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方法文章

低血清条件下诱导心脏前体细胞向内皮细胞分化

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DOI:

10.3791/58370

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2019年1月7日

 ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

本方案描述了一种心脏前体细胞的内皮分化技术,重点介绍血清浓度和细胞接种密度如何影响内皮分化潜能。

摘要

心脏祖细胞(CPCs)在损伤后心脏再生中可能具有治疗潜力。在成年哺乳动物心脏中,内源性CPCs极为稀少,但扩增后的CPCs可能对细胞治疗具有应用价值。其应用的前提是能够通过明确且高效的方案,可控地分化为多种心脏谱系细胞。此外,从患者或临床前疾病模型中分离的CPCs在体外扩增后,可为研究疾病机制提供有价值的工具。 体外 扩增后,从患者或临床前疾病模型中分离的CPCs可为疾病机制的研究提供有效的研究工具。

目前的研究使用不同的标志物来鉴定心脏祖细胞(CPCs)。然而,并非所有这些标志物均在人类中表达,这限制了某些临床前研究的转化价值。无论分离技术或标志物表达如何,均可适用的分化方案将有助于实现CPCs在细胞治疗应用中的标准化扩增与预处理。本文描述了在低胎牛血清(FBS)浓度和低细胞密度条件下对CPCs进行预处理,可促进其向内皮细胞分化。通过使用小鼠和大鼠CPCs的两个不同亚群,我们证明在以下方案中,层粘连蛋白(laminin)比纤连蛋白(fibronectin)更适合作为此目的的基质:在含有维持多能性添加剂并添加3.5% FBS的培养基中培养2–3天后,将CPCs以低于60%融合度接种于层粘连蛋白上,并在不含添加剂、仅含低浓度FBS(0.1%)的培养基中培养20–24小时,随后转入内皮细胞分化培养基进行分化。由于CPCs为异质性细胞群体,血清浓度和孵育时间可能需要根据特定CPC亚群的特性进行调整。考虑到这一点,该技术也可应用于其他类型的CPCs,为研究CPCs的分化潜能与机制及其在来源于相应疾病模型的CPCs中如何受疾病影响提供了有效方法。 <60%融合度,并在无添加物、低浓度FBS(0.1%)的培养基中培养20–24小时,随后转入内皮细胞分化培养基进行分化。由于CPCs为异质性细胞群体,血清浓度和孵育时间可能需要根据特定CPC亚群的特性进行调整。考虑到这一因素,该技术也可适用于其他类型的CPCs,为研究CPCs的分化潜能与机制及其在来源于相应疾病模型的CPCs中如何受疾病影响提供了有效方法。

引言

近期研究表明,成年哺乳动物心脏中存在常驻的心脏祖细胞(CPCs)1,2,3,且CPCs可能在心脏损伤后细胞治疗中具有应用价值4,5。此外,从患有罕见心肌病的患者或相应疾病模型中分离出的扩增CPCs,可为药物筛选和疾病机制研究提供有效的模型6,7。

从成年心脏中分离出的心脏祖细胞(CPCs)具有干细胞/祖细胞特性1,2,3,8,表现为多能性、克隆形成能力以及自我更新能力。然而,存在多种不同的(亚)群CPCs,其表面标志物谱各不相同,例如c-kit、Sca-1等,或通过不同的分离技术获得(表1)。目前已建立多种培养与分化方案1

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方案

用于细胞分离的小鼠使用遵循《实验动物护理和使用指南》以及瑞士动物保护法,并已获得瑞士州级主管部门的批准。

注意:从小鼠心脏分离 Sca-1+/CD31- SP-CPC 的方法基本如先前所述34,但有部分修改。所用材料与试剂详见材料表。所有实验中,从小鼠分离的心脏 SP-CPC 均以类似细胞系的方式进行扩增、传代和使用。本研究使用第 7 至 20 代的细胞。

1. 组织制备

注意:所有使用小鼠的实验必须根据相关指南和法规进行。本方案使用四只小鼠。在本方案的以下部分中,直径为100 mm的培养皿记为P100,直径为60 mm的培养皿记为P60。

  1. 每只小鼠按 200 mg/kg 剂量腹腔注射戊巴比妥钠,通过夹趾反应确认其完全麻醉。
  2. 用 70% 乙醇擦拭胸部,用剪刀剪开皮肤和胸壁,暴露胸腔。
  3. 用镊子提起心脏,用剪刀在基部剪下心脏,将心脏放入含 25 mL(P60 为 5 mL)冷磷酸盐缓冲液(PBS)的 P100 培养皿中(每 P100 放 3 至 5 个心脏,每 P60 放 1 至 2 个心脏)。
  4. 用镊子挤压心脏,将心腔内的血液挤出(

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结果

小鼠 SP-C 阳性肺泡上皮细胞的分离:

本研究中,我们采用了根据侧群(SP)表型分离的小鼠CPCs,而大鼠CPCs的结果则经修改并添加自先前的报告(已获许可)(图8)33。

高密度和低密度细胞在不同血清浓度下的细胞增殖:

我们之前的研究表明,心源性谱系标志物的mRNA表达在培养的最初24小时内即发生变化。已知细胞外基质会影响细胞命运的决定,包括内皮分化35。为了探索促进心脏前体细胞(CPCs)向内皮谱系分化的适宜条件,本研究在6孔板(生长面积:9.6 cm2<.......

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讨论

本方案的优势:

本方案提供了一种CPCs向内皮细胞分化的技术。我们发现,在低血清浓度和低细胞密度条件下,内皮分化效率得以提高,且在此条件下,层粘连蛋白(LN)比纤连蛋白(FN)更适合作为基质。我们使用了两种不同类型的CPCs:大鼠CPCs(以类似细胞系的方式使用)和小鼠SP-CPCs(经分离与扩增获得)。值得注意的是,该方案适用于这两种CPCs。目前的技术已能够使科研人员从基因修饰小鼠、临床前疾病模型以及人体中分离并扩增原代CPCs28,36。将本方案应用于分离获得的CPCs,不仅有助于疾病机制的研究,也有助于探索新的治疗靶点。

心肌前体细胞目前正处于细胞治疗的临床试验阶段4,5,通过从患者体内分离细胞,并在体外处理后回输 体外 扩增。在这方面,本文所述方案有助于在移植前识别出增强此.......

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披露

作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

作者感谢Vera Lorenz在实验过程中提供的有益支持,以及巴塞尔大学和巴塞尔大学医院生物医学系(DBM)流式细胞术平台工作人员的帮助。本研究由巴塞尔大学的Stay-on track项目(资助Michika Mochizuki)提供支持。Gabriela M. Kuster获得了瑞士国家科学基金会的资助(资助号310030_156953)。

....

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
培养基
Iscove's 改良 Dulbecco's 培养基(IMDM)ThermoFisher#12440
Dulbecco改良型Eagle培养基(DMEM)/F12营养混合物默克#D8437
青霉素-链霉素(P/S)ThermoFisher#15140122
胎牛血清(FBS)Hyclone#SH300713.5%(谱系诱导时为0.1%)
L-谷氨酰胺 ThermoFisher#25030终浓度 2 mM
谷胱甘肽默克#G6013
重组人表皮生长因子(EGF)Peprotech#AF-100-15
重组碱性成纤维细胞生长因子(FGF)Peprotech#AF-100-18B
B27 补充剂ThermoFisher#17504044
心肌营养素1 Peprotech#250-25
凝血酶Diagontech AG,瑞士#100-125
Hanks' 平衡盐溶液 (HBSS) CaCl2(-), MgCl2(-)ThermoFisher#14170
0.05 % 胰蛋白酶-EDTAThermoFisher#25300
T75 培养瓶Sarstedt#83.3911
内皮分化  
内皮细胞生长培养基(EGM)-2 BulletKitLonza#CC-3162
Ham's F-12K(Kaighn's)培养基ThermoFisher#21127
层粘连蛋白 默克#L2020
纤连蛋白 默克#F4759用ddH2O稀释
6孔板Falcon#353046
甲醛溶液默克#F1635在 PBS 中稀释 1:10(终浓度为 3.7%)
Triton X-100默克#934200.1% 的 ddH2O 溶液
正常山羊血清(10%)ThermoFisher#50062Z
抗血管性血友病因子抗体Abcam#ab69941:100,溶于10%山羊血清中
山羊抗兔IgG,Alexa Fluor 546ThermoFisher#A110101:500,溶于10%山羊血清中
4',6-二脒基-2-苯基吲哚二盐酸盐(DAPI)ThermoFisher#622471:500,溶于ddH2O 
SlowFade 抗荧光淬灭试剂盒ThermoFisher#S2828
BX63 宽场显微镜奥林巴斯
管状结构形成
96孔板Falcon#353072
带滤网帽的5 ml圆底管Falcon#352235
基质胶生长因子减量康宁#354230
IX50 宽场显微镜奥林巴斯
Sca-1+/CD31- 心脏侧群细胞的分离34 
试剂
戊巴比妥钠 50 mg/ml 兽用院内医院药房#9077862工作溶液:200 mg/kg
磷酸盐缓冲液(PBS),不含 CaCl₂,不含 MgCl₂ThermoFisher#20012
Hanks' 平衡盐溶液 (HBSS) CaCl2(-), MgCl2(-), 酚红(-)ThermoFisher#14175配制 500 mL HBSS 加 2% FBS  用于淬灭胶原酶B活性 
Dulbecco改良Eagle培养基(DMEM),含1 g/L D-葡萄糖、L-谷氨酰胺、丙酮酸ThermoFisher#331885配制 DMEM + 10% FBS  + 25 mM HEPES + P/S 用于Hoechst染色
青霉素-链霉素  (P/S)ThermoFisher#15140122
HEPES 1 MThermoFisher#15630080终浓度 25 mM
胎牛血清(FBS)Hyclone#SH30071
RBC裂解缓冲液(10X)BioLegend#420301/100mL用ddH₂O稀释至1×,并通过0.2 μm滤膜过滤 µm 滤膜
胶原酶B默克#11088807001终浓度为1 mg/mL的HBSS溶液,经0.2 μm滤膜过滤 µm 滤膜
双苯并咪唑 H33342 三盐酸盐(Hoechst)默克#B2261用ddH₂O配制1 mg/mL溶液
盐酸维拉帕米 默克#V4629终浓度 83.3 µM 
APC 小鼠抗大鼠 CD31BD Biosciences#5512620.25 µ克/107细胞
FITC 标记大鼠抗小鼠 Ly-6A/E (Sca-1)BD Biosciences#5574050.6 µ克/107细胞
7-氨基放线菌素D (7-ADD)ThermoFisher#A13100.15 µ克/106细胞
APC 标记的大鼠 IgG2a k 同型对照BD Biosciences#5539320.25 µ克/107细胞
FITC 标记的大鼠 IgG2a κ 同型对照BD 生物科学#5546880.6 µ克/107细胞
材料
27G针头Terumo#NN-2719R
18G针头Terumo#NN-1838S
一次性使用无菌1 mL注射器CODAN#62.1640
移液管 3.5 mLSarstedt#86.1171.001
细胞筛 40 µm blueBD Biosciences #352340
细胞滤网 100 µm 黄色BD Biosciences#352360
Lumox 培养皿 50Sarstedt#94.6077.305
P100 培养皿康宁#353003
60 mm 培养皿康宁#353004
小鼠
行年龄繁殖
C57BL/6NRj / 雄性12 周自主研发
产品名称公司目录编号
试剂
Iscove's 改良 Dulbecco's 培养基 (IMDM)ThermoFisher#12440
Dulbecco改良Eagle培养基(DMEM)/F12 Ham营养混合物默克#D8437
青霉素-链霉素  (P/S)ThermoFisher#15140122
胎牛血清(FBS)Hyclone#SH30071
L-谷氨酰胺 ThermoFisher#25030
谷胱甘肽默克#G6013
B27 补充剂ThermoFisher#17504044
重组人表皮生长因子(EGF)Peprotech#AF-100-15
重组碱性成纤维细胞生长因子(FGF)Peprotech#AF-100-18B
心肌营养素1 Peprotech#250-25
凝血酶Diagontech AG,瑞士 #100-125
内皮细胞生长培养基(EGM)-2 BulletKitLonza#CC-3162
培养基成分概述。部分信息与上述内容相同,但按培养基1-3的成分顺序进行整理。 
产品名称培养基18培养基2培养基3
试剂培养谱系诱导内皮分化
Iscove's 改良 Dulbecco's 培养基 (IMDM)35%35%
Dulbecco改良Eagle培养基(DMEM)/F12 Ham营养混合物65%65%
青霉素-链霉素  (P/S)1%1%
胎牛血清(FBS)3.5%≤0.1%
L-谷氨酰胺 2 mM2 mM
谷胱甘肽0.2 nM0.2 nM
B27 补充剂1.3%
重组人表皮生长因子(EGF)6.5 ng/mL
重组碱性成纤维细胞生长因子(FGF)13 ng/mL
心肌营养素1 0.65 ng/mL
凝血酶0.0005 U/mL试剂盒中包含的所有必要组分
内皮细胞生长培养基(EGM)-2 BulletKit试剂盒中包含所有必需组分

参考文献

  1. Beltrami, A. P., et al. Adult cardiac stem cells are multipotent and support myocardial regeneration. Cell. 114 (6), 763-776 (2003).
  2. Hierlihy, A. M., Seale, P., Lobe, C. G., Rudnicki, M. A., Megeney, L. A. The post-natal heart contains a myocardial stem cell population.

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