Summary

הכנת הדוגמא וניתוח של נתונים ביטוי גנים מבוססת RNASeq דג זברה

Published: October 27, 2017
doi:

Summary

פרוטוקול זה מציג גישה לניתוח transcriptome כל מעוברים דג זברה, הזחלים, או תאים ממוינים. אנו כוללים בידוד של RNA, מסלול ניתוח של נתוני RNASeq, המבוססות על לרביעיית-PCR אימות של שינויים בביטוי הגנים.

Abstract

הניתוח של שינויים בביטוי הגנים העולמי הוא כלי חשוב לזיהוי הרומן משעולים שבבסיס פנוטיפים שנצפו. דג זברה היא דוגמנית מעולה עבור הערכה מהירה של כל transcriptome של אוכלוסיות תאים כל בעלי חיים או בודדים בשל הקלות של בידוד של RNA ממספרים גדולים של בעלי חיים. כאן מוצג פרוטוקול לניתוח ביטוי הגנים העולמי ב עוברי דג זברה באמצעות רצפי RNA (RNASeq). אנו מתארים הכנה של RNA כל העוברים, או אוכלוסיות תאים תוך שימוש בתא מיון בבעלי חיים מהונדס. אנו מתארים גם גישה לניתוח של RNASeq נתונים ראשוניים לזיהוי מועשר מסלולים ותנאים ג’ין אונטולוגיה (קדימה) ערכות נתונים של ביטוי גנים גלובלית. לבסוף, אנו מספקים פרוטוקול אימות של ג’ין ביטוי שינויים באמצעות כמותיים רוורס טרנסקריפטאז PCR (לרביעיית-PCR). פרוטוקולים אלה יכול לשמש עבור ניתוח השוואתי של שליטה וקבוצות ניסיוני של דג זברה כדי לזהות שינויים בביטוי הגנים הרומן, לספק תובנות פנוטיפים עניין מולקולרית.

Introduction

ניתוח השוואתי של ביטוי גנים העולמי הוא כלי חשוב לזיהוי גנים הרומן לתרום פנוטיפים שנצפו. ניתוחים כאלה בדרך כלל לסמוך על הערכה כמותית של שפע התעתיק בהשוואה בין ניסיוני ולשלוט דגימות. גישות יישוב, כגון לרביעיית-PCR הם יחסית מהיר ומדויק לחקירה של שינויים בביטוי גנטית יחיד. רצפי RNA (RNASeq) מציעה גישה רחבה, ללא השערות כדי לזהות שינויים משמעותיים בביטוי הגנים בין דגימות, שהופך אותו עכשיו התקן בחקירות אלה על-פני מערכות ניסויות.

דג זברה הופיעו כמודל בולטים על פני תחומים רבים של המחלה. פותח במקור עבור השירות שלהם בלימודי ביולוגיה התפתחותית, עקב שלהם פוריות גבוהה ועלות נמוכה יחסית של אחזקה, שימוש ניסיוני דג זברה התפתח לכלול מגוון רחב של פנוטיפים מ עובריים בשלבים למבוגרים כמו גם בתור מבחני מערך רחב של מולקולרית1,2,3. אכן, יתרונות אלה להפוך במחקרים מולקולריים מכניסטית מהירה, חסכונית בגלל הקלות של רכישת כמויות גדולות של חומר בשילוב עם הקלות של מניפולציה גנטית והן סביבתיים בכל שלבי החיים. יתר על כן, הטבע שקוף של דג זברה עוברי וזחלים להפוך אותו אידיאלי ליצירת קווים כתב מהונדס ספציפיים תאים או רקמות ומאפשר ויוו ויזואליזציה של אוכלוסיות תאים בדידים4. ניצול של קווים אלה מאפשר הכללית של הביטוי מפענוח סוגי תאים מבודדים ספציפיים המבוססים על ביטוי גנים כתב.

כאן אנו מציגים פרוטוקול מקיף לניתוח ביטוי גנים גלובלית באמצעות RNASeq אחרי תרבות של דג זברה עוברי. שינויים גנטיים ניסיוני, כולל מורפולינו (מו)-מבוסס גנים ארעי או גנום בתיווך CRISPR עריכה, הוצגו במקומות אחרים5,6,7. אנו לכן להתמקד פרוטוקול מפורט עבור בידוד של RNA מעוברים כל או מיון הטרנסגניים תאים המבטאים כתב ואחריו ניתוח חישובית פשוטה של תוצאות RNASeq באמצעות שביל כלים ותנאי אונטולוגיה (קדימה) הגן. לבסוף, כללנו אסטרטגיה עבור אימות של שינויים בביטוי הגנים מאת כמותיים רוורס טרנסקריפטאז PCR (לרביעיית-PCR). פרוטוקולים אלה חלים דג זברה העוברים חשופים למגוון רחב של תנאי הניסוי, כולל השוואה של מוטציות גנטיות או תנאים סביבתיים.

Protocol

כל הפרוטוקולים בעלי חיים המפורטות להלן הם לפי ואושרו על ידי אוניברסיטת מרילנד אכפת חיה מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC). 1. הכנה העובר Generating עוברי דרך לטבעי להזדווגות תרבות עוברי עד 3 חודשים של גיל, הרבייה בגרות 5 , 8 . הפר…

Representative Results

מיון באופן שונה לידי ביטוי גנים: כדי לזהות באופן שונה ביטוי הגנים בשלב הזחל של דג זברה מודלים של תסמונת Alström, תסמונת Bardet-Biedl (BBS), שסימנו או alms1 או bbs1 התמלילים באמצעות הזרקת בעבר מאומת splice חסימת-MOs לתוך עוברי פראי-סוג דג זברה1…

Discussion

הגישה המתוארת בעלון פרוטוקול זה מציע אסטרטגיה יחסית מהירה וחסכונית עבור transcriptome ברמת ניתוח של כל בעלי חיים או אוכלוסיות תאים ממוינים מסוים. דג זברה מספק מודל יתרון עבור סוג זה של מחקר בשל נוחות במהירות על מנת לייצר כמויות גדולות של הפעלת חומר, להקל על יישום גנטי או תנאים סביבתיים ניסיוני, ו…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי R01DK102001 (N.A.Z.), P30DK072488 (N.A.Z.), T32DK098107 (T.L.H. ו- J.E.N.).

Materials

Commercial Reagents
TriZol Thermo Scientific 15596026 lysis reagent
TrypLE Gibco 12604013 dissociation buffer 1
FACSMax Genlantis T200100 dissociation buffer 2
DEPC-treated water Sigma 95284
FirstStrand cDNA conversion Thermo Scientific K1621 cDNA conversion kit
2X SYBR Green Master Mix Roche 4707516001 qRT-PCR Master Mix
FACS buffer Fisher Scientific 50-105-9042
chloroform Sigma Aldrich 288306
sodium acetate Sigma Aldrich S2889
Name Company Catalog Number Comments
Zebrafish Strains
Tuebingen ZIRC ZL57
ins2a:mCherry ZIRC ZL1483
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
40 micron cell strainer Sigma CLS431750
FACS tube BD Falcon 352063
hemocytometer Sigma Z359629
Dissecting Microscope Zeiss
Inverted Microscope Zeiss
Nanodrop Thermo Scientific
Illumina HiSeq Illumina
LightCycler 480 Roche
Mating tanks 1.0L Crossing Tank Set Aquaneering ZHCT100
FACS tube 5 mL polypropylene tube BD Falcon 352063
Name Company Catalog Number Comments
Software
Excel Microsoft
Consensus Path DB http://cpdb.molgen.mpg.de/
GO Enrichment Analysis http://geneontology.org/page/go-enrichment-analysis

References

  1. Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. . Zebrafish. , (2002).
  2. Detrich, H. W., Zon, L., Westerfield, M. . The Zebrafish: Disease Models and Chemical Screens. , (2017).
  3. Detrich, H. W., Zon, L. I., Westerfield, M. . The Zebrafish: Genetics, Genomics, and Transcriptomics. , (2016).
  4. Detrich, H. W. . The Zebrafish: Genetics, Genomics and Informatics. , (2011).
  5. Avdesh, A., et al. Regular care and maintenance of a zebrafish (Danio rerio) laboratory: an introduction. J Vis Exp. (69), e4196 (2012).
  6. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of zebrafish embryos to analyze gene function. J Vis Exp. (25), (2009).
  7. Hwang, W. Y., et al. Efficient genome editing in zebrafish using a CRISPR-Cas system. Nat Biotechnol. 31 (3), 227-229 (2013).
  8. Westerfield, M. . The zebrafish book. A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). , (2000).
  9. Rossi, A., et al. Genetic compensation induced by deleterious mutations but not gene knockdowns. Nature. 524 (7564), 230-233 (2015).
  10. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203 (3), 253-310 (1995).
  11. Samsa, L. A., Fleming, N., Magness, S., Qian, L., Liu, J. Isolation and Characterization of Single Cells from Zebrafish Embryos. J Vis Exp. (109), (2016).
  12. . IDT Primerquest Tool Available from: https://www.idtdna.com/Primerquest/Home/Index (2017)
  13. Heid, C. A., Stevens, J., Livak, K. J., Williams, P. M. Real time quantitative PCR. Genome Res. 6 (10), 986-994 (1996).
  14. Leitch, C. C., Lodh, S., Prieto-Echague, V., Badano, J. L., Zaghloul, N. A. Basal body proteins regulate Notch signaling through endosomal trafficking. J Cell Sci. 127 (Pt 11), 2407-2419 (2014).
  15. Lodh, S., Hostelley, T. L., Leitch, C. C., O’Hare, E. A., Zaghloul, N. A. Differential effects on beta-cell mass by disruption of Bardet-Biedl syndrome or Alstrom syndrome genes. Hum Mol Genet. 25 (1), 57-68 (2016).
  16. Hostelley, T. L., Lodh, S., Zaghloul, N. A. Whole organism transcriptome analysis of zebrafish models of Bardet-Biedl Syndrome and Alstrom Syndrome provides mechanistic insight into shared and divergent phenotypes. BMC Genomics. 17, 318 (2016).
check_url/56187?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hostelley, T. L., Nesmith, J. E., Zaghloul, N. A. Sample Preparation and Analysis of RNASeq-based Gene Expression Data from Zebrafish. J. Vis. Exp. (128), e56187, doi:10.3791/56187 (2017).

View Video