Summary

Analisi istologiche di lesioni al fegato acuto alcolico in Zebrafish

Published: May 25, 2017
doi:

Summary

Questo protocollo descrive le analisi istologiche dei fegati delle larve di zebrafish che sono state trattate con 2% di etanolo per 24 ore. Tale trattamento di etanolo acuto provoca steatosi epatica e gonfiore della vasculatura epatica.

Abstract

Malattia alcolica del fegato (ALD) si riferisce a danni al fegato a causa di abuso acuto o cronico di alcol. È tra le principali cause della morbilità e della mortalità correlate all'alcol e colpisce più di 2 milioni di persone negli Stati Uniti. Una migliore comprensione dei meccanismi cellulari e molecolari alla base del danno epatico indotto da alcool è cruciale per lo sviluppo di un trattamento efficace per ALD. Le larve di Zebrafish mostrano steatosi epatica e fibrogenesis dopo solo 24 ore di esposizione al 2% di etanolo, rendendole utili per lo studio di lesioni al fegato alcoliche acute. Questo lavoro descrive la procedura per il trattamento acuto di etanolo nelle larve di zebrafish e mostra che provoca steatosi e gonfiori dei vasi sanguigni epatici. Viene descritto anche un protocollo dettagliato per la colorazione di ematossilina e di Eosin (H & E) ottimizzato per l'analisi istologica del fegato di larve zebrafish. La colorazione H & E ha diversi vantaggi unici rispetto all'immunofluorescenza, in quanto segna tutti i livelliEr cellule e componenti extracellulari contemporaneamente e può facilmente rilevare lesioni epatiche, come la steatosi e la fibrosi. Dato l'aumento dell'uso di zebrafish nella modellizzazione della tossina e della lesione epatica indotta dal virus, nonché delle patologie epatiche ereditarie, questo protocollo serve come riferimento per le analisi istologiche eseguite in tutti questi studi.

Introduction

La malattia alcolica del fegato (ALD), causata dal consumo di alcol, è una delle principali cause della morbilità e della mortalità correlate all'alcol. Negli Stati Uniti, quasi la metà delle morti per malattie epatiche coinvolge l'alcool 1 e l'ALD è responsabile di quasi 1 su 3 trapianti di fegato 2 . ALD ha un ampio spettro. La steatoside, caratterizzata da un eccesso di accumulo lipidico negli epatociti, si verifica nella fase iniziale del consumo pesante ed è reversibile alla cessazione dell'uso dell'alcol. Sotto l'influenza dei fattori genetici e ambientali e dell'assunzione continua dell'alcol, la steatosi epatica può progredire all'epatite alcolica e, alla fine, alla cirrosi 3 . Gli studi che utilizzano i modelli di roditore ALD hanno fornito conoscenze approfondite sulla malattia, ma hanno limitazioni (esaminate nel riferimento 3 ). L'alimentazione orale di una dieta dell'alcool provoca solo steatosi nei roditori 4 , </ Sup> 5 . Lo sviluppo di infiammazione e fibrosi richiede un secondo insulto 6 , 7 o infusione intragastrica cronica, che è invasiva e tecnicamente impegnativa 8 , 9 . Il teleost zebrafish sviluppa anche lesioni epatiche in risposta sia al trattamento alcolico cronico che acuto 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 . In particolare, il pesce zebra di larve rappresenta un attraente organismo modello complementare in cui studiare lesioni al fegato alcoliche acute , 10 , 11 , 13 , 15 . Il fegato di zebrafish è funzionale e produce enzimi chiave per il metabolismo dell'etanolo da 4 giorni(Dpf) 13 , 16 , 17. L' etanolo può essere aggiunto direttamente all'acqua e l'esposizione al 2% di etanolo per 24 ore è sufficiente a indurre steatosi epatica e risposte fibrogeniche nelle larve 13 e 15 dello zebrafish.

È stato riportato che il trattamento con 2% di etanolo per 24 ore ha determinato una concentrazione di etanolo tessuto di 80 mM nelle larve 13 di zebrafish. Altri hanno dimostrato che le larve tollerano questa concentrazione ei fenotipi epatici osservati negli animali trattati sono specifici per l'esposizione di etanolo 11 , 13 , 15 , 18 . Tuttavia, poiché 80 mM è quasi letale negli esseri umani 19 , è importante valutare l'istologia epatica del pesce zebra trattato con etanolo e rilevareDistruggere la rilevanza fisiologica dell'uomo.

Il rapido sviluppo esterno e la traslucenza delle larve dello zebrafish permettono di caratterizzare l'azione dell'alcool nel fegato in tempo reale e in campioni fissi. La disponibilità di linee transgeniche fluorescenti specifiche di tipo cellulare e dei recenti progressi nella microscopia confocale facilitano lo studio di come diversi tipi di cellule epatiche cambino la loro morfologia e il loro comportamento in risposta al trattamento acuto di etanolo 11,15. Tuttavia, l'imaging confocale dei pesci zebra transgenici fluorescenti non può completamente sostituire la colorazione di ematossilina e di Eosin (H & E) durante lo studio dell'istologia del fegato. Marcando tutti i tipi di cellule epatiche contemporaneamente utilizzando zebrafish transgenici richiede la generazione di singole linee transgeniche, ciascuna etichettatura di un tipo di cellule epatiche con un unico fluoroforo. Introdurre diversi sfondi transgenici nello stesso pesce richiede la razzaG generazioni multiple, che richiede tempo e sono costosi. È necessaria una colorazione immunofluorescenza aggiuntiva per rilevare componenti di matrice extracellulare. La colorazione H & E, invece, identifica contemporaneamente tutti i tipi di cellule epatiche e le componenti della matrice extracellulare, fornendo così una panoramica del fegato 20 . Inoltre, rivela facilmente varie caratteristiche istopatologiche delle malattie epatiche, come la morte epatocitaria, la steatosi e la fibrosi. Anche se H & E è una macchia di routine nell'istologia del fegato mammifero, non è comunemente utilizzata nella ricerca epatica del zebrafish e il protocollo è meno ben definito.

Questo lavoro descrive un protocollo per il trattamento acuto di etanolo nelle larve di zebrafish e per le analisi istologiche di follow-up con la colorazione H & E. Il protocollo di colorazione H & E può essere utilizzato in tutti gli studi di sviluppo e funzionalità del fegato. Inoltre, le sezioni di paraffina possono essere utilizzate per immunohistochemistry, come pure per altri sta sta specialiIns nella patologia epatica, tra cui la macchia tricromica, la macchia di reticulina, ecc .

Protocol

AB WT adulti e larve sono stati mantenuti in condizioni normali 21 secondo la Guida per la cura e l'uso degli animali da laboratorio (National Institutes of Health publication 86-23, revised 1985); Il loro utilizzo è stato approvato dal Comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali al Cincinnati Children's Hospital Medical Center (CCHMC). 1. Preparazione delle soluzioni Preparare l'acqua di uovo. …

Representative Results

Formalin tampone 10% e 4% paraformaldeide (PFA) sono due dei fixatives più comuni utilizzati per le pratiche istologiche. Tuttavia, non forniscono risultati di fissazione ottimali per i tessuti epatici di zebrafish ( Figura 1 e Tabella 1 ). La fissazione con il 10% di formalina o il 4% di PFA provoca spesso dei restringimenti, creando grandi spazi tra il fegato e i tessuti circostanti ( Figura 1A , <strong clas…

Discussion

Il protocollo attuale descrive una procedura dettagliata per il trattamento acuto di etanolo nelle larve di zebrafish e le successive analisi istopatologiche con la colorazione H & E. Il trattamento acuto di etanolo dovrebbe essere effettuato non prima di 96 ore dopo la fecondazione, in quanto questo è il momento in cui il fegato di zebra inizia a esprimere enzimi che metabolizzano l'alcool 13 . 2% di etanolo è la dose massima che le larve possono tollerare 13 <s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori vorrebbero riconoscere il dottor Katy Murray al Centro Risorse Internazionali di Zebrafish; Il dottor Stacey Huppert e Kari Huppert al CCHMC, per i loro consigli utili sul protocollo; E il servizio veterinario CCHMC, per la cura dei pesci. Questo lavoro è stato sostenuto dalla sovvenzione NIH R00AA020514 e da una borsa di studio del Centro per la Genomica Pediatrica a CCHMC (a CY). È stato anche sostenuto in parte da NIH concedere P30 DK078392 (Integrative Morphology Core) del Centro di Ricerca Digestiva Disease Core a Cincinnati.

Materials

1.5 mL centrifuge tubes E & K Scientific 280150
15 mL conical tubes VWR International 89039-664
50 mL conical tubes VWR International 89039-658
95% ethanol Decon Labs, Inc. 2801 Flammable
Acetic acid Newcomer Supply 10010A Irritant
Agarose Research Products International 9012-36-6
Aluminum jar rack holder Newcomer Supply 5300JRK
Bacteriological petri dishes with lid Corning 351029
Biopsy pads Simport M476.1
Charged slides Fisher Scientific 12-550-16
Clear mounting media Fisher Scientific 8310-16 Can be substituted with other clear mounting media
Commercial sea salts Instant Ocean SS15-10
Disposable microtome blades Fisher Scientific 4280L
Dissecting microscope Leica Biosystems Leica Mz 95
Enclosed tissue processor Leica Biosystems ASP300 S
Eosin-Phloxine stain set Newcomer Supply 1082A
Ethyl alcohol Sigma-Aldrich E7023 Flammable
Formaldehyde solution, ACS reagent, 37 WT. % in H20, contains 10-15% methanol as stabilizer (to prevent polymerization) Sigma-Aldrich 252549 A suspected carcinogen; irritant
Formalin, Buffered, 10% Fisher Scientific SF100-4 A suspected carcinogen; irritant
Graduated media bottle VWR International 16159-520
Harris hematoxylin Poly Scientific R&D Corp. s212 Irritant
Histology molds Sakura Finetek USA Inc 4557
Hot plate/Stirrer VWR International 47751-148
Hydrochloric acid Fisher Scientific A144 Irritant
Incubator VWR International 97058-220
Insulin syringes BD Medical BD-309301
Inverted compound microscope Carl Zeiss Microscopy 491912-9850-000
Isopropanol Newcomer Supply 12094E Flammable
Methylene blue Sigma-Aldrich M9140 Irritant
Microtome Leica Biosystems Leica Jung BioCut 2035 
Nutating mixer VWR International 82007-202
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148-1KG A suspected carcinogen; irritant
Pasteur pipet VWR International 53283-916
Pipette pump (10 mL) VWR International 53502-233
Potassium chloride (KCl) Sigma-Aldrich P9541
Potassium phosphate, monobasic (KH2PO4) Sigma-Aldrich P9791
Razor blades Grainger 4A807
Slide Staining Kit Newcomer Supply 5300KIT
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich S3014
Sodium hydroxide (NaOH) Fisher BioReagents S318-500 Very hazardous
Sodium phosphate, dibasic (Na2HPO4) Sigma-Aldrich S3264
Stainless steel strainer (5 inch diameter) Adaptive Science Tools L0906045in
Tissue cassettes Simport M505.12
Tissue embedding center Sakura Finetek USA Inc #5100
Tissue wipers, 1-Ply Fisher Scientific 06666A
Transfer pipets Fisher Scientific 137117M
Tricaine powder/Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt Sigma-Aldrich A5040 Irritant
Tris base, primary standard and buffer Sigma-Aldrich T1503
Wash bottle, low-density polyethylene, wide mouth Nalge Nunc International 2402-0750
Xylenes Fisher Scientific X3S-4 Irritant

References

  1. Yoon, Y. H., Chen, C. M., Yi, H. Y. . Surveillance report #100: Liver cirrhosis mortality in the United States: National, State, and regional trends. , 2000-2011 (2014).
  2. Singal, A. K., et al. Evolving frequency and outcomes of liver transplantation based on etiology of liver disease. Transplantation. 95 (5), 755-760 (2013).
  3. Louvet, A., Mathurin, P. Alcoholic liver disease: mechanisms of injury and targeted treatment. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 12 (4), 231-242 (2015).
  4. Ki, S. H., et al. Interleukin-22 treatment ameliorates alcoholic liver injury in a murine model of chronic-binge ethanol feeding: role of signal transducer and activator of transcription 3. Hepatology. 52 (4), 1291-1300 (2010).
  5. Tsuchiya, M., et al. Interstrain differences in liver injury and one-carbon metabolism in alcohol-fed mice. Hepatology. 56 (1), 130-139 (2012).
  6. Koteish, A., Yang, S., Lin, H., Huang, X., Diehl, A. M. Chronic ethanol exposure potentiates lipopolysaccharide liver injury despite inhibiting Jun N-terminal kinase and caspase 3 activation. J Biol Chem. 277 (15), 13037-13044 (2002).
  7. Leo, M. A., Lieber, C. S. Hepatic fibrosis after long-term administration of ethanol and moderate vitamin A supplementation in the rat. Hepatology. 3 (1), 1-11 (1983).
  8. Tsukamoto, H., et al. Severe and progressive steatosis and focal necrosis in rat liver induced by continuous intragastric infusion of ethanol and low fat diet. Hepatology. 5 (2), 224-232 (1985).
  9. Tsukamoto, H., Mkrtchyan, H., Dynnyk, A. Intragastric ethanol infusion model in rodents. Methods Mol Biol. 447, 33-48 (2008).
  10. Howarth, D. L., Passeri, M., Sadler, K. C. Drinks like a fish: using zebrafish to understand alcoholic liver disease. Alcohol Clin Exp Res. 35 (5), 826-829 (2011).
  11. Howarth, D. L., Yin, C., Yeh, K., Sadler, K. C. Defining hepatic dysfunction parameters in two models of fatty liver disease in zebrafish larvae. Zebrafish. 10 (2), 199-210 (2013).
  12. Lin, J. N., et al. Development of an Animal Model for Alcoholic Liver Disease in Zebrafish. Zebrafish. , (2015).
  13. Passeri, M. J., Cinaroglu, A., Gao, C., Sadler, K. C. Hepatic steatosis in response to acute alcohol exposure in zebrafish requires sterol regulatory element binding protein activation. Hepatology. 49 (2), 443-452 (2009).
  14. Tsedensodnom, O., Vacaru, A. M., Howarth, D. L., Yin, C., Sadler, K. C. Ethanol metabolism and oxidative stress are required for unfolded protein response activation and steatosis in zebrafish with alcoholic liver disease. Dis Model Mech. 6 (5), 1213-1226 (2013).
  15. Yin, C., Evason, K. J., Maher, J. J., Stainier, D. Y. The bHLH transcription factor Hand2 marks hepatic stellate cells in zebrafish: Analysis of stellate cell entry into the developing liver. Hepatology. , (2012).
  16. Lassen, N., et al. Molecular cloning, baculovirus expression, and tissue distribution of the zebrafish aldehyde dehydrogenase 2. Drug Metab Dispos. 33 (5), 649-656 (2005).
  17. Reimers, M. J., Hahn, M. E., Tanguay, R. L. Two zebrafish alcohol dehydrogenases share common ancestry with mammalian class I, II, IV, and V alcohol dehydrogenase genes but have distinct functional characteristics. J Biol Chem. 279 (37), 38303-38312 (2004).
  18. Zhang, C., Ellis, J. L., Yin, C. Inhibition of vascular endothelial growth factor signaling facilitates liver repair from acute ethanol-induced injury in zebrafish. Dis Model Mech. , (2016).
  19. Vonghia, L., et al. Acute alcohol intoxication. Eur J Intern Med. 19 (8), 561-567 (2008).
  20. Wittekind, D. Traditional staining for routine diagnostic pathology including the role of tannic acid. 1. Value and limitations of the hematoxylin-eosin stain. Biotech Histochem. 78 (5), 261-270 (2003).
  21. Westerfield, M. . The Zebrafish Book: A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Danio Rerio). , (2007).
  22. Theise, N. D. Histopathology of alcoholic liver disease. Clinical Liver Disease. 2 (2), (2013).
  23. Lorent, K., et al. Inhibition of Jagged-mediated Notch signaling disrupts zebrafish biliary development and generates multi-organ defects compatible with an Alagille syndrome phenocopy. Development. 131 (22), 5753-5766 (2004).
  24. Huang, M., Xu, J., Shin, C. H. Development of an Ethanol-induced Fibrotic Liver Model in Zebrafish to Study Progenitor Cell-mediated Hepatocyte Regeneration. J Vis Exp. (111), (2016).
  25. Paredes, J. F., Lopez-Olmeda, J. F., Martinez, F. J., Sanchez-Vazquez, F. J. Daily rhythms of lipid metabolic gene expression in zebra fish liver: Response to light/dark and feeding cycles. Chronobiol Int. 32 (10), 1438-1448 (2015).
  26. Meeker, N. D., Hutchinson, S. A., Ho, L., Trede, N. S. Method for isolation of PCR-ready genomic DNA from zebrafish tissues. Biotechniques. 43 (5), 610-614 (2007).
  27. van der Velden, Y. U., et al. The serine-threonine kinase LKB1 is essential for survival under energetic stress in zebrafish. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (11), 4358-4363 (2011).
check_url/55630?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ellis, J. L., Yin, C. Histological Analyses of Acute Alcoholic Liver Injury in Zebrafish. J. Vis. Exp. (123), e55630, doi:10.3791/55630 (2017).

View Video