Summary

Het bestuderen van normale weefsel straling effecten met behulp van extracellulaire matrix hydrogels

Published: July 24, 2019
doi:

Summary

Dit protocol presenteert een methode voor decellularisatie en daaropvolgende hydrogel vorming van muriene borst vetpads na ex vivo bestraling.

Abstract

Straling is een therapie voor patiënten met drievoudige negatieve borstkanker. Het effect van straling op de extracellulaire matrix (ECM) van gezonde borstweefsel en haar rol in lokale herhaling op de primaire tumor site zijn onbekend. Hier presenteren we een methode voor de decellularisatie, lyofilisatie en fabricage van ECM-hydrogels die zijn afgeleid van Murine-vetpads. Resultaten worden gepresenteerd over de effectiviteit van het decellularisatie proces, en reologische parameters werden beoordeeld. GFP-en Luciferase-gelabelde borstkankercellen die in de hydrogels zijn ingekapseld, toonden een toename van proliferatie in bestraalde hydrogels. Tot slot, phalloidin geconjugeerde kleuring werd gebruikt om cytoskelet organisatie van ingekapselde tumorcellen te visualiseren. Ons doel is om een methode voor het vervaardigen van hydrogels voor in vitro onderzoek dat nabootsen van de in vivo borstweefsel omgeving en haar reactie op straling te presenteren om tumor cel gedrag te bestuderen.

Introduction

Kanker wordt gekenmerkt door overmatige proliferatie van cellen die apoptosis kunnen omzeilen en ook metastaseren naar verre sites1. Borstkanker is een van de meest voorkomende vormen onder vrouwtjes in de VS, met naar schatting 266.000 nieuwe gevallen en 40.000 sterfgevallen in 20182. Een bijzonder agressief en moeilijk te behandelen subtype is drievoudige negatieve borstkanker (TNBC), die geen oestrogeen receptor (ER), progesteron receptor (PR) en humane epidermale groeifactor (HER2) mist. Radiotherapie wordt vaak gebruikt bij borstkanker om residuele tumorcellen na lumpectomie te elimineren, maar meer dan 13% van de TNBC-patiënten ervaart nog steeds een recidief bij de primaire tumor locatie3.

Het is bekend dat radiotherapie effectief is in het verzachten van metastase en herhaling, omdat de combinatie van lumpectomie en straling in dezelfde lange termijn Overleving resulteert als mastectomie4. Echter, het is onlangs aangetoond dat bestraling wordt geassocieerd met lokale herhaling van de primaire tumor site in immuungecompromitteerde instellingen5,6. Ook is het bekend dat straling de extracellulaire matrix (ECM) van normaal weefsel verandert door fibrose7te induceren. Daarom is het belangrijk om te begrijpen van de rol van straling-geïnduceerde ECM veranderingen in het diceren van tumor Celgedrag.

Decellularized weefsels zijn gebruikt als in vitro modellen om de ziekte te bestuderen8,9. Deze decellularized weefsels behouden ECM-samenstelling en recapituleren het complex in vivo ECM. Deze decellularized weefsel-ECM kan verder worden verwerkt en verteerd om gereconstitueerde ECM-hydrogels te vormen die kunnen worden gebruikt om celgroei en functie10,11te bestuderen. Bijvoorbeeld, injecteerbare hydrogels afgeleid van decellularized humaan lipoaspiraat en van myocard weefsel diende als niet-invasieve methoden van weefsel engineering, en een hydrogel afgeleid van varkens longweefsel werd gebruikt als een in vitro testmethode mesenchymale stamcel bevestiging en levensvatbaarheid12,13,14. Het effect van normale beschadiging van de weefsel straling op de ECM-eigenschappen is echter niet onderzocht.

Hydrogels afgeleid van ECM hebben het grootste potentieel voor in vitro onderzoek naar in vivo verschijnselen. Er zijn verschillende andere materialen bestudeerd, waaronder collageen, fibrin en matrigel, maar het is moeilijk om de samenstelling van de ECM13synthetisch te recapituleren. Een voordeel van het gebruik van ecu-afgeleide hydrogels is dat de ECM de nodige eiwitten en groeifactoren voor een bepaald weefsel14,15bevat. Bestraling van normaal weefsel tijdens lumpectomie veroorzaakt significante veranderingen in de ECM, en de ECM-afgeleide hydrogels kunnen worden gebruikt om dit effect in vitro te bestuderen. Deze methode kan leiden tot meer complexe en nauwkeurigere in vitro modellen van ziekte.

In deze studie hebben we Murine borst Fat pads (mfp’s) blootgesteld aan straling ex vivo. De Mfp’s waren decellularized en gemaakt in pre-gel oplossing. Hydrogels werden gevormd met ingesloten 4T1 cellen, een Murine TNBC cellijn. De Rheologische eigenschappen van het hydrogel materiaal werden onderzocht en de tumor celdynamiek werd geëvalueerd binnen de hydrogels. Hydrogels vervaardigd van bestraalde Mfp’s verbeterde tumor celproliferatie. Toekomstige studies zullen omvatten andere celtypen om celcelinteracties te bestuderen in de context van herhaling van kanker na therapie.

Protocol

Dierstudies werden uitgevoerd in overeenstemming met de institutionele richtlijnen en protocollen die zijn goedgekeurd door het Comité voor institutionele dierenverzorging en-gebruik van de Vanderbilt University. 1. bereiding en ex vivo bestraling van Mfp’s Offer athymische nu/nu muizen (8 – 10 weken) met behulp van co2 verstikking gevolgd door cervicale dislocatie. Reinig de huid met 70% ethanol. Verzamel borst Fat pads (mfp’s) van het opgeofferde m…

Representative Results

Mfp’s werden na bestraling met behulp van de in Figuur 1agetoonde procedure decellularized. MFPs pre-decellularisatie (Figuur 1b) en post-decellularisatie (figuur 1c) worden weergegeven. Decellularisatie werd bevestigd met behulp van hematoxyline en eosine (H & E) kleuring, en 1-([4-(Xylylazo) xylyl] azo) -2-naftol-kleuring werd gebruikt om het vetgehalte te evalueren (Figuur 2). De Rheologische eigenschappen van de ECM-h…

Discussion

Deze methode van hydrogel vorming is grotendeels afhankelijk van de hoeveelheid start weefsel. Murine Mfp’s zijn klein en het decellularisatie proces resulteert in een significante reductie van materiaal (tabel 1). Het proces kan worden herhaald met meer Mfp’s om de uiteindelijke opbrengst te verhogen. Frezen is een andere belangrijke stap die kan leiden tot verlies van materiaal. Anderen hebben succes getoond met een cryogene molen, maar dit protocol is gebaseerd op frezen via een handheld mortel en ele…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs bedanken Dr. Laura L. bronsart voor het leveren van de GFP-en Luciferase-4t1 cellen, Dr. Edward l. lagory voor advies over 1-([4-(xylylazo) xylyl] azo) -2-naphthol kleuring, Dr. Craig L. Duvall voor ivis en lyofilisator gebruik, en Dr. Scott A. guelcher voor rheometer Gebruiken. Dit onderzoek werd financieel gesteund door NIH Grant #R00CA201304.

Materials

10% Neutral Buffered Formalin, Cube with Spigot VWR 16004-128
2-methylbutane Alfa Aesar 19387
AR 2000ex Rheometer TA Instruments 10D4335 rheometer
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A1933-25G
calcein acetoxymethyl (calcein AM) Molecular Probes, Inc. C1430
D-Luciferin Firefly, potassium salt Biosynth Chemistry & Biology L-8820 (S)-4,5-Dihydro-2-(6-hydroxy-2-benzothiazolyl)-4-thiazolecarboxylic acid potassium salt
DPX Mountant for Histology Sigma-Aldrich 06522-500ML
Dulbecco's phosphate-buffered saline Gibco 14040133
Eosin-Y with Phloxine Richard-Allan Scientific 71304 eosin
ethidium homodimer Molecular Probes, Inc. E1169 ethidium homodimer-1 (EthD-1)
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F0926-500ML
Fisher Healthcare Tissue-Plus O.C.T. Compound Fisher Scientific 23-730-571 cryostat embedding medium
Fluoromount-G SouthernBiotech 0100-01 aqueous based mounting medium
FreeZone 4.5 Labconco 7751020 lyophilizer
Hoechst 33342 Solution (20 mM) Thermo Scientific 62249 blue fluorescent dye
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich 258148-500ML
IVIS Lumina III PerkinElmer CLS136334 bioluminescence imaging system
Kimtech Science Kimwipes Kimberly Clark delicate task wipes
n-Propanol (Peroxide-Free/Sequencing), Fisher BioReagents Fisher Scientific BP1130-500
Oil Red O Sigma-Aldrich O0625-25G 1-([4-(Xylylazo)xylyl]azo)-2-naphthol
OPS Diagnostics CryoGrinder OPS Diagnostics, LLC CG-08-02
PBS (10X), pH 7.4 Quality Biological, Inc. 119-069-151 Phosphate-buffered saline
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140-122
Pepsin from porcine gastric mucosa Sigma-Aldrich P6887-5G pepsin
Peracetic acid Sigma-Aldrich 77240-100ML
Phalloidin-iFluor 594 Reagent (ab176757) abcam ab176757 phalloidin conjugate
Propylene glycol Sigma-Aldrich W294004-1KG-K
Richard-Allan Scientific Signature Series Bluing Reagent Richard-Allan Scientific 7301L bluing agent
Richard-Allan Scientific Signature Series Hematoxylin 7211 Richard-Allan Scientific 7211
RPMI Medium 1640 Gibco 11875-093
Sodium deoxycholate, 98% Frontier Scientific JK559522 deoxycholic acid
Sucrose Sigma-Aldrich S5016
Triton x-100 Sigma-Aldrich X100-100ML t-Octylphenoxypolyethoxyethanol
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Gibco 25200-056
Whatman qualitative filter paper, Grade 4 Whatman 1004-110 grade 4 qualitative filter paper
Xylenes (Certified ACS), Fisher Chemical Fisher Scientific X5-4

References

  1. Hanahan, D., Weinberg, R. A. The hallmarks of cancer. Cell. 100 (1), 57-70 (2000).
  2. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2018. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (1), 7-30 (2018).
  3. Lowery, A. J., Kell, M. R., Glynn, R. W., Kerin, M. J., Sweeney, K. J. Locoregional recurrence after breast cancer surgery: a systematic review by receptor phenotype. Breast Cancer Research and Treatment. 133 (3), 831-841 (2012).
  4. Miller, K. D., et al. Cancer treatment and survivorship statistics, 2016. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 66 (4), 271-289 (2016).
  5. Vilalta, M., Rafat, M., Giaccia, A. J., Graves, E. E. Recruitment of Circulating Breast Cancer Cells Is Stimulated by Radiotherapy. Cell Reports. 8 (2), 402-409 (2014).
  6. Rafat, M., Aguilera, T. A., Vilalta, M., Bronsart, L. L., Soto, L. A., von Eyben, R., Golla, M. A., Ahrari, Y., Melemenidis, S., Afghahi, A., Jenkins, M. J., Kurian, A. W., Horst, K. C., Giaccia, A. J., Graves, E. E. Macrophages Promote Circulating Tumor Cell-Mediated Local Recurrence Following Radiation Therapy in Immunosuppressed Patients. Cancer Res. 75 (15), 4241-4252 (2018).
  7. Haubner, F., Ohmann, E., Pohl, F., Strutz, J., Gassner, H. G. Wound healing after radiation therapy: Review of the literature. Radiation Oncology. 7 (1), 1-9 (2012).
  8. Beachley, V. Z., et al. Tissue matrix arrays for high throughput screening and systems analysis of cell function. Nature Methods. 12 (12), 1197-1204 (2015).
  9. Tian, X., et al. Organ-specific metastases obtained by culturing colorectal cancer cells on tissue-specific decellularized scaffolds. Nature Biomedical Engineering. 2 (6), 443-452 (2018).
  10. Saldin, L. T., Cramer, M. C., Velankar, S. S., White, L. J., Badylak, S. F. Extracellular matrix hydrogels from decellularized tissues: Structure and function. Acta Biomaterialia. 49, 1-15 (2017).
  11. Hinderer, S., Layland, S. L., Schenke-Layland, K. ECM and ECM-like materials — Biomaterials for applications in regenerative medicine and cancer therapy. Advanced Drug Delivery Reviews. 97, 260-269 (2016).
  12. Young, D. A., Ibrahim, D. O., Hu, D., Christman, K. L. Injectable hydrogel scaffold from decellularized human lipoaspirate. Acta Biomaterialia. 7 (3), 1040-1049 (2011).
  13. Singelyn, J. M., Christman, K. L., Littlefield, R. B., Schup-Magoffin, P. J., DeQuach, J. A., Seif-Naraghi, S. B. Naturally derived myocardial matrix as an injectable scaffold for cardiac tissue engineering. Biomaterials. 30 (29), 5409-5416 (2009).
  14. Pouliot, R. A., et al. Development and characterization of a naturally derived lung extracellular matrix hydrogel. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 104 (8), 1922-1935 (2016).
  15. Bonvillain, R. W., et al. A Nonhuman Primate Model of Lung Regeneration: Detergent-Mediated Decellularization and Initial In Vitro Recellularization with Mesenchymal Stem Cells. Tissue Engineering Part A. 18 (23-24), 2437-2452 (2012).
  16. Brown, B. N., et al. Comparison of Three Methods for the Derivation of a Biologic Scaffold Composed of Adipose Tissue Extracellular Matrix. Tissue Engineering Part C: Methods. 17 (4), 411-421 (2011).
  17. Link, P. A., Pouliot, R. A., Mikhaiel, N. S., Young, B. M., Heise, R. L. Tunable Hydrogels from Pulmonary Extracellular Matrix for 3D Cell Culture. Journal of Visualized Experiments. (119), 1-9 (2017).
  18. Massensini, A. R., et al. Concentration-dependent rheological properties of ECM hydrogel for intracerebral delivery to a stroke cavity. Acta Biomaterialia. 27, 116-130 (2015).
  19. Mierke, C. T., Frey, B., Fellner, M., Herrmann, M., Fabry, B. Integrin 5 1 facilitates cancer cell invasion through enhanced contractile forces. Journal of Cell Science. 124 (3), 369-383 (2011).
  20. Ahmadzadeh, H., et al. Modeling the two-way feedback between contractility and matrix realignment reveals a nonlinear mode of cancer cell invasion. Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (9), E1617-E1626 (2017).
check_url/59304?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Alves, S. M., Zhu, T., Shostak, A., Rossen, N. S., Rafat, M. Studying Normal Tissue Radiation Effects using Extracellular Matrix Hydrogels. J. Vis. Exp. (149), e59304, doi:10.3791/59304 (2019).

View Video