% for sletting av KU70 genet i Po1g til 33% -71% for enkelt gen sletting av de 11 målgener i Po1g KU70 Δ. En replikative plasmid som bærer hygromycin B resistens markør og den Cre / loxP-systemet ble konstruert, og den seleksjonsmarkør-genet i gjær knockout-stammer ble til slutt fjernet ved ekspresjon av Cre rekombinase for å legge til rette for av flere runder med TARGEted genetiske manipulasjoner. De resulterende single-genet sletting mutanter har potensielle bruksområder i biobrensel og biokjemisk produksjon.

Introduction

I motsetning til Saccharomyces cerevisiae, Yarrowia lipolytica, en ukonvensjonell gjær, kan vokse i form av gjær eller mycel i respons på endringer i miljøforhold 1,2. Således kan dette dimorf gjær benyttes som en god modell for studiet av sopp differensiering, morfogenese og taksonomi 3,4,5. Det er generelt ansett som en trygg (GRAS) gjær arter, som er mye brukt til å produsere en rekke tilsetningsstoffer som for eksempel organiske syrer, polyalkoholer aroma forbindelser, emulgatorer og tensider 6,7,8,9. Det er en obligat aerob og en velkjent oljeaktige gjær er i stand til å akkumulere naturlig lipider ved høye mengder, dvs. opp til 70% av celletørrvekt 10. Det kan også benytte et bredt spekter av karbonkilder for vekst, inkludert forskjellige typer rester i avfalls ressurser som næringsstoffer 11,12,13. Alle disse unike egenskapene gjør Y. lipolytica svært attraktive forulike bioteknologiske applikasjoner.

Selv om hele genomsekvens av Y. lipolytica har blitt publisert 14,15, genetisk manipulering av denne ukonvensjonelle gjær er mer komplisert enn andre gjærarter. For det første transformasjon av denne gjærarter er mye mindre effektiv på grunn av fraværet av en stabil og effektiv genetiske transformasjonssystem 16,17. For det andre er arbeidskrevende genomisk integrering av lineære ekspresjonskassetter som vanligvis anvendes for ekspresjon av gener av interesse som ikke naturlig episomale plasmid-systemet har blitt funnet i denne gjær 18. Tredje, generering av genetiske knock-outs og knock-ins er begrenset fordi genet targeting effektivitet via nøyaktig homolog rekombinasjon i denne gjæren er lav og de fleste integrering hendelser oppstår gjennom ikke-homolog ende bli (NHEJ) 19.

I denne studien rapporterer vi en optimalisert transformasjon protokoll for Y. lipolytica </em> Po1g-stamme, som er enkel, rask, effektiv og reproduserbar. For å øke frekvensen av homolog rekombinasjon nøyaktig, slettet vi den KU70-genet, som koder for et viktig enzym i reaksjonsveien NHEJ. Ved hjelp av optimalisert transformasjon protokollen og transformere en lineær knockout kassett som inneholder flankerer homologi regioner av 1 kb, den KU70 gen av Y. lipolytica Po1g ble slettet. Robustheten dette genet sletting metodikken ble deretter demonstrert ved å målrette alkohol dehydrogenase og alkohol oksidase gener i Po1g KU70 Δ belastning. Det ble observert at den KU70 stammen slettingen oppviste en betydelig høyere virkningsgrad av homolog rekombinasjon-formidlet gen-targeting enn den til villtype-Po1g belastning. I tillegg ble en replikativ Cre-ekspresjonsplasmid som bærer hygromycin B resistens markør konstruert for å utføre markør redning. Markøren redning forenkler flere runder med genet målretting i the fått genet sletting mutanter. Foruten genet sletting, kan vår protokoll for genetisk transformasjon og genet sletting beskrevet her brukes for å sette inn gener til bestemte loci, og å innføre stedsspesifikke mutasjoner inn i Y. lipolytica genom.

Protocol

1. generasjon Y. lipolytica KU70 Sletting Strain Byggingen av avbrudd kassett NB: Se tabell 1 for alle primerne anvendt i polymerase kjedereaksjon (PCR) amplifikasjoner. Design primere 20 for PCR amplifisere LEU2 ekspresjonskassetten (se tabell 1) fra en Y. lipolytica ekspresjonsvektor og innføre loxP-seter i 5'- og 3'-endene av den LEU2 kassetten med en lang forover primer (# 1, tabell 1…

Representative Results

Det lineariserte Y. lipolytica ekspresjonsvektor ble innsatt i pBR forankringsplattform i genomet av Y. lipolytica Po1g belastningen ved å utføre en enkelt crossover rekombinasjon 27. Ved hjelp av rask kjemisk transformasjon prosedyre etablert i denne studien, det lineariserte Y. lipolytica ekspresjonsvektor ble vellykket transformert inn i villtype-stamme Po1g ved en transformasjonseffektivitet på> 100 cfu / ug DNA. En knockout kassett flanker…

Discussion

Vårt mål for denne studien er å muliggjøre rask og effektiv generasjon av målrettede genet knockouts i Y. lipolytica Po1g belastning. Flere hensyn må tas opp for å oppnå dette. Først er en høy transformasjon effektivitet som kreves. Således, en effektiv og enkel kjemisk transformasjon protokoll for Y. lipolytica Po1g stamme ble beskrevet i denne studien. Bruken av PEG-4000 er en kritisk faktor for vellykket transformasjon av denne stammen. Det er ingen transformanter ble oppnådd fo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi erkjenner takknemlig finansieringen støtte fra National Environment Agency of Singapore (ETRP 1.201.102), Konkurranse Research Program av National Research Foundation of Singapore (NRF-CRP5-2009-03), Direktoratet for Science, Technology and Research of Singapore ( 1324004108) Global FoU-prosjektet Program, Ministry of Knowledge Economy, republikken Korea (N0000677), Defense Threat Reduction Agency (DTRA, HDTRA1-13-1-0037) og Syntetisk biologi Initiative av National University of Singapore ( DPRT / 943/09/14).

Materials

Reagent/Material
Oligonucleotide primers Integrated DNA Technologies 25 nmole  DNA oligos
Y. lipolytica strain Po1g Yeastern Biotech leucine auxotrophic derivative of the wild-type strain W29 (ATCC 20460)
Vector pYLEX1 Yeastern Biotech FYY203-5MG Y. lipolytica expression vector 
E. coli TOP10  Invitrogen For cloning and propagation of plasmids
pGEM-T vector  Promega A3600 TA cloning vector
QIAprep Spin Miniprep Kit Qiagen 27106 For plasmid isolation
Wizard SV Gel and
PCR Clean-Up System
Promega A9282 Extract DNA fragments from agarose gels
and purify PCR products from an amplification reaction
The iProof high-fidelity
DNA polymerase
Bio-Rad 172-5302 High-fidelity DNA polymerase
BamHI  New England Biolabs R0136S Restriction enzyme
BglII  New England Biolabs R0144L Restriction enzyme
KpnI New England Biolabs R0142S Restriction enzyme
NdeI  New England Biolabs R0111S Restriction enzyme
NotI New England Biolabs R0189L Restriction enzyme
PmlI New England Biolabs R0532S Restriction enzyme
PstI  New England Biolabs R0140S Restriction enzyme
SacII New England Biolabs R0157S Restriction enzyme
SalI New England Biolabs R0138S Restriction enzyme
XhoI New England Biolabs R0146L Restriction enzyme
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202L
Taq DNA polymerase  Bio-Rad M0267L
Ampicillin Gibco-Life Technologies 11593-027 Antibiotics
Hygromycin B PAA P21-014 Antibiotics
GeneRuler 1 kb DNA ladder Thermo Scientific SM0312 1 kb DNA ladder
PEG4000 Sigma 95904-F
Tris Promega H5135
EDTA Bio-Rad 161-0729
Salmon Sperm DNA Invitrogen 15-632-011
Lithium Acetate Sigma
Acetic acid Sigma
Glass beads (425-600 µm) Sigma G8772
RNAse A Thermo Scientific EN0531
DNA Loading Dye Thermo Scientific R0611
Bacto Yeast Extract BD 212750
Bacto Peptone BD 211677
D-Glucose 1st Base BIO-1101
YNB without amino acids Sigma Y0626
DO Supplement-Leu Clontech 630414
Glycerol Sigma G5516
Difco LB Broth BD 244620
Difco LB Agar BD 244520
Bacto Agar BD 214010
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
PCR machine Biorad T100 Thermal Cycler
Water bath Memmert WNB 14
Stationary/Shaking Incubator Yihder LM-570RD
Thermo-shaker Allsheng MS-100
Micro centrifuge Eppendorf 5424R
Centrifuge Eppendorf 5810R
Spectrophotometer Eppendorf  BioPhotometer plus
Gel imager GE Amersham Imager 600

References

  1. Jiménez-Bremont, J. F., Rodrìguez-Hernández, A. A., Rodrìguez-Kessler, M., J, R. u. i. z. -. H. e. r. r. e. r. a. . Development and dimorphism of the yeast Yarrowia lipolytica. Dimorphic fungi: Their importance as models for differentiation and fungal pathogenesis. , 58-66 (2012).
  2. Coelho, M., Amaral, P., Belo, I., Méndez-Vilas, A. . Yarrowia lipolytica: an industrial workhorse. Current research, technology and education topics in applied microbiology and microbial biotechnology. , 930-940 (2010).
  3. Martinez-Vazquez, A., et al. Identification of the transcription factor Znc1p, which regulates the yeast-to-hypha transition in the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica. Plos One. 8 (6), e66790 (2013).
  4. Richard, M., Quijano, R. R., Bezzate, S., Bordon-Pallier, F., Gaillardin, C. Tagging morphogenetic genes by insertional mutagenesis in the yeast Yarrowia lipolytica. J. Bacteriol. 183 (10), 3098-3107 (2001).
  5. Flores, C. L., Martìnez-Costa, O. H., Sánchez, V., Gancedo, C., Aragòn, J. J. The dimorphic yeast Yarrowia lipolytica possesses an atypical phosphofructokinase: characterization of the enzyme and its encoding gene. Microbiology. 151 (5), 1465-1474 (2005).
  6. Domìnguez, &. #. 1. 9. 3. ;., et al. Non-conventional yeasts as hosts for heterologous protein production. Int. Microbiol. 1 (2), 131-142 (1998).
  7. Zinjarde, S. S. Food-related applications of Yarrowia lipolytica. Food Chem. 152, 1-10 (2014).
  8. Finogenova, T., Morgunov, I., Kamzolova, S., Chernyavskaya, O. Organic acid production by the yeast Yarrowia lipolytica: a review of prospects. Appl. Biochem. Micro+. 41 (5), 418-425 (2005).
  9. Groguenin, A., et al. Genetic engineering of the β-oxidation pathway in the yeast Yarrowia lipolytica to increase the production of aroma compounds. J. Mol. Catal. B-Enzym. 28 (2), 75-79 (2004).
  10. Meng, X., et al. Biodiesel production from oleaginous microorganisms. Renew. Energ. 34 (1), 1-5 (2009).
  11. Papanikolaou, S., Aggelis, G. Lipid production by Yarrowia lipolytica growing on industrial glycerol in a single-stage continuous culture. Bioresource Technol. 82 (1), 43-49 (2002).
  12. Tai, M., Stephanopoulos, G. Engineering the push and pull of lipid biosynthesis in oleaginous yeast Yarrowia lipolytica for biofuel production. Metab. Eng. 15, 1-9 (2013).
  13. Liu, H. H., Ji, X. J., Huang, H. Biotechnological applications of Yarrowia lipolytica: Past, present and future. Biotechnol. Adv. 33 (8), 1522-1546 (2015).
  14. Liu, L., Alper, H. S. Draft genome sequence of the oleaginous yeast Yarrowia lipolytica PO1f, a commonly used metabolic engineering host. Genome Announc. 2 (4), e00652-e00614 (2014).
  15. Dujon, B., et al. Genome evolution in yeasts. Nature. 430 (6995), 35-44 (2004).
  16. Chen, D. C., Beckerich, J. M., Gaillardin, C. One-step transformation of the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica. Appl. Microbial. Biotechnol. 48 (2), 232-235 (1997).
  17. Wang, J. H., Hung, W., Tsai, S. H. High efficiency transformation by electroporation of Yarrowia lipolytica. J. Microbiol. 49 (3), 469-472 (2011).
  18. Matsuoka, M., et al. Analysis of regions essential for the function of chromosomal replicator sequences from Yarrowia lipolytica. Mol. Gen. Genet. 237 (3), 327-333 (1993).
  19. Kretzschmar, A., et al. Increased homologous integration frequency in Yarrowia lipolytica strains defective in non-homologous end-joining. Curr. Genet. 59 (1-2), 63-72 (2013).
  20. Lorenz, T. C. Polymerase Chain Reaction: Basic Protocol Plus Troubleshooting and Optimization Strategies. J. Vis. Exp. (63), e3998 (2012).
  21. Kobs, G. Cloning blunt-end DNA fragments into the pGEM-T Vector Systems. Promega Notes. 62, 15-18 (1997).
  22. Sanders, E. R. Aseptic laboratory techniques: plating methods. J. Vis. Exp. (63), e3064 (2012).
  23. Hegemann, J. H., Heick, S. B. Delete and repeat: a comprehensive toolkit for sequential gene knockout in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae. Methods Mol. Biol. 765, 189-206 (2011).
  24. Yamane, T., Sakai, H., Nagahama, K., Ogawa, T., Matsuoka, M. Dissection of centromeric DNA from yeast Yarrowia lipolytica and identification of protein-binding site required for plasmid transmission. J. Biosci. Bioeng. 105 (6), 571-578 (2008).
  25. McGinnis, S., Madden, T. L. BLAST: at the core of a powerful and diverse set of sequence analysis tools. Nucleic Acids Res. 32 ((Web Server issue)), W20-W25 (2004).
  26. Madzak, C., Tréton, B., Blanchin-Roland, S. Strong hybrid promoters and integrative expression/secretion vectors for quasi-constitutive expression of heterologous proteins in the yeast Yarrowia lipolytica. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2 (2), 207-216 (2000).
  27. Nicaud, J. M., Le Clainche, A., Le Dall, M. T., Wang, H., Gaillardin, C. Yarrowia lipolytica, a yeast model for the genetic studies of hydroxy fatty acids biotransformation into lactones. J. Mol. Catal. B-Enzym. 5 (1), 175-181 (1998).
check_url/54371?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yu, A., Pratomo, N., Ng, T., Ling, H., Cho, H., Leong, S. S. J., Chang, M. W. Genetic Engineering of an Unconventional Yeast for Renewable Biofuel and Biochemical Production. J. Vis. Exp. (115), e54371, doi:10.3791/54371 (2016).

View Video