Summary

Analysere kommunikationen mellem monocytter og primær brystkræftceller i en ekstracellulære Matrix ekstrakt (ECME)-baseret tre-dimensionelle System

Published: January 08, 2018
doi:

Summary

Her beskriver vi en tre-dimensionel kultur metode til at analysere morfologi af primær brystkræftceller, samt at studere deres direkte/indirekte interaktioner med monocytter og resultater som kollagen nedbrydning, immun celle rekruttering, celle invasion, og fremme af cancer-relaterede inflammation.

Abstract

Indlejret i den ekstracellulære matrix (ECM), kommunikere normale og neoplastiske epitelceller nøje med hæmatopoietisk og ikke-hæmatopoietisk celler, således betydeligt påvirke normale væv homøostase og sygdom resultat. I brystkræft spiller tumor-associerede makrofager (TAMs) en afgørende rolle i sygdomsprogression, metastaser og gentagelse; derfor forstå mekanismer af monocyt chemoattraction tumor mikromiljø og deres interaktioner med tumorceller er vigtige til bekæmpelse af sygdommen. Her, giver vi en detaljeret beskrivelse af en tredimensional (3D) fælles kultur system af menneskelig brystkræft (BrC) celler og humane monocytter. BrC celler produceret høj basal niveauer af regulerede på aktivering, normal T-celle udtrykt og udskilles (RANTES), monocyt chemoattractant protein-1 (MCP-1) og granulocyt-makrofag koloni-stimulerende faktor (G-CSF), mens der i fælles kultur med monocytter, pro-inflammatoriske cytokiner Interleukin (IL) -1 beta (IL-1β) og IL-8 blev beriget med matrix metalloproteinases (MMP) -1, MMP-2 og MMP-10. Denne tumor stroma mikromiljø forfremmet modstand mod anoikis i MCF-10A 3D acini-lignende strukturer, chemoattraction af monocytter og invasion af aggressive BrC celler. Protokollerne præsenteres her giver en overkommelig alternativ til at studere intra-tumor kommunikation og er et eksempel på det store potentiale, som in vitro- 3D celle systemer giver for at afhøre specifikke funktioner for tumor biology relateret til tumor aggression.

Introduction

Tumor biologi er langt mere indviklet end hidtil antaget. Montering beviser viser, at tumorceller er mere end en simpel bulk af ukontrolleret prolifererende celler; Tværtimod synes forskellige neoplastiske celler til at udføre forskellige funktioner viser høj organisation og hierarki inden for tumor1. Tumorceller er også i intime kommunikation med ikke-transformeret celler: makrofager, fibroblaster, lymfocytter, adipocytter, endotelceller, blandt andre celler er alle nedsænket i stillads proteiner og polysaccharider, der udgør ECM. Mange direkte og indirekte vekselvirkninger er etableret mellem transformeret og ikke-transformeret celler og med ECM, som udøver en kraftig indflydelse på sygdommen resultatet2,3. I det konkrete tilfælde med BrC er det særlig vigtigt at dissekere meddelelse af BrC celler med TAMs, overvejer at TAMs har vist sig for at spille en afgørende rolle i udviklingen af tumor, øge risikoen for metastaser og for sygdom tilbagefald4 ,5.

For at analysere samhandel tumorsygdomme interaktioner og deres mulige udfald, nye 3D in vitro- metoder er blevet udviklet baseret på brugen af ECM ekstrakter, der giver en langt mere kompleks mikromiljø, tættere på virkeligheden af tumor biology, i sammenligning med de konventionelle éncellelag cellekulturer som celler vokse fastgjort til plastik. Petersen og Bissell6 leveret den første model af nonmalignant, og ondartet brystkirtler epitelceller kulturperler på en laminin-rige basalmembranen og var de første til at beskrive de 3D organotypic strukturer, der diskriminerer nonmalignant menneskelige bryst epitelceller fra deres maligne modstykker. Et årti senere, modellen udviklet af Debnath, Muthuswamy, og Brugge7,8,9 leveret et værdifuldt redskab for at belyse den biologiske veje i fare under maligne transformation af glandulær acini, sådan som store acini dannelse på grund af ukontrolleret spredning, virksomhedsflytninger af stram vejkryds proteiner som bevis for nedsat celle polarisering, og tab af acini lumen som følge af celle modstand mod anoikis, en type af programmeret celledød, der opstår i forankring-afhængige celler når de løsne sig fra de omkringliggende ECM. Modeller af Sameni, Jedeszko og Sloane har fokuseret på imaging proteolytiske aktivitet af celler, som er nært beslægtet med invasiv, en anden afgørende træk af tumor malignitet10,11,12. Disse modeller er afhængige af protein matricer blandet med forskellige fluorescens-bratkølet protein substrater (DQ-gelatine, DQ-kollagen I, og DQ-kollagen IV), i hvilke fluorescerende signaler er vejledende for den proteolytisk nedbrydning af kollagen. 3D-modeller er også bruges til at undersøge stamceller egenskaber af både ikke-transformeret og tumorceller, i hvilken celle aggregater, også kaldt spheroids, kan blive kulturperler i suspension eller i ECM-lignende proteiner spørgekriterierne for mekanismer af Celledifferentiering, asymmetrisk celledeling, celle til celle overholdelse og celle motilitet13,14. Invasion assays giver mulighed for prøvning af den iboende aggressivitet af tumor og identifikation af de molekyler, der tjener som chemoattractants under invasive proces15. Samlede, 3D modeller repræsenterer en overkommelig diversificering af in vitro- cellekultur, der mere nøje afspejler normale og muterede væv morfogenese.

Vi har designet en 3D celle Co kultur system baseret på ovennævnte modeller7,10,11ved hjælp af både menneskelige kommercielle BrC cellelinjer kendte aggressive potentiale (luminale og triple-negativ typer) og primære celler eksplanterede fra BrC patienter. Vi først udviklet en model hvor enten ikke-aggressive (MCF-7) eller aggressive (MDA-MB-231) BrC celler var Co kulturperler med U937 monocytter i en ekstracellulære matrix ekstrakt (ECME)-baseret 3D system, der tillod direkte celle-celle interaktioner. Disse fælles kulturer blev brugt til at bestemme, hvordan kommunikationen mellem disse to celle lineages påvirket transskription af et sæt af gener relateret til kræft aggressiv adfærd. En væsentlig forøgelse af cyclooxygenase-2 (COX-2) udskrift konstateredes, faldt sammen med en øget produktion af en af sine produkter, prostaglandin E2 (PGE2), en konstatering af, at fremhævet rollen betændelse i kræft progression. Øget transkription af MMP blev også observeret der korreleret med større kollagen proteolyse når aggressive MDA-MB-231 celler var Co kulturperler med U937 monocytter i DQ-kollagen IV-holdige kulturer. Bemærk, vores co kulturer ikke understøtter den antagelse, at celle-celle interaktion mekanismer er nødvendig for kollagen nedbrydning. Det foreslog snarere, at kommunikation mellem to celle lineages blev formidlet af udskilles molekyler. Derudover indeholdt analysere høstet fra disse fælles kultur assays opløselige faktorer, der uorganiseret glandulær acini dannet af ikke-transformeret MCF-10A celler13. Det blev fundet, aggressive og primære BrC celler udskilles forhøjede niveauer af monocyt kemotaktisk molekyler MCP-1, GM-CSF og RANTES. Dermed, vi skitseret en 3D kultur hvor celler var adskilt i celle kultur skær at forhindre celle-celle interaktioner. Disse kulturer blev brugt til at behandle den indirekte kommunikation mellem BrC celler og monocytter. For disse assays, ikke-aggressiv og pågående kommercielle BrC cellelinjer og primære BrC celler og tre forskellige typer af humane monocytter: kommercielle U937 og THP-1 celler og primære monocytter (PMs) isoleret fra perifert blod af raske donorer, (alle monocytter blev brugt i en ikke-aktiveret tilstand) blev brugt. Øgede koncentrationer af inflammatoriske cytokiner IL-1β og IL-8 blev observeret at være beriget med fælles kultur. Ligeledes blev det konstateret at MMP-1, MMP-2 og MMP-10 var også øget i BrC celler-monocyt Co kulturer og således styrke tidligere resultater14. I dette manuskript præsenteres en punkt for punkt arbejdsproces af primære BrC celler isolation og test i 3D kulturer sammen med repræsentative resultater. Dette arbejde udgør et godt eksempel på det store potentiale, som in vitro- 3D celle systemer giver for at afhøre specifikke aspekter af tumor biology.

Protocol

Prøver fra BrC patienter blev indhentet fra vævsbank Unidad de Investigación eget Virología y Cáncer, Hospital Infantil de México Federico Gómez. Denne undersøgelse blev godkendt af den videnskabelige, etiske, og biosikkerhedsforanstaltninger review bestyrelserne for Hospital Infantil de México Federico Gómez: Comité de Investigación, Comité de Ética da Investigación og Comité de Bioseguridad. Alle patienter blev prospektivt indskrevet og blev informeret om karakteren af undersøgelsen: der er villige til…

Representative Results

Morfologisk analyse af BrC celler i 3D kulturer: Morfologi af primære BrC celler vokser i 3D kulturer ved lave og høje tætheder blev studeret over 5 dage. Under de første 48 timer, celler overholder ECME og fastholde en lav befolkningstæthed. På dette tidspunkt, kan det klart være værdsat, at celler præsentere et aflangt spindel-lignende form, nogle med to eller flere lange cytoplasmatisk fremskrivninge…

Discussion

Epitelceller vokser i en 3D fysisk kropsbygning og deres interaktion med ECM proteiner er afgørende for væv homøostase. Mange kræft undersøgelser har været baseret på celler dyrkes i encellelag (2D) og selv om de har været afgørende for at forstå mange aspekter af tumordannelse og progression, encellelag sammenfatte ikke de karakteristika, der ECM pålægger celler, for forekomst: begrænse spredning, vedhæftning-afhængige celle overlevelse, apikale basolateral polaritet, ECM remodeling, Celledifferentiering,…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af CONACyT FONSEC SSA/IMSS/ISSSTE projekt nr. 233061 til Ezequiel M. Fuentes-Pananá og af Fondo de Apoyo a la Investigación, Hospital Infantil de México Federico Gómez (projektnummer HIM-2014-053). Espinoza-Sánchez NA er en ph.d.-studerende fra Programa de Doctorado da Ciencias Biomédicas, Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM) og modtaget stipendium 231663 fra CONACYT. E-S NA, også anerkende den finansielle støtte fra det mexicanske Institut for socialsikring (IMSS).

Materials

U937 American Type Culture Collection ATCC  CRL-1593.2 Monocytic cell line/histiocytic lymphoma 
THP-1 American Type Culture Collection ATCC  TIB-202 Monocytic cell line/acute monocytic leukemia 
MCF-10A American Type Culture Collection ATCC  CRL-10317 Non-transformed breast cell line
MCF-7 American Type Culture Collection ATCC  HTB-22 Breast Cancer Cell line
T47D American Type Culture Collection ATCC  HTB-133 Breast Cancer Cell line
HS578T American Type Culture Collection ATCC  HTB-126 Breast Cancer Cell line
MDA-MB-231 American Type Culture Collection ATCC  HTB-26 Breast Cancer Cell line
RPMI 1640 medium GIBCO BRL Life Technologies 11875-093
DMEM High Glucose  GIBCO BRL Life Technologies 11964-092 4.5 g/L glucose
DMEM/F12 GIBCO BRL Life Technologies 11039-021
Antibiotic/Antimycotic GIBCO BRL Life Technologies 15240-062 100 U/mL penicillin, 100 µg/mL streptomycin, and 0.25 µg/mL Fungizone
Fetal Bovine Serum GIBCO BRL Life Technologies 16000-044
Horse serum  GIBCO BRL Life Technologies 16050114
0.05% Trypsin-EDTA 1X GIBCO BRL Life Technologies 25300-062
PBS 1X (Phosphate Buffered Saline GIBCO BRL Life Technologies 20012-027
Epidermal Growth Factor (EGF) PeproTech AF-100-15 (1.00mg)
Insulin SIGMA-ALDRICH I1882-100MG
Hydrocortisone SIGMA-ALDRICH H088-5G
Cholera toxin Vibrio cholerae SIGMA-ALDRICH C8052-1MG
Matrigel  Corning Inc 356237 Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) mouse sarcoma, extracellular matrix extract, Store at -20°C until use at 4°C
GM-CSF PeproTech 300-03
MCP-1 PeproTech 300-04
RANTES PeproTech 300-06
IL-8 PeproTech 200-08
IL-1β PeproTech 200-01B
Crystal-violet Hycel México 541
Paraformaldehyde SIGMA-ALDRICH P6148
Transwell permeable supports (inserts) Corning Inc 3422 6.5 mm diameter, 8 µm pore size/24-well plates 
Transwell permeable supports (inserts) Thermofisher Scientific 140620 6.5 mm diameter, 0.4 µm pore size/24-well plates 
Monocyte Isolation Kit II Human  Miltenyi Biotec 130-091-153
LS Columns Miltenyi Biotec 130-042-401
Human Cytokine/Chemokine Magnetic Bead Panel Kit 96 Well Plate Assay EMD Millipore HCYTOMAG-60K
Magpix with xPonent software (laser based fluorescent analytical test instrumentation) Luminex Corporation 40-072
Lab-Tek chamber slide with cover (8 well) Nalge Nunc International 177402
Glass bottom microwell 35mm petri  dishes MatTek Corp. P35G-1.5-14-C

References

  1. Rich, J. N. Cancer stem cells: understanding tumor hierarchy and heterogeneity. Medicine (Baltimore). 95 (1), 2-7 (2016).
  2. Wang, M., et al. Role of tumor microenvironment in tumorigenesis. J Cancer. 8 (5), 761-773 (2017).
  3. Quail, D. F., Joyce, J. A. Microenvironmental regulation of tumor progression and metastasis. Nat Med. 19 (11), 1423-1437 (2013).
  4. Sica, A., et al. Macrophage polarization in tumour progression. Semin Cancer Biol. 18 (5), 349-355 (2008).
  5. Mantovani, A., Marchesi, F., Malesci, A., Laghi, L., Allavena, P. Tumour-associated macrophages as treatment targets in oncology. Nat Rev Clin Oncol. , (2017).
  6. Petersen, O. W., Ronnov-Jessen, L., Howlett, A. R., Bissell, M. J. Interaction with basement membrane serves to rapidly distinguish growth and differentiation pattern of normal and malignant human breast epithelial cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 89 (19), 9064-9068 (1992).
  7. Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S. Morphogenesis and oncogenesis of MCF-10A mammary epithelial acini grown in three-dimensional basement membrane cultures. Methods. 30 (3), 256-268 (2003).
  8. Debnath, J., et al. The role of apoptosis in creating and maintaining luminal space within normal and oncogene-expressing mammary acini. Cell. 111 (1), 29-40 (2002).
  9. Muthuswamy, S. K., Li, D., Lelievre, S., Bissell, M. J., Brugge, J. S. ErbB2, but not ErbB1, reinitiates proliferation and induces luminal repopulation in epithelial acini. Nat Cell Biol. 3 (9), 785-792 (2001).
  10. Sameni, M., Dosescu, J., Moin, K., Sloane, B. F. Functional imaging of proteolysis: stromal and inflammatory cells increase tumor proteolysis. Mol Imaging. 2 (3), 159-175 (2003).
  11. Sameni, M., et al. MAME models for 4D live-cell imaging of tumor: microenvironment interactions that impact malignant progression. J Vis Exp. (60), (2012).
  12. Jedeszko, C., Sameni, M., Olive, M. B., Moin, K., Sloane, B. F. Visualizing protease activity in living cells: from two dimensions to four dimensions. Curr Protoc Cell Biol. 4, 20 (2008).
  13. Chimal-Ramirez, G. K., et al. MMP1, MMP9, and COX2 expressions in promonocytes are induced by breast cancer cells and correlate with collagen degradation, transformation-like morphological changes in MCF-10A acini, and tumor aggressiveness. Biomed Res Int. 2013, 279505 (2013).
  14. Espinoza-Sanchez, N. A., Chimal-Ramirez, G. K., Mantilla, A., Fuentes-Panana, E. M. IL-1beta, IL-8, and Matrix Metalloproteinases-1, -2, and -10 Are Enriched upon Monocyte-Breast Cancer Cell Cocultivation in a Matrigel-Based Three-Dimensional System. Front Immunol. 8, 205 (2017).
  15. Li, Y., Wang, L., Pappan, L., Galliher-Beckley, A., Shi, J. IL-1beta promotes stemness and invasiveness of colon cancer cells through Zeb1 activation. Mol Cancer. 11, 87 (2012).
  16. Gallagher, S., Winston, S. E., Fuller, S. A., Hurrell, J. G. Immunoblotting and immunodetection. Curr Protoc Mol Biol. 10, 18 (2008).
  17. Troeberg, L., Nagase, H. Zymography of metalloproteinases. Curr Protoc Protein Sci. 21, 15 (2004).
  18. Arevalo-Romero, H., Meza, I., Vallejo-Flores, G., Fuentes-Panana, E. M. Helicobacter pylori CagA and IL-1beta Promote the Epithelial-to-Mesenchymal Transition in a Nontransformed Epithelial Cell Model. Gastroenterol Res Pract. 2016, 4969163 (2016).
  19. Reed, J. R., Leon, R. P., Hall, M. K., Schwertfeger, K. L. Interleukin-1beta and fibroblast growth factor receptor 1 cooperate to induce cyclooxygenase-2 during early mammary tumourigenesis. Breast Cancer Res. 11 (2), 21 (2009).
  20. Ma, L., et al. Epidermal growth factor (EGF) and interleukin (IL)-1beta synergistically promote ERK1/2-mediated invasive breast ductal cancer cell migration and invasion. Mol Cancer. 11, 79 (2012).
  21. Grande, S. M., Bannish, G., Fuentes-Panana, E. M., Katz, E., Monroe, J. G. Tonic B-cell and viral ITAM signaling: context is everything. Immunol Rev. 218, 214-234 (2007).
  22. Benton, G., Arnaoutova, I., George, J., Kleinman, H. K., Koblinski, J. Matrigel: from discovery and ECM mimicry to assays and models for cancer research. Adv Drug Deliv Rev. 79-80, 3-18 (2014).
  23. Worthington, P., Pochan, D. J., Langhans, S. A. Peptide Hydrogels – Versatile Matrices for 3D Cell Culture in Cancer Medicine. Front Oncol. 5, 92 (2015).
  24. Tibbitt, M. W., Anseth, K. S. Hydrogels as extracellular matrix mimics for 3D cell culture. Biotechnol Bioeng. 103 (4), 655-663 (2009).
  25. Schlaermann, P., et al. A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro. Gut. 65 (2), 202-213 (2016).
  26. Pompaiah, M., Bartfeld, S. Gastric Organoids: An Emerging Model System to Study Helicobacter pylori Pathogenesis. Curr Top Microbiol Immunol. 400, 149-168 (2017).
  27. Takebe, T., et al. Vascularized and functional human liver from an iPSC-derived organ bud transplant. Nature. 499 (7459), 481-484 (2013).
  28. Takasato, M., et al. Directing human embryonic stem cell differentiation towards a renal lineage generates a self-organizing kidney. Nat Cell Biol. 16 (1), 118-126 (2014).
check_url/56589?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Espinoza-Sánchez, N. A., Chimal-Ramírez, G. K., Fuentes-Pananá, E. M. Analyzing the Communication Between Monocytes and Primary Breast Cancer Cells in an Extracellular Matrix Extract (ECME)-based Three-dimensional System. J. Vis. Exp. (131), e56589, doi:10.3791/56589 (2018).

View Video