Her presenterer vi en protokoll for å utføre en analyse for transposase tilgjengelig chromatin sekvensering (ATAC-seq) på aktivert CD4 + menneskelige lymfocytter. Protokollen er endret for å minimere forurensende Mitokondrielt DNA leser fra 50% til 3% gjennom innføring av en ny lyseringsbuffer.
ATAC-seq blitt en mye brukt metode i studiet av epigenetics på grunn av sin raske og enkle tilnærming til kartlegging genomet hele tilgjengelig chromatin. I denne artikkelen presenterer vi en forbedret ATAC-seq-protokoll som reduserer forurensende Mitokondrielt DNA leser. Mens tidligere ATAC-seq protokoller har slitt med leser gjennomsnittlig 50% forurensende Mitokondrielt DNA, optimalisert lyseringsbuffer introdusert i denne protokollen reduserer Mitokondrielt DNA forurensning til et gjennomsnitt av 3%. Denne forbedrede ATAC-seq-protokollen tillater en nær 50% reduksjon i sekvensering kostnadene. Vi viser hvordan disse høy kvalitet ATAC-seq biblioteker kan tilberedes fra aktivert CD4 + lymfocytter, trinnvise instruksjoner fra CD4 + lymfocytt isolasjon fra hele blod gjennom dataanalyse. Denne forbedrede ATAC-seq-protokollen er validert i en rekke celletyper og blir umiddelbar bruk for forskere studere chromatin tilgjengelighet.
Analysen for transposase tilgjengelig chromatin sekvensering (ATAC-seq) har raskt blitt den ledende metoden for avhør chromatin arkitektur. ATAC-seq kan identifisere områder av tilgjengelig chromatin gjennom tagmentation, fragmentering og merking av DNA av det samme enzymet, å produsere biblioteker som sekvensering kan bestemme chromatin tilgjengelighet på tvers av en hel genom. Denne tagmentation prosessen er formidlet av hyperaktiv Tn5 transposase, som bare skjærer åpne områder av chromatin på grunn av nucleosomic steric hindring. Som skjærer, setter Tn5 transposase også sekvensering adaptere som tillater rask biblioteket bygging av PCR og neste generasjons sekvensering av genomet hele tilgjengelig chromatin1,2.
ATAC-seq blitt den foretrukne metoden for å bestemme regioner i chromatin tilgjengelighet på grunn av relativt enkel og rask protokollen, kvalitet og utvalg av informasjon som kan fastslås fra resultatene, og lite starter materiale kreves. Forhold til DNase-seq3 (som måler også genomet hele chromatin tilgjengelighet), MNase-seq4 (som bestemmer nucleosome posisjoner i åpne genomet områder), og formaldehyd-mediert FAIRE-seq5, ATAC-seq er raskere, billigere og mer reproduserbar1. Det er også mer følsomme, arbeider med å starte materialet i løpet av 500 kjerner, sammenlignet med 50 millioner kjerner kreves for DNase-seq3. ATAC-seq har også muligheten til å gi mer informasjon om chromatin arkitektur enn andre metoder, inkludert områder av transkripsjon faktor bindende, nucleosome plassering og åpne chromatin regioner1. Effektiv, encellede ATAC-seq protokoller har validert, gir informasjon om chromatin arkitektur på encellede nivå6,7.
ATAC-seq har blitt brukt til å beskrive chromatin arkitektur over et bredt spekter av forskning og celler typer, inkludert planter8, mennesker9og mange andre organismer. Det har også vært kritisk identifisere epigenetic regulering av sykdom stater7. Men inkluderer den mest brukte ATAC-seq-protokollen den store ulempen av forurensning sekvensering leseoperasjoner fra Mitokondrielt DNA. I noen datasett, kan dette forurensning nivået være så høy som 60% av sekvensering resultater1. Det er en felles innsats i feltet for å redusere disse forurensende mitokondrie leser for å tillate mer effektiv bruk av ATAC-seq7,10,11. Her presenterer vi en forbedret ATAC-seq-protokoll som reduserer Mitokondrielt DNA forurensning hastigheten til bare 3%, slik at reduksjon av rundt 50% i sekvensering koster10. Dette er gjort mulig av en strømlinjeformet prosessen med CD4 + lymfocytt isolasjon og aktivisering og en forbedret lyseringsbuffer som er avgjørende i å minimalisere Mitokondrielt DNA forurensning.
Denne modifiedATAC-seq-protokollen er validert med en rekke primære cellene, inkludert menneskelige primære perifert blod mononukleære celler (PBMCs)10, menneskelige primære monocytter og mus dendrittiske celler (upublisert). Det er også brukt klarer å avhøre melanom cellelinjer i en gruppert regelmessig interspaced kort palindromic gjentar (CRISPR) skjerm ikke-koding elementer11. I tillegg tilbyr data analyse pakken beskrevet i denne protokollen og gitt på GitHub nye og erfarne forskere med verktøy for å analysere ATAC-seq data. ATAC-seq er den mest effektive analysen tilordne chromatin tilgjengelighet på tvers av en hel genomet, og endringer i eksisterende protokollen som introduseres her vil tillate forskere å produsere høykvalitets data med lav Mitokondrielt DNA forurensning, redusere sekvensering kostnader og forbedre ATAC-seq gjennomstrømming.
Modifisert ATAC-seq protokollen presenteres i denne artikkelen gir reproduserbar resultater med minimal Mitokondrielt DNA forurensning. Protokollen har blitt vant til karakteriserer chromatin arkitektur menneskelige primære PBMCs10, menneskelige monocytter, musen dendrittiske celler (upublisert) og kultivert melanom cellen linjer11. Vi forventer denne forbedret lysis tilstand har potensial til å arbeide for andre celletyper også. Det er også forventet at denne kjerner i…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker Atsede Siba for kundestøtte. C.S.C. støttes av NIH grant 1R61DA047032.
1X PBS, Sterile | Gibco | 10010023 | Can use other comparable products. |
5810/5810 R Swing Bucket Refrigerated Centrifuge with 50 mL, 15 mL, and 1.5 mL Tube Buckets | Eppendorf | 22625501 | Can use other comparable products. |
96 Well Round Bottom Plate | Thermo Scientific | 163320 | Can use other comparable products. |
Agilent 4200 Tape Station System | Agilent | G2991AA | Suggested for quality assessment. |
Cryotubes | Thermo Scientific | 374081 | Can use other comparable products. |
DMSO | Sigma | D8418 | Can use other comparable products. |
Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 | Invitrogen Life Technologies | 11131D | Critical Component |
Dynabeads Untouched Human CD4 T Cells Kit | Invitrogen Life Technologies | 11346D | Critical Component |
Dynamagnet | Invitrogen Life Technologies | 12321D | Critical Component |
FCS | Gemini Bio Products | 100-500 | Can use other comparable products. |
High Sensitivity DNA Kit | Agilent | 50674626 | Suggested for quality assessment. |
Magnesium Chloride, Hexahydrate, Molecular Biology Grade | Sigma | M2393 | Can use other comparable products. |
MinElute PCR Purification Kit (Buffer PB, Buffer PE, Elution Buffer) | Qiagen | 28004 | Critical Component |
Mr. Frosty | Thermo Scientific | 5100-0001 | Can use other comparable products. |
NaCl, Molecular Biology Grade | Sigma | S3014 | Can use other comparable products. |
NEBNext High Fidelity 2X PCR Master Mix | New England BioLabs | M0541 | Critical Component |
Nextera DNA Library Preparation Kit (2X TD Buffer, Tn5 Enzyme) | Illumina | FC1211030 | Critical Component |
Nuclease Free Sterile dH20 | Gibco | 10977015 | Can use other comparable products. |
Polysorbate 20 (Tween20) | Sigma | P9416 | Can use other comparable products. |
PowerUp SYBR Green Master Mix | Applied Biosystems | A25780 | Critical Component |
Precision Water Bath | Thermo Scientific | TSGP02 | Can use other comparable products. |
QIAquick PCR Purification Kit | Qiagen | 28104 | Critical Component |
Qubit dsDNA HS Assay Kit | Invitrogen Life Technologies | Q32851 | Suggested for quality assessment. |
Qubit FlouroMeter | Invitrogen Life Technologies | Q33226 | Suggested for quality assessment. |
Rosette Sep Human CD4+ Density Medium | Stem Cell Technologies | 15705 | Critical Component |
Rosette Sep Human CD4+ Enrichment Cocktail | Stem Cell Technologies | 15022 | Critical Component |
RPMI-1640 | Gibco | 11875093 | Can use other comparable products. |
Sterile Resevoir | Thermo Scientific | 8096-11 | Can use other comparable products. |
T100 Thermocycler with Heated Lid | BioRad | 1861096 | Can use other comparable products. |
Tris-HCL | Sigma | T5941 | Can use other comparable products. |