Summary

تسجيل اللدونة متشابك في شرائح هيبوكامبال الحاد تحتفظ في صغيرة الحجم-إعادة التدوير، ونضح-، وغمر من نوع نظام الدائرة

Published: January 01, 2018
doi:

Summary

ويصف هذا البروتوكول تحقيق الاستقرار في مستوى الأوكسجين في كمية صغيرة من المخزن المؤقت المعاد تدويرها والجوانب المنهجية لتسجيل تعتمد على النشاط اللدونة متشابك في شرائح هيبوكامبال الحاد المغمورة.

Abstract

على الرغم من أن التجارب التي أجريت على شرائح المخ كانت تستخدم منذ عام 1951، ما زالت المشاكل التي تقلل من احتمال تحقيق تحليلاً مستقرة وناجحة للتحوير انتقال متشابك عند إجراء التسجيلات الميدانية المحتملة أو داخل الخلايا. هذه المخطوطة يصف الجوانب المنهجية التي قد تكون مفيدة في تحسين الظروف التجريبية للحفاظ على شرائح الدماغ الحادة وتسجيل إمكانات بوستسينابتيك ضادات الميدانية في دائرة غمر متاحة تجارياً مع وحدة كاربوجينيشن إلى الخارج. ويساعد التدفق–كاربوجينيشن لتحقيق الاستقرار في مستوى الأوكسجين في التجارب التي تعتمد على إعادة تدوير الخزان العازلة الصغيرة لتعزيز فعالية التكاليف التجارب المخدرات. وبالإضافة إلى ذلك، يعرض المخطوطة تجارب الممثل أن دراسة آثار أنماط كاربوجينيشن مختلفة ونماذج التحفيز على اللدونة متشابك تعتمد على نشاط انتقال متشابك.

Introduction

في عام 1951، كانت التجارب شريحة الدماغ الحادة التي ذكرت أول أجرى1. في عام 1971، بعد التسجيلات الناجحة في المختبر من الكمثرى قشرة2،3 واكتشاف أن الخلايا العصبية هيبوكامبال مترابطة العرض على طول المحور سيبتوتيمبورال الحصين4، واحدة من وكان أول التسجيلات في المختبر لنشاط الخلايا العصبية هيبوكامبال حققت5. التشابه بين المعلمات العصبية أو نيوروستروكتورال من الخلايا العصبية تحت ظروف فيفو في و في المختبر لا تزال موضوعا ل المناقشة بعض6، ولكن في عام 1975، أشارت شوارتزكروين7 القاعدية يتم الاحتفاظ بخصائص الخلايا العصبية في المختبر وأن التحفيز عالية التردد (أي، تيتانيزاتيون) من أفيرينتس في تشكيل هيبوكامبال الحث تيسير إمكانات متشابك8طويلة الأمد. الكهربية من تسجيل نشاط الخلايا العصبية في المختبر توسعا كبيرا في دراسة الآليات الخلوية المعتمدة على النشاط اللدونة متشابك9،10، التي اكتشفت في عام 1973 بالنعيم et al. 11 في فيفو التجارب مع الأرانب.

دراسة نشاط الخلايا العصبية أو إشارات المسارات في شرائح المخ، ولا سيما في الشرائح هيبوكامبال الحاد، الآن أداة قياسية. ولكن المثير للدهشة، تجارب في المختبر لم تكون موحدة، كما يدل على ذلك النهج المتعددة التي لا تزال قائمة لإعداد وصيانة لشرائح هيبوكامبال الحاد. ريد et al. (1988) 12 استعراض التحديات المنهجية للحفاظ على شرائح الدماغ الحادة في أنواع مختلفة من الدوائر شريحة والخيارات للاستحمام المستوى المتوسط والأس الهيدروجيني ودرجة الحرارة والأكسجين. هذه المعلمات التي ما زال من الصعب التحكم في قاعة التسجيل بسبب عناصر مصنوعة خصيصا للأجهزة في المختبر تسجيل شريحة. منشورات يمكن العثور على أنه قد تساعد على التغلب على بعض التحديات المنهجية والتي تصف أنواع جديدة من غمر شريحة الدوائر، مثل نظام ميكروبيرفوسيون 3D فراغي13، دائرة مع تعزيز تدفق الصفحي والأكسجين العرض14، ونظام ب مراقبة درجة الحرارة المحوسبة15، و نظام تسجيل غرفة متعددة16. هذه الغرف ليست سهلة لبناء، تعتمد معظم العلماء على الدوائر شريحة المتاحة تجارياً. يمكن تحميل هذه الدوائر على نظام مجهر، مما يسمح للجمع بين الكهربية والأسفار التصوير18،،من1719. نظراً لهذه الدوائر تبقى شرائح المخ المغمورة في السائل الدماغي النخاعي الاصطناعية (قام)، بمعدل تدفق عالية من المخزن المؤقت الحل تحتاج إلى صيانة، زيادة نفقات تطبيق المخدرات. وتحقيقا لهذه الغاية، ادخلنا نظام التروية إعادة تدوير مع تدفق–كاربوجينيشن الذي يوفر الاستقرار كافية لتسجيل الإمكانات الميدانية في دائرة غمر شريحة باستخدام وحدة تخزين صغيرة نسبيا قام طويلة الأجل. وبالإضافة إلى ذلك، يمكننا تلخيص كيف يؤثر استخدام هذا النظام التجريبي كاربوجينيشن/التروية نتائج تعتمد على النشاط اللدونة متشابك10 وكيف ينظم متشابك تثبيط استطالة حقيقية النواة 2 عامل كيناز (eEF2K) 20من انتقال العدوى.

Protocol

وأبقى على الحيوانات وفقا للمعايير المقررة لرعاية الحيوان والإجراءات لمعاهد علوم المخ والدولة مفتاح المختبر من الطبية بيولوجيا الأعصاب من جامعة فودان، شانغهاي، الصين. 1-حل إعداد ملاحظة: انظر الجدول للمواد. إعداد المخزن المؤقت تشريح (حل معدلة جي): 92 مم كلوريد الصوديو?…

Representative Results

في المقطع بروتوكول، وصفت لنا إعداد شرائح هيبوكامبال الحاد من الجزء البطني والوسيطة لتشكيل هيبوكامبال (الشكل 1) من الفئران الذكور C57BL/6 وذكور جرذان ويستار (5-8 أسابيع). يساعد على المحافظة على استقرار وضع نصفي الكرة الأرضية على منصة تقطيع اللحم ويزيل الحاجة إل…

Discussion

على الرغم من أن واجهة شريحة الدوائر يحمل أكثر قوة الردود متشابك25،26،،من2728، غمر دوائر توفير راحة إضافية لتسجيل التصحيح-المشبك والأسفار التصوير. وهكذا، لقد قمنا بوصف عدة جوانب من التسجيلات الميدانية المحتملة في شرائح هي…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

قد أجرى، وتحليلها، وتصميم التجارب وكتبت المخطوطة. مركزي وس. ب. وساعدت في إعداد الشكل وإجراء التجارب. هذا العمل كان يدعمها تشرف (31320103906) والمشروع 111 (B16013) على يد

Materials

Reagents required
NaCl Sinopharm Chemical Reagent, China 10019318
KCl Sinopharm Chemical Reagent, China 10016318
KH2PO4 Sinopharm Chemical Reagent, China 10017618
MgCl2·6H2O Sinopharm Chemical Reagent, China 10012818
CaCl2 Sinopharm Chemical Reagent, China 10005861
NaHCO3 Sinopharm Chemical Reagent, China 10018960
Glucose Sinopharm Chemical Reagent, China 10010518
NaH2PO4 Sinopharm Chemical Reagent, China 20040718
HEPES Sigma H3375
Sodium pyruvate Sigma A4043
MgSO4 Sinopharm Chemical Reagent, China 20025118
NaOH Sinopharm Chemical Reagent, China 10019718
Tools and materials for dissection
Decapitators Harvard apparatus 55-0012 for rat decapitation
Bandage Scissors SCHREIBER 12-4227 for mouse decapitation
double-edge blade Flying Eagle, China 74-C
IRIS Scissors RWD, China S12003-09
Bone Rongeurs RWD, China S22002-14
Spoon Hammacher  HSN 152-13
dental cement spatula Hammacher  HSN 016-15
dental double end excavator Blacksmith Surgical, USA BS-415-017
Vibrating Microtome Leica, Germany VT1200S
surgical blade  RWD, China S31023-02
surgical holder RWD, China S32007-14
Electrophysiology equipment and materials
Vertical Pipette Puller Narishige, Japan PC-10
Vibration isolation table Meirits, Japan ADZ-A0806
submerged type recording chamber Warner Instruments RC-26GLP
thermostatic water bath Zhongcheng Yiqi,China HH-1
4 Axis Micromanipulator Sutter, USA MP-285, MP-225
Platinum Wire World Precision Instruments PTP406
Amplifier Molecular Devices, USA Multiclamp 700B
Data Acquisition System Molecular Devices, USA Digidata 1440A
Anaysis software Molecular Devices, USA Clampex 10.2
Fluorescence Microscope Nikon, Japan FN1
LED light source Lumen Dynamics Group, Canada X-cite 120LED
micropipettes Harvard apparatus GC150TF extracelluar recording
borosilicate micropipettes Sutter, USA BF150-86 patch clamp
tungsten electrode A-M Systems, USA 575500
peristaltic pump Longer, China BT00-300T
tubes for peristaltic pump ISMATEC, Wertheim, Germany SC0309 1x inflow, ID: 1.02mm
tubes for peristaltic pump ISMATEC, Wertheim, Germany SC0319 2x tubes for outflow, ID: 2.79 mm
CCD camera PCO, Germany pco.edge sCMOS
lens cleaning paper Kodak
50 ml conical centrifuge tube Thermo scientific 339652
Prechamber Warner Instruments BSC-PC
Inline heater Warner Instruments SF-28
Temperature Controller Warner Instruments TC-324B

References

  1. McIlwain, H. Metabolic response in vitro to electrical stimulation of sections of mammalian brain. Biochem J. 48 (4), (1951).
  2. McIlwain, H., Richards, C. D., Somerville, A. R. Responses in vitro from the piriform cortex of the rat, and their susceptibility to centrally-acting drugs. J Neurochem. 14 (9), 937-938 (1967).
  3. Yamamoto, C., McIlwain, H. Electrical activities in thin sections from the mammalian brain maintained in chemically-defined media in vitro. J Neurochem. 13 (12), 1333-1343 (1966).
  4. Andersen, P., Bliss, T. V., Lomo, T., Olsen, L. I., Skrede, K. K. Lamellar organization of hippocampal excitatory pathways. Acta Physiol Scand. 76 (1), 4-5 (1969).
  5. Skrede, K. K., Westgaard, R. H. The transverse hippocampal slice: a well-defined cortical structure maintained in vitro. Brain Res. 35 (2), 589-593 (1971).
  6. Kirov, S. A., Sorra, K. E., Harris, K. M. Slices have more synapses than perfusion-fixed hippocampus from both young and mature rats. J Neurosci. 19 (8), 2876-2886 (1999).
  7. Schwartzkroin, P. A. Characteristics of CA1 neurons recorded intracellularly in the hippocampal in vitro slice preparation. Brain Res. 85 (3), 423-436 (1975).
  8. Schwartzkroin, P. A., Wester, K. Long-lasting facilitation of a synaptic potential following tetanization in the in vitro hippocampal slice. Brain Res. 89 (1), 107-119 (1975).
  9. Reymann, K. G., Frey, J. U. The late maintenance of hippocampal LTP: requirements, phases, ‘synaptic tagging’, ‘late-associativity’ and implications. Neuropharm. 52 (1), 24-40 (2007).
  10. Bliss, T. V., Collingridge, G. L., Morris, R. G. Synaptic plasticity in health and disease: introduction and overview. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 369 (1633), 20130129 (2014).
  11. Bliss, T. V., Gardner-Medwin, A. R. Long-lasting potentiation of synaptic transmission in the dentate area of the unanaestetized rabbit following stimulation of the perforant path. J Physiol. 232 (2), 357-374 (1973).
  12. Reid, K. H., Edmonds, H. L., Schurr, A., Tseng, M. T., West, C. A. Pitfalls in the Use of Brain-Slices. Prog Neurobiol. 31 (1), 1-18 (1988).
  13. Rambani, K., Vukasinovic, J., Glezer, A., Potter, S. M. Culturing thick brain slices: an interstitial 3D microperfusion system for enhanced viability. J Neurosci Methods. 180 (2), 243-254 (2009).
  14. Hajos, N., et al. Maintaining network activity in submerged hippocampal slices: importance of oxygen supply. Eur J Neurosci. 29 (2), 319-327 (2009).
  15. Redondo, R. L., et al. Synaptic tagging and capture: differential role of distinct calcium/calmodulin kinases in protein synthesis-dependent long-term potentiation. J Neurosci. 30 (14), 4981-4989 (2010).
  16. Stopps, M., et al. Design and application of a novel brain slice system that permits independent electrophysiological recordings from multiple slices. J Neurosci Methods. 132 (2), 137-148 (2004).
  17. Behnisch, T., Matsushita, S., Knopfel, T. Imaging of gene expression during long-term potentiation. Neuroreport. 15 (13), 2039-2043 (2004).
  18. Karpova, A., et al. Encoding and transducing the synaptic or extrasynaptic origin of NMDA receptor signals to the nucleus. Cell. 152 (5), 1119-1133 (2013).
  19. Karpova, A., Mikhaylova, M., Thomas, U., Knopfel, T., Behnisch, T. Involvement of protein synthesis and degradation in long-term potentiation of Schaffer collateral CA1 synapses. J Neurosci. 26 (18), 4949-4955 (2006).
  20. Weng, W., Chen, Y., Wang, M., Zhuang, Y., Behnisch, T. Potentiation of Schaffer-Collateral CA1 Synaptic Transmission by eEF2K and p38 MAPK Mediated Mechanisms. Front Cell Neurosci. 10 (247), (2016).
  21. Meduna, L. J., Jackman, A. I. Carbon dioxide inhalation therapy. Res Publ Assoc Res Nerv Ment Dis. 31, 280-286 (1953).
  22. Edwards, F. A., Konnerth, A., Sakmann, B., Takahashi, T. A thin slice preparation for patch clamp recordings from neurones of the mammalian central nervous system. Pflugers Arch. 414 (5), 600-612 (1989).
  23. Mathis, D. M., Furman, J. L., Norris, C. M. Preparation of acute hippocampal slices from rats and transgenic mice for the study of synaptic alterations during aging and amyloid pathology. J Vis Exp. (49), (2011).
  24. Yuanxiang, P., Bera, S., Karpova, A., Kreutz, M. R., Mikhaylova, M. Isolation of CA1 nuclear enriched fractions from hippocampal slices to study activity-dependent nuclear import of synapto-nuclear messenger proteins. J Vis Exp. (90), e51310 (2014).
  25. Leutgeb, J. K., Frey, J. U., Behnisch, T. LTP in cultured hippocampal-entorhinal cortex slices from young adult (P25-30) rats. J Neurosci Meth. 130 (1), 19-32 (2003).
  26. Kloosterman, F., Peloquin, P., Leung, L. S. Apical and basal orthodromic population spikes in hippocampal CA1 in vivo show different origins and patterns of propagation. J Neurophysiol. 86 (5), 2435-2444 (2001).
  27. Thiemann, W., Malisch, R., Reymann, K. G. A new microcirculation chamber for inexpensive long-term investigations of nervous tissue in vitro. Brain Res Bull. 17 (1), 1-4 (1986).
  28. Shetty, M. S., et al. Investigation of Synaptic Tagging/Capture and Cross-capture using Acute Hippocampal Slices from Rodents. J Vis Exp. (103), (2015).
  29. Du, H., Lin, J., Zuercher, C. Higher efficiency of CO2 injection into seawater by a venturi than a conventional diffuser system. Bioresour Technol. 107, 131-134 (2012).
  30. Weinman, J., Mahler, J. An Analysis of Electrical Properties of Metal Electrodes. Med Electron Biol Eng. 2, 299-310 (1964).
  31. Fanselow, M. S., Dong, H. W. Are the dorsal and ventral hippocampus functionally distinct structures. Neuron. 65 (1), 7-19 (2010).
  32. Wang, M., et al. Translation of BDNF-gene transcripts with short 3′ UTR in hippocampal CA1 neurons improves memory formation and enhances synaptic plasticity-relevant signaling pathways. Neurobiol Learn Mem. , (2016).
check_url/55936?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Weng, W., Li, D., Peng, C., Behnisch, T. Recording Synaptic Plasticity in Acute Hippocampal Slices Maintained in a Small-volume Recycling-, Perfusion-, and Submersion-type Chamber System. J. Vis. Exp. (131), e55936, doi:10.3791/55936 (2018).

View Video