Summary

तीन आयामी भड़काऊ मानव ऊतक Gingiva के समकक्ष

Published: April 03, 2018
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Summary

प्रोटोकॉल का लक्ष्य इन विट्रो मेंएक भड़काऊ मानव gingiva मॉडल का निर्माण करने के लिए है । यह ऊतक मॉडल सह तीन आयामी परिस्थितियों के तहत मानव कोशिकाओं, HaCaT keratinocytes, मसूड़ों fibroblasts, और THP-1 मैक्रोफेज, के तीन प्रकार की खेती । इस मॉडल ऐसे मसूड़े की सूजन और periodontitis के रूप में periodontal रोगों की जांच के लिए लागू किया जा सकता है ।

Abstract

Periodontal रोग (जैसे मसूड़े की सूजन और periodontitis) वयस्कों में दांत नुकसान के प्रमुख कारण हैं । gingiva में सूजन periodontal रोगों के बुनियादी physiopathology है । periodontal रोगों के वर्तमान प्रयोगात्मक मॉडल जानवरों के विभिन्न प्रकार में स्थापित किया गया है । हालांकि, पशु मॉडलों की physiopathology है कि मनुष्यों से अलग है, यह मुश्किल सेलुलर और आणविक तंत्र का विश्लेषण करने के लिए और periodontal रोगों के लिए नई दवाओं का मूल्यांकन करने के लिए बना । यहां, हम मानव भड़काऊ ऊतक gingiva के समकक्ष (iGTE) इन विट्रो मेंपुनर्निर्माण के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं । हम पहले मानव मसूड़ों fibroblasts (एचजीएफ) और मानव त्वचा एपिडर्मल keratinocytes (HaCaT), तीन आयामी परिस्थितियों के तहत सहित मनुष्य कोशिकाओं के दो प्रकार के उपयोग द्वारा gingiva (GTE) के मानव ऊतक समकक्ष का निर्माण । हम एक ऊतक पंच का उपयोग करके एक घाव मॉडल बनाने के लिए GTE में एक छेद पंच । अगले, मानव THP-1 कोलेजन जेल के साथ मिश्रित monocytes GTE में छेद में इंजेक्ट कर रहे हैं । के adimistration द्वारा 10 एनजी/एमएल phorbol 12-myristate 13-एसीटेट (पमा) के लिए 72 ज, THP-1 कोशिकाओं मैक्रोफेज में भड़काऊ घावों फार्म करने के लिए GTE (iGTE) में विभेदित (iGTE भी हो सकता है stumilated के साथ 2 µ g/mL (lipopolysaccharides) के लिए 48 h सूजन शुरू करने के लिए ). IGTE एक तीन आयामी वास्तुकला के साथ मानव कोशिकाओं का उपयोग भड़काऊ gingiva के इन विट्रो मॉडल में पहला है । IGTE periodontal रोगों में प्रमुख रोग परिवर्तन (immunocytes activition, fibryoblasts, उपकला कोशिकाओं, monocytes और मैक्रोफेज के बीच intracellular बातचीत) को दर्शाता है । GTE, घायल GTE, और iGTE बहुमुखी उपकरण के रूप में इस्तेमाल किया जा सकता है घाव भरने का अध्ययन, ऊतक पुनर्जनन, सूजन, सेल सेल संपर्क, और स्क्रीन periodontal रोगों के लिए संभावित दवाओं ।

Introduction

Periodontal रोग वयस्कों में दांत नुकसान का प्रमुख कारण हैं । मसूड़े की सूजन और periodontitis सबसे आम periodontal रोग हैं । दोनों वर्तमान फिल्म gingiva में तीव्र या जीर्ण भड़काऊ परिवर्तन मध्यस्थता । मसूड़े की सूजन तीव्र सूजन की विशेषता है, जबकि periodontitis आमतौर पर जीर्ण सूजन के रूप में प्रस्तुत करता है । ऊतकवैज्ञानिक स्तर पर, बैक्टीरियल घटक प्रतिरक्षा कोशिकाओं के सक्रियकरण ट्रिगर, जैसे मैक्रोफेज, लिम्फोसाइटों, प्लाज्मा कोशिकाओं, और मस्तूल कोशिकाओं1,2. इन प्रतिरक्षा कोशिकाओं, विशेष रूप से मैक्रोफेज, (मसूड़ों उपकला कोशिकाओं, fibroblasts, endothelial कोशिकाओं, और osteoblasts सहित) periodontal ऊतक में भड़काऊ घावों में जिसके परिणामस्वरूप स्थानीय कोशिकाओं के साथ बातचीत3,4. periodontal रोगों के प्रयोगात्मक मॉडल जैसे चूहों, हंसटर, खरगोश, ferrets, कुत्ते, और रहनुमाओं के रूप में पशुओं के विभिन्न प्रकार में स्थापित किया गया है । हालांकि, पशु मॉडलों की physiopathology है कि मनुष्यों से अलग है, यह मुश्किल सेलुलर और आणविक तंत्र का विश्लेषण करने और periodontal रोगों की नई दवाओं का मूल्यांकन करने के लिए5। periodontal जीवाणुओं और monolayer मानव मौखिक उपकला कोशिकाओं की सह खेती periodontal संक्रमण के तंत्र की जांच करने के लिए इस्तेमाल किया गया है6. फिर भी, मौखिक कोशिकाओं की monolayer संस्कृतियों बरकरार ऊतक के तीन आयामी (3 डी) सेलुलर वास्तुकला की कमी; इसलिए, वे इन विट्रो स्थिति में नकल नहीं कर सकते ।

यहां, 3 डी भड़काऊ मानव ऊतक gingiva के समकक्ष (iGTE) इन विट्रो मेंperiodontal रोगों का प्रतिनिधित्व करने के लिए स्थापित कर रहे हैं । periodontal रोगों के इस 3 डी मॉडल monolayer सेल संस्कृतियों और जानवरों के मॉडल के बीच एक मध्यवर्ती स्थिति में रह रहे हैं । HaCaT keratinocytes, मसूड़ों fibroblasts, और THP-1 मैक्रोफेज सहित मानव कोशिकाओं के तीन प्रकार, सह कोलेजन जेल पर खेती कर रहे हैं, और भड़काऊ सर्जक द्वारा उत्तेजित करने के लिए iGTE का निर्माण । IGTE बारीकी से सेल भेदभाव, सेल सेल संपर्क, और gingiva में मैक्रोफेज सक्रियण की vivo स्थितियों में simulates । इस मॉडल दवा स्क्रीनिंग के लिए कई संभव आवेदन किया है और periodontal रोगों में नए औषधीय दृष्टिकोण का परीक्षण, साथ ही साथ घाव भरने में सेलुलर और आणविक तंत्र का विश्लेषण करने के लिए, सूजन, और ऊतक पुनर्जनन.

Protocol

इस प्रोटोकॉल मानव मसूड़ों ऊतक समकक्ष, मसूड़ों घाव मॉडल, और मसूड़े की सूजन मॉडल बनाने के लिए डिज़ाइन किया गया है । ह्यूमन स्किन एपिडर्मल keratinocytes (HaCaT) को कृपया ड्यूश्स Fusenig (Krebsforschungszentrum, जर्मनी)7के प्रोफेस…

Representative Results

HaCaT कक्षों में चरण-कंट्रास्ट सूक्ष्म अवलोकन (चित्र 2a) के अंतर्गत विशिष्ट keratinocyte आकृतियां प्रदर्शित की गई हैं । स्कैनर इलेक्ट्रॉन सूक्ष्म (SEM) छवियों से पता चला है कि HaCaT सेल सतहों कई microv…

Discussion

इस प्रोटोकॉल पिछले रिपोर्ट8,21,22द्वारा वर्णित मसूड़ों ऊतक समकक्ष और चमड़े के नीचे वसा-ऊतक समकक्ष बनाने के तरीकों पर आधारित है । हालांकि यह एक सरल और आसान तरीका है, कुछ क…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम के हिस्से में विज्ञान के संवर्धन के लिए जापान सोसायटी द्वारा समर्थित किया गया (JSPS) अनुदान में वैज्ञानिक अनुसंधान के लिए सहायता (२६८६१६८९ और 17K11813) । लेखकों को ठीक करने के लिए श्री Nathaniel ग्रीन शुक्रिया अदा करना चाहूंगा ।

Materials

Collagen type I-A Nitta Gelatin Inc For making dermis of GTE
MEM-alpha Thermo Fisher Scientific 11900073 Cell culture medium
Cell Culture Insert (for 24-well plate), pore size 3.0 μm Corning, Inc. 353096 For tissue culture
GlutaMAX Thermo Fisher Scientific 35050061 Cell culture reagent
DMEM Thermo Fisher Scientific 31600034 Cell culture medium
KnockOut Serum Replacement Thermo Fisher Scientific 10828028 Cell culture reagent
Tissue puncher Shibata system service co., LTD SP-703 For punching holes in GTE
RPMI 1640 Thermo Fisher Scientific 31800022 Cell culture medium
BSA Sigma-Aldrich A3294 For immunostaining
Hoechst 33342 (NucBlue Live Cell stain) Thermo Fisher Scientific R37605 For labeling nuclei
Fluorescence mount medium Dako For mounting samples after immunostaining
Anti-Cytokeratin 8+18 antibody [5D3] abcam ab17139 For identifying epithelium
Scaning electron microscope Hitachi, Ltd. HITACHI S-4000 For observing samples' surface topography and composition
Confocal laser scanning microscopy LSM 700; Carl Zeiss Microscopy Co., Ltd. LSM 700 For observing samples' immunofluorescence staining
Anti-Cytokeratin 19 antibody abcam ab52625 For identifying epithelium
Anti-vimentin antibody abcam ab92547 For identifying fibroblasts and activated macrophages
Anti-TE-7 antibody Millipore CBL271 For identifying fibroblasts in the dermis
Anti-CD68 antibody Sigma-Aldrich SAB2700244 For identifying macrophages
Human CD14 Antibody R&D Systems MAB3832-SP For identifying macrophages
Alexa Fluor 594-conjugated secondary goat anti-rabbit antibody Thermo Fisher Scientific A11012 For immunofluorescence staining
Alexa Fluor 488-conjugated secondary goat anti-mouse antibody Thermo Fisher Scientific A11001 For immunofluorescence staining
EVOS FL Cell Imaging System Thermo Fisher Scientific For observing the sample's immunofluorescence staining
THP-1 cells Riken BRC cell bank RCB1189 For making iGTE
PMA(Phorbol 12-myristate 13-acetate) Sigma-Aldrich P8139 For differentiatting THP-1 cells

References

  1. Cekici, A., Kantarci, A., Hasturk, H., Van Dyke, T. E. Inflammatory and immune pathways in the pathogenesis of periodontal disease. Periodontology 2000. 64 (1), 57-80 (2014).
  2. Hasturk, H., Kantarci, A., Van Dyke, T. E. Oral Inflammatory Diseases and Systemic Inflammation: Role of the Macrophage. Frontiers in Immunology. 3, 118 (2012).
  3. Koh, T. J., DiPietro, L. A. Inflammation and wound healing: The role of the macrophage. Expert reviews in molecular medicine. 13, e23 (2011).
  4. Mescher, A. L. Macrophages and fibroblasts during inflammation and tissue repair in models of organ regeneration. Regeneration. 4 (2), 39-53 (2017).
  5. Struillou, X., Boutigny, H., Soueidan, A., Layrolle, P. Experimental Animal Models in Periodontology: A Review. The Open Dentistry Journal. 4, 37-47 (2010).
  6. Han, Y. W., et al. Interactions between Periodontal Bacteria and Human Oral Epithelial Cells: Fusobacterium nucleatum Adheres to and Invades Epithelial Cells. Infection and Immunity. 68 (6), 3140-3146 (2000).
  7. Boukamp, P., Petrussevska, R. T., Breitkreutz, D., Hornung, J., Markham, A., Fusenig, N. E. Normal keratinization in a spontaneously immortalized aneuploid human keratinocyte cell line. J Cell Biol. 106 (3), 761-771 (1988).
  8. Xiao, L., Miwa, N. Hydrogen-rich water achieves cytoprotection from oxidative stress injury in human gingival fibroblasts in culture or 3D-tissue equivalents, and wound-healing promotion, together with ROS-scavenging and relief from glutathione diminishment. Hum Cell. 30 (2), 72-87 (2017).
  9. Tsuchiya, S., Yamabe, M., Yamaguchi, Y., Kobayashi, Y., Konno, T., Tada, K. Establishment and characterization of a human acute monocytic leukemia cell line (THP-1). Int J Cancer. 26 (2), 171-176 (1980).
  10. Ara, T., Kurata, K., Hirai, K., Uchihashi, T., Uematsu, T., Imamura, Y., Furusawa, K., Kurihara, S., Wang, P. L. Human gingival fibroblasts are critical in sustaining inflammation in periodontal disease. J Periodontal Res. 44 (1), 21-27 (2009).
  11. Park, E. K., Jung, H. S., Yang, H. I., Yoo, M. C., Kim, C., Kim, K. S. Optimized THP-1 differentiation is required for the detection of responses to weak stimuli. Inflamm Res. 56 (1), 45-50 (2007).
  12. Sharif, O., Bolshakov, V. N., Raines, S., Newham, P., Perkins, N. D. Transcriptional profiling of the LPS induced NF-kappaB response in macrophages. BMC Immunol. 8, 1 (2007).
  13. Shetty, S., Gokul, S. Keratinization and its disorders. Oman Med J. 27 (5), 348-357 (2012).
  14. Klinge, B., Matsson, L., Attström, R. Histopathology of initial gingivitis in humans. A pilot study. J Clin Periodontol. 10 (4), 364-369 (1983).
  15. Nagarakanti, S., Ramya, S., Babu, P., Arun, K. V., Sudarsan, S. Differential expression of E-cadherin and cytokeratin 19 and net proliferative rate of gingival keratinocytes in oral epithelium in periodontal health and disease. J Periodontol. 78 (11), 2197-2202 (2007).
  16. Goodpaster, T., Legesse-Miller, A., Hameed, M. R., Aisner, S. C., Randolph-Habecker, J., Coller, H. A. An immunohistochemical method for identifying fibroblasts in formalin-fixed, paraffin-embedded tissue. J Histochem Cytochem. 56 (4), 347-358 (2008).
  17. Langeland, K., Rodrigues, H., Dowden, W. Periodontal disease, bacteria, and pulpal histopathology. Oral Surg Oral Med Oral Pathol. 37 (2), 257-270 (1974).
  18. Holness, C. L., Simmons, D. L. Molecular cloning of CD68, a human macrophage marker related to lysosomal glycoproteins. Blood. 81 (6), 1607-1613 (1993).
  19. Mor-Vaknin, N., Punturieri, A., Sitwala, K., Markovitz, D. M. Vimentin is secreted by activated macrophages. Nat Cell Biol. 5 (1), 59-63 (2003).
  20. Xiao, L., Aoshima, H., Saitoh, Y., Miwa, N. The effect of squalane-dissolved on adipogenesis-accompanied oxidative stress and macrophage in a preadipocyte-monocyte co-culture system. Biomaterials. 31 (23), 5976-5985 (2010).
  21. Xiao, L., Aoshima, H., Saitoh, Y., Miwa, N. Highly hydroxylated fullerene localizes at the cytoskeleton and inhibits oxidative stress in adipocytes and a subcutaneous adipose-tissue equivalent. Free Radic Biol Med. 51 (7), 1376-1389 (2011).
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Cite This Article
Xiao, L., Okamura, H., Kumazawa, Y. Three-dimensional Inflammatory Human Tissue Equivalents of Gingiva. J. Vis. Exp. (134), e57157, doi:10.3791/57157 (2018).

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