Summary

Drosophila दृश्य प्रणाली में कम प्रचुर मात्रा में कोशिकाओं का शुद्धिकरण

Published: September 26, 2018
doi:

Summary

यहाँ, हम प्रतिदीप्ति सक्रिय कक्ष छँटाई (FACS) के माध्यम से Drosophila दृश्य प्रणाली के भीतर कम बहुतायत में मौजूद कोशिकाओं को कुशलतापूर्वक अलग करने के लिए एक सेल पृथक्करण प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं.

Abstract

अगली पीढ़ी sequencing की संवेदनशीलता में हाल ही में सुधार कोशिकाओं की छोटी संख्या के लिए transcriptomic और जीनोमिक विश्लेषण के आवेदन की सुविधा है. इस प्रौद्योगिकी का उपयोग करने के लिए Drosophila दृश्य प्रणाली है, जो सेल प्रकार के एक धन विशिष्ट आनुवंशिक उपकरणों का दावा में विकास का अध्ययन, सटीक सेलुलर संकल्प के साथ विकास के आणविक आधार को संबोधित करने के लिए एक शक्तिशाली दृष्टिकोण प्रदान करता है । इस तरह के एक दृष्टिकोण के लिए संभव है, यह करने के लिए क्षमता है मज़बूती से और कुशलता से मस्तिष्क के भीतर कम बहुतायत पर मौजूद कोशिकाओं को शुद्ध करने के लिए महत्वपूर्ण है । यहां, हम एक तरीका है कि आनुवंशिक मोज़ेक प्रयोगों में एकल कोशिका क्लोनों के कुशल शुद्धि की अनुमति देता है वर्तमान । इस प्रोटोकॉल के साथ, हम लगातार प्रतिदीप्ति सक्रिय सेल छँटाई (FACS) का उपयोग कर शुद्धि के बाद एक उच्च सेलुलर उपज प्राप्त (~ सभी लेबल कोशिकाओं के 25%), और सफलतापूर्वक एक सेल के माध्यम से उत्पन्न क्लोनों पर transcriptomics विश्लेषण प्रदर्शन एक repressible सेल मार्कर (MARCM) के साथ मोज़ेक विश्लेषण । इस प्रोटोकॉल दृश्य प्रणाली में विशिष्ट कोशिका प्रकार के लिए transcriptomic और जीनोमिक विश्लेषण लागू करने के लिए आदर्श है, विकास के विभिंन चरणों के पार और विभिंन आनुवंशिक जोड़तोड़ के संदर्भ में ।

Introduction

Drosophila दृश्य प्रणाली के विकास और व्यवहार के आनुवंशिक आधार का अध्ययन करने के लिए एक उत्कृष्ट मॉडल है । यह विशिष्ट कोशिका प्रकार2,3हेर-फेर के लिए एक छवि एक सेलुलर वास्तुकला1 और एक उंनत आनुवंशिक toolkit शामिल हैं । इस प्रणाली की एक बड़ी ताकत एक सेल संकल्प के साथ ब्याज की कोशिका प्रकार में autonomously पूछताछ जीन समारोह की क्षमता है, आनुवंशिक मोज़ेक4तरीकों का उपयोग कर,5। हम अगली पीढ़ी अनुक्रमण में हाल ही में अग्रिमों के साथ इन आनुवंशिक उपकरण गठबंधन करने के लिए सेल प्रकार विशिष्ट transcriptomic और आनुवंशिक मोज़ेक प्रयोगों में एक सेल क्लोन में जीनोमिक विश्लेषण प्रदर्शन की मांग की ।

यह पूरा करने के लिए, यह एक मजबूत और कारगर तरीका चुन कर मस्तिष्क में कम प्रचुर मात्रा में कोशिका आबादी को अलग विकसित करने के लिए आवश्यक है । पहले, हम FACS के माध्यम से pupal विकास के दौरान दृश्य प्रणाली में विशिष्ट कोशिका प्रकार अलग करने के लिए एक प्रोटोकॉल विकसित की है, और आरएनए-seq6का उपयोग कर अपने transcriptomes का निर्धारण. इन प्रयोगों में, एक विशेष प्रकार की कोशिकाओं के विशाल बहुमत (जैसे R7 photoreceptors) फ्लोरोसेंट लेबल थे. इस विधि का प्रयोग, आनुवंशिक मोज़ेक प्रयोगों में, जिसमें केवल एक ही प्रकार की कोशिकाओं का एक सबसेट लेबल कर रहे हैं, हम गुणवत्ता अनुक्रमण डेटा प्राप्त करने के लिए पर्याप्त कोशिकाओं को अलग करने में विफल. इस पते के लिए, हम सेल पृथक्करण प्रोटोकॉल में सुधार के द्वारा सेलुलर उपज बढ़ाने की मांग की ।

हमारे दृष्टिकोण असंबद्ध कोशिकाओं के स्वास्थ्य को अधिकतम करने के लिए प्रोटोकॉल की कुल लंबाई कम करने के लिए किया गया था, विच्छेदन और पृथक्करण बफ़र्स फेरबदल करके सेलुलर स्वास्थ्य में सुधार, और विच्छेदित ऊतक को यांत्रिक विघटन की मात्रा को कम. हम बेहतर प्रोटोकॉल का परीक्षण7 एक repressible सेल मार्कर के साथ मोज़ेक विश्लेषण का उपयोग कर5 (MARCM) है, जो विशेष रूप से सेल प्रकार के एकल फ्लोरोसेंट लेबल क्लोन की पीढ़ी की अनुमति देता है, कि जंगली प्रकार या उत्परिवर्ती ब्याज की एक जीन के लिए कर रहे है में एक अन्यथा heterozygous मक्खी. जहां, समान शर्तों के तहत, हमारे पहले प्रोटोकॉल आरएनए-seq के लिए पर्याप्त सामग्री उत्पन्न करने में विफल रहा, बेहतर प्रोटोकॉल सफल रहा । हम एक उच्च सेलुलर उपज प्राप्त reproducibly (~ लेबल कोशिकाओं के 25%) और उच्च गुणवत्ता आरएनए-seq डेटा प्राप्त करने के रूप में कम से १,००० कोशिकाओं7

कई प्रोटोकॉल पहले Drosophila6,8,9,10,11,12,13 में विशेष कक्ष प्रकारों को अलग करने के लिए वर्णन किया गया है , 14 , 15 , 16. इन प्रोटोकॉल ज्यादातर कोशिकाओं है कि मस्तिष्क के भीतर प्रचुर मात्रा में है अलग करने के लिए इरादा कर रहे हैं । हमारे प्रोटोकॉल को अलग करने के लिए अनुकूलित है कम प्रचुर मात्रा में सेल (मस्तिष्क प्रति १०० कोशिकाओं से कम) दृश्य प्रणाली में बाद में transcriptomic और जीनोमिक विश्लेषण के लिए FACS का उपयोग कर । इस प्रोटोकॉल के साथ, हम FACS द्वारा फ्लाई दृश्य प्रणाली से कम प्रचुर मात्रा में कोशिकाओं को अलग reproducibly और आरएनए-seq द्वारा उच्च गुणवत्ता transcriptome डेटा प्राप्त करने के लिए एक रास्ता प्रदान करने के लिए लक्ष्य ।

Protocol

1. योजना प्रयोग से पहले प्रयोग शुरू करने से पहले, अगर आनुवंशिकी वांछित कोशिकाओं को विशेष रूप से लेबल करने के लिए अपेक्षा के अनुरूप काम की पुष्टि करने के लिए एक छोटे पैमाने पर पायलट प्रयोग करते हैं …

Representative Results

सामान्य योजनाप्रोटोकॉल की एक सामांय योजना चित्रा 1में दिखाया गया है । प्रोटोकॉल तीन प्रमुख भागों में विभाजित है: काम, नमूना तैयारी, अनुक्रमण और डेटा विश्लेषण फ्लाई । प्?…

Discussion

इस प्रोटोकॉल सरल और तकनीकी रूप से लागू नहीं मुश्किल है, लेकिन वहां कई महत्वपूर्ण कदम है कि अगर अनदेखी सेलुलर उपज में काफी कमी का कारण होगा रहे हैं । (स्टेप 2.3.2.) यह महत्वपूर्ण है कि पार स्वस्थ हैं, और है कि ख?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस शोध में पुरस्कार संख्या K01NS094545 के तहत स्वास्थ्य के राष्ट्रीय संस्थानों के NINDS, Neurodegenerative विकारों के अध्ययन के लिए Lefler केंद्र से andgrants को वित्त पोषित किया गया. हम मूल्यवान बातचीत के लिए चूने टैन और जेसन McEwan स्वीकार करते हैं ।

Materials

Liberase TM Roche 5401127001 Proteolytic enzyme blend
NaCl Sigma-Aldrich S3014
KCl Sigma-Aldrich P9541
NaH2PO4 Sigma-Aldrich S9638
NaHCO3 Sigma-Aldrich  S5761
Glucose Sigma-Aldrich G0350500
L-Glutathione Sigma-Aldrich G6013
Heat Inactivated Bovine Serum Sigma-Aldrich F4135
Insulin Solution Sigma-Aldrich I0516
L-Glutamine Sigma-Aldrich G7513
Penicillin-Streptomycin Solution Sigma-Aldrich P4458
Schneider's Culture Medium Gibco 21720024
Papain Worthington LK003178
2-Mercaptoethanol  Sigma-Aldrich M6250-100ML
RNeasy Micro Kit Qiagen 74004 RNA purification kit
RNase-free DNase Qiagen 79254
SuperScript II Reverse Transcriptase Life Technologies 18064-014
dNTP Mix Life Technologies R0191
MgCl2 Solution Sigma-Aldrich M1028-10X1ML
Betaine Solution Sigma-Aldrich B0300-1VL
RNaseOUT Life Technologies 10777-019
Q5 High-Fidelity 2x Master Mix New England Biolabs M0492S
MinElute PCR Purification Kit Qiagen 28004
Nextera XT DNA Library Prepration Kit Illumina FC-131-1024
Nextera XT Index Kit Illumina FC-131-1001
Test Tube with Cell Strainer Snap Cap Falcon 352235
Bottle-Top Vacuum Filter Systems Corning CLS431153
ThermoMixer F1.5 Eppendorf 5384000020
FACSAria Flow Cytometer BD Biosciences 656700
HiSeq 2500 Sequencing System Illumina SY–401–2501

References

  1. Fischbach, K. -. F., Dittrich, A. P. M. The optic lobe of Drosophila melanogaster. I. A Golgi analysis of wild-type structure. Cell and Tissue Research. 258, 441-475 (1989).
  2. Pfeiffer, B. D., et al. Tools for neuroanatomy and neurogenetics in Drosophila. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (28), 9715-9720 (2008).
  3. Jenett, A., et al. A GAL4-driver line resource for Drosophila neurobiology. Cell Rep. 2 (4), 991-1001 (2012).
  4. Xu, T., Rubin, G. M. Analysis of genetic mosaics in developing and adult Drosophila tissues. Development. 117 (4), 1223-1237 (1993).
  5. Lee, T., Luo, L. Mosaic analysis with a repressible cell marker for studies of gene function in neuronal morphogenesis. Neuron. 22 (3), 451-461 (1999).
  6. Tan, L., et al. Ig Superfamily ligand and receptor pairs expressed in synaptic partners in drosophila. Cell. 163 (7), 1756-1769 (2015).
  7. Peng, J., et al. Drosophila Fezf coordinates laminar-specific connectivity through cell-intrinsic and cell-extrinsic mechanisms. Elife. 7, (2018).
  8. Krasnow, M. A., Cumberledge, S., Manning, G., Herzenberg, L. A., Nolan, G. P. Whole animal cell sorting of Drosophila embryos. Science. 251 (4989), 81-85 (1991).
  9. Cumberledge, S., Krasnow, M. A. Preparation and analysis of pure cell populations from Drosophila. Methods in Cell Biology. 44, 143-159 (1994).
  10. Bryant, Z., et al. Characterization of differentially expressed genes in purified Drosophila follicle cells: toward a general strategy for cell type-specific developmental analysis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (10), 5559-5564 (1999).
  11. Neufeld, T. P., de la Cruz, A. F., Johnston, L. A., Edgar, B. A. Coordination of growth and cell division in the Drosophila wing. Cell. 93 (7), 1183-1193 (1998).
  12. Calvi, B. R., Lilly, M. A. Fluorescent BrdU labeling and nuclear flow sorting of the Drosophila ovary. Methods in Molecular Biology. , 203-213 (2004).
  13. Tirouvanziam, R., Davidson, C. J., Lipsick, J. S., Herzenberg, L. A. Fluorescence-activated cell sorting (FACS) of Drosophila hemocytes reveals important functional similarities to mammalian leukocytes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101 (9), 2912-2917 (2004).
  14. Bryantsev, A. L., Cripps, R. M. Purification of cardiac cells from Drosophila embryos. Methods. 56 (1), 44-49 (2012).
  15. Harzer, H., Berger, C., Conder, R., Schmauss, G., Knoblich, J. A. FACS purification of Drosophila larval neuroblasts for next-generation sequencing. Nature Protocols. 8 (6), 1088-1099 (2013).
  16. Khan, S. J., Abidi, S. N., Tian, Y., Skinner, A., Smith-Bolton, R. K. A rapid, gentle and scalable method for dissociation and fluorescent sorting of imaginal disc cells for mRNA sequencing. Fly (Austin). 10 (2), 73-80 (2016).
  17. Picelli, S., et al. Full-length RNA-seq from single cells using Smart-seq2. Nature Protocols. 9 (1), 171-181 (2014).
  18. Nern, A., Zhu, Y., Zipursky, S. L. Local N-cadherin interactions mediate distinct steps in the targeting of lamina neurons. Neuron. 58 (1), 34-41 (2008).
check_url/58474?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Peng, J., Santiago, I. J., Pecot, M. Y. Purification of Low-abundant Cells in the Drosophila Visual System. J. Vis. Exp. (139), e58474, doi:10.3791/58474 (2018).

View Video