Summary

ATAC-seq analysen med lav Mitokondrielt DNA forurensning fra primære menneskelige CD4 + T-lymfocytter

Published: March 22, 2019
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å utføre en analyse for transposase tilgjengelig chromatin sekvensering (ATAC-seq) på aktivert CD4 + menneskelige lymfocytter. Protokollen er endret for å minimere forurensende Mitokondrielt DNA leser fra 50% til 3% gjennom innføring av en ny lyseringsbuffer.

Abstract

ATAC-seq blitt en mye brukt metode i studiet av epigenetics på grunn av sin raske og enkle tilnærming til kartlegging genomet hele tilgjengelig chromatin. I denne artikkelen presenterer vi en forbedret ATAC-seq-protokoll som reduserer forurensende Mitokondrielt DNA leser. Mens tidligere ATAC-seq protokoller har slitt med leser gjennomsnittlig 50% forurensende Mitokondrielt DNA, optimalisert lyseringsbuffer introdusert i denne protokollen reduserer Mitokondrielt DNA forurensning til et gjennomsnitt av 3%. Denne forbedrede ATAC-seq-protokollen tillater en nær 50% reduksjon i sekvensering kostnadene. Vi viser hvordan disse høy kvalitet ATAC-seq biblioteker kan tilberedes fra aktivert CD4 + lymfocytter, trinnvise instruksjoner fra CD4 + lymfocytt isolasjon fra hele blod gjennom dataanalyse. Denne forbedrede ATAC-seq-protokollen er validert i en rekke celletyper og blir umiddelbar bruk for forskere studere chromatin tilgjengelighet.

Introduction

Analysen for transposase tilgjengelig chromatin sekvensering (ATAC-seq) har raskt blitt den ledende metoden for avhør chromatin arkitektur. ATAC-seq kan identifisere områder av tilgjengelig chromatin gjennom tagmentation, fragmentering og merking av DNA av det samme enzymet, å produsere biblioteker som sekvensering kan bestemme chromatin tilgjengelighet på tvers av en hel genom. Denne tagmentation prosessen er formidlet av hyperaktiv Tn5 transposase, som bare skjærer åpne områder av chromatin på grunn av nucleosomic steric hindring. Som skjærer, setter Tn5 transposase også sekvensering adaptere som tillater rask biblioteket bygging av PCR og neste generasjons sekvensering av genomet hele tilgjengelig chromatin1,2.

ATAC-seq blitt den foretrukne metoden for å bestemme regioner i chromatin tilgjengelighet på grunn av relativt enkel og rask protokollen, kvalitet og utvalg av informasjon som kan fastslås fra resultatene, og lite starter materiale kreves. Forhold til DNase-seq3 (som måler også genomet hele chromatin tilgjengelighet), MNase-seq4 (som bestemmer nucleosome posisjoner i åpne genomet områder), og formaldehyd-mediert FAIRE-seq5, ATAC-seq er raskere, billigere og mer reproduserbar1. Det er også mer følsomme, arbeider med å starte materialet i løpet av 500 kjerner, sammenlignet med 50 millioner kjerner kreves for DNase-seq3. ATAC-seq har også muligheten til å gi mer informasjon om chromatin arkitektur enn andre metoder, inkludert områder av transkripsjon faktor bindende, nucleosome plassering og åpne chromatin regioner1. Effektiv, encellede ATAC-seq protokoller har validert, gir informasjon om chromatin arkitektur på encellede nivå6,7.

ATAC-seq har blitt brukt til å beskrive chromatin arkitektur over et bredt spekter av forskning og celler typer, inkludert planter8, mennesker9og mange andre organismer. Det har også vært kritisk identifisere epigenetic regulering av sykdom stater7. Men inkluderer den mest brukte ATAC-seq-protokollen den store ulempen av forurensning sekvensering leseoperasjoner fra Mitokondrielt DNA. I noen datasett, kan dette forurensning nivået være så høy som 60% av sekvensering resultater1. Det er en felles innsats i feltet for å redusere disse forurensende mitokondrie leser for å tillate mer effektiv bruk av ATAC-seq7,10,11. Her presenterer vi en forbedret ATAC-seq-protokoll som reduserer Mitokondrielt DNA forurensning hastigheten til bare 3%, slik at reduksjon av rundt 50% i sekvensering koster10. Dette er gjort mulig av en strømlinjeformet prosessen med CD4 + lymfocytt isolasjon og aktivisering og en forbedret lyseringsbuffer som er avgjørende i å minimalisere Mitokondrielt DNA forurensning.

Denne modifiedATAC-seq-protokollen er validert med en rekke primære cellene, inkludert menneskelige primære perifert blod mononukleære celler (PBMCs)10, menneskelige primære monocytter og mus dendrittiske celler (upublisert). Det er også brukt klarer å avhøre melanom cellelinjer i en gruppert regelmessig interspaced kort palindromic gjentar (CRISPR) skjerm ikke-koding elementer11. I tillegg tilbyr data analyse pakken beskrevet i denne protokollen og gitt på GitHub nye og erfarne forskere med verktøy for å analysere ATAC-seq data. ATAC-seq er den mest effektive analysen tilordne chromatin tilgjengelighet på tvers av en hel genomet, og endringer i eksisterende protokollen som introduseres her vil tillate forskere å produsere høykvalitets data med lav Mitokondrielt DNA forurensning, redusere sekvensering kostnader og forbedre ATAC-seq gjennomstrømming.

Protocol

Denne forbedrede protokollen gir trinnvise instruksjoner for utføring ATAC-seq av CD4 + lymfocytter, fra utgangsmaterialet hele blod gjennom dataanalyse (figur 1). 1. isolering av CD4 + T celler fra fullblod Merk: Den starte materialet for denne protokollen er 15 mL av frisk hele blod samles inn ved hjelp av standard prosedyrer, slik at kilden til utgangsmaterialet velges basert på forskning krav. Skalere protokollen et…

Representative Results

Fra 15 mL frisk fullblod genererer denne protokollen et gjennomsnitt på 1 million CD4 + T celler. Dette kan fryses for senere behandling eller brukes umiddelbart. Levedyktighet av CD4 + T celler, friske eller tinte, var konsekvent > 95%. Denne metoden av CD4 + T cellen aisolering gir fleksibilitet i kilde materiale og samling tid. Denne forbedrede ATAC-seq-protokollen gir et siste bibliotek med større enn 1 ng/µL for sekvenser. Kvalitetskontroll utført ved hjelp av kommersielt tilgjen…

Discussion

Modifisert ATAC-seq protokollen presenteres i denne artikkelen gir reproduserbar resultater med minimal Mitokondrielt DNA forurensning. Protokollen har blitt vant til karakteriserer chromatin arkitektur menneskelige primære PBMCs10, menneskelige monocytter, musen dendrittiske celler (upublisert) og kultivert melanom cellen linjer11. Vi forventer denne forbedret lysis tilstand har potensial til å arbeide for andre celletyper også. Det er også forventet at denne kjerner i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Atsede Siba for kundestøtte. C.S.C. støttes av NIH grant 1R61DA047032.

Materials

1X PBS, Sterile Gibco 10010023 Can use other comparable products.
5810/5810 R Swing Bucket Refrigerated Centrifuge with 50 mL, 15 mL, and 1.5 mL Tube Buckets Eppendorf 22625501 Can use other comparable products.
96 Well Round Bottom Plate Thermo Scientific 163320 Can use other comparable products.
Agilent 4200 Tape Station System Agilent G2991AA Suggested for quality assessment.
Cryotubes Thermo Scientific 374081 Can use other comparable products.
DMSO Sigma D8418 Can use other comparable products.
Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 Invitrogen Life Technologies 11131D Critical Component
Dynabeads Untouched Human CD4 T Cells Kit Invitrogen Life Technologies 11346D Critical Component
Dynamagnet Invitrogen Life Technologies 12321D Critical Component
FCS Gemini Bio Products 100-500 Can use other comparable products.
High Sensitivity DNA Kit Agilent 50674626 Suggested for quality assessment.
Magnesium Chloride, Hexahydrate, Molecular Biology Grade Sigma M2393 Can use other comparable products.
MinElute PCR Purification Kit (Buffer PB, Buffer PE, Elution Buffer) Qiagen 28004 Critical Component
Mr. Frosty Thermo Scientific 5100-0001 Can use other comparable products.
NaCl, Molecular Biology Grade Sigma S3014 Can use other comparable products.
NEBNext High Fidelity 2X PCR Master Mix New England BioLabs M0541 Critical Component
Nextera DNA Library Preparation Kit (2X TD Buffer, Tn5 Enzyme) Illumina FC1211030 Critical Component
Nuclease Free Sterile dH20 Gibco 10977015 Can use other comparable products.
Polysorbate 20 (Tween20) Sigma P9416 Can use other comparable products.
PowerUp SYBR Green Master Mix Applied Biosystems A25780 Critical Component
Precision Water Bath Thermo Scientific TSGP02 Can use other comparable products.
QIAquick PCR Purification Kit Qiagen 28104 Critical Component
Qubit dsDNA HS Assay Kit Invitrogen Life Technologies Q32851 Suggested for quality assessment.
Qubit FlouroMeter Invitrogen Life Technologies Q33226 Suggested for quality assessment.
Rosette Sep Human CD4+ Density Medium Stem Cell Technologies 15705 Critical Component
Rosette Sep Human CD4+ Enrichment Cocktail Stem Cell Technologies 15022 Critical Component
RPMI-1640 Gibco 11875093 Can use other comparable products.
Sterile Resevoir Thermo Scientific 8096-11 Can use other comparable products.
T100 Thermocycler with Heated Lid BioRad 1861096 Can use other comparable products.
Tris-HCL Sigma T5941 Can use other comparable products.

References

  1. Buenrostro, J. D., Giresi, P. G., Zaba, L. C., Chang, H. Y., Greenleaf, W. J. Transposition of native chromatin for fast and sensitive epigenomic profiling of open chromatin, DNA-binding proteins and nucleosome position. Nature Methods. 10 (12), 1213-1218 (2013).
  2. Buenrostro, J. D., Wu, B., Chang, H. Y., Greenleaf, W. J. ATAC-seq: A Method for Assaying Chromatin Accessibility Genome-Wide. Current Protocols in Molecular Biology. 21, 1-29 (2015).
  3. Song, L., Crawford, G. E. DNase-seq: a high-resolution technique for mapping active gene regulatory elements across the genome from mammalian cells. Cold Spring Harbor Protocols. (2), (2010).
  4. Pajoro, A., Muiño, J. M., Angenent, G. C., Kaufmann, K. Profiling Nucleosome Occupancy by MNase-seq: Experimental Protocol and Computational Analysis. Methods in Molecular Biology. 1675, 167-181 (2018).
  5. Giresi, P. G., Kim, J., McDaniell, R. M., Iyer, V. R., Lieb, J. D. FAIRE (Formaldehyde-Assisted Isolation of Regulatory Elements) isolates active regulatory elements from human chromatin. Genome Research. 17 (6), 877-885 (2007).
  6. Rosenberg, A. B., et al. Single-cell profiling of the developing mouse brain and spinal cord with split-pool barcoding. Science. 360 (6385), 176-182 (2018).
  7. Corces, M. R., et al. Lineage-specific and single-cell chromatin accessibility charts human hematopoiesis and leukemia evolution. Nature Genetics. 48 (10), 1193-1203 (2016).
  8. Lu, Z., Hofmeister, B. T., Vollmers, C., DuBois, R. M., Schmitz, R. J. Combining ATAC-seq with nuclei sorting for discovery of cis-regulatory regions in plant genomes. Nucleic Acids Research. 45 (6), e41 (2017).
  9. Lara-Astiaso, D., et al. Chromatin state dynamics during blood formation. Science. 345 (6199), 943-949 (2014).
  10. Gate, R. E., et al. Genetic determinants of co-accessible chromatin regions in activated T cells across humans. Nature Genetics. , (2018).
  11. Sanjana, N. E., et al. High-resolution interrogation of functional elements in the noncoding genome. Science. 353 (6307), 1545-1549 (2016).
  12. . FastQC A Quality Control tool for High Throughput Sequence Data. Babraham Bioinformatics Available from: https://www.bioinformatics.babraham.ac.uk/projects/fastqc (2018)
  13. Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics. 30 (15), 2114-2120 (2014).
  14. Langmead, B., Salzberg, S. L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods. 9 (4), 357-359 (2012).
  15. Li, H., et al. The Sequence Alignment/Map format and SAMtools. Bioinformatics. 25 (16), 2078-2079 (2009).
  16. Quinlan, A. R., Hall, I. M. BEDTools: a flexible suite of utilities for comparing genomic features. Bioinformatics. 26 (6), 841-842 (2010).
  17. Corces, M. R., et al. An improved ATAC-seq protocol reduces background and enables interrogation of frozen tissues. Nature Methods. 14 (10), 959-962 (2017).
  18. Wu, J., et al. The landscape of accessible chromatin in mammalian preimplantation embryos. Nature. 534 (7609), 652-657 (2016).
check_url/59120?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rickner, H. D., Niu, S., Cheng, C. S. ATAC-seq Assay with Low Mitochondrial DNA Contamination from Primary Human CD4+ T Lymphocytes. J. Vis. Exp. (145), e59120, doi:10.3791/59120 (2019).

View Video