Summary

En in vitro model for at studere Tau aggregering ved hjælp af Lentiviral-medieret transduktion af humane neuroner

Published: May 23, 2019
doi:

Summary

Denne protokol beskriver en procedure, hvor menneskelige neuronal kulturer er transduceret med lentiviral konstruktioner kodning for mutant menneske Tau. Transduceret kulturer display Tau aggregater og tilknyttede patologier.

Abstract

Aberrant aggregering af protein Tau er patetisk involveret i en række neurodegenerative sygdomme, herunder Alzheimers sygdom (AD). Selv om musemodeller af tauopati har givet en værdifuld ressource for at undersøge neurotoksiske mekanismer i aggregeret Tau, det bliver mere og mere klart, at på grund af interspecies forskelle i Neuro fysiologi, muse hjernen er uegnet til modellering af den menneskelige tilstand. Fremskridt i cellekultur metoder har gjort menneskelige neuronal kulturer tilgængelige for eksperimentel brug in vitro og har hjulpet i udviklingen af neurotherapeutics. Men på trods af tilpasningen af humane neuronal cellekulturer, in vitro modeller af human tauopati er endnu ikke bredt tilgængelige. Denne protokol beskriver en cellulær model af Tau aggregering, hvor menneskelige neuroner er transduceret med lentiviral-afledte vektorer, at koden for patogenisk muteret Tau smeltet til en gul fluorescerende protein (YFP) reporter. Transduceret kulturer producerer Tau aggregater, der pletter positivt for thioflavin og display markører for neurotoksicitet, såsom nedsat axonal længde og øget lysosomale volumen. Denne procedure kan være en nyttig og omkostningseffektiv model for at studere menneskelige tauopathier.

Introduction

Patologisk aggregering af den mikrotubule-associerede protein Tau er et definerende træk ved mange neurodegenerative sygdomme, herunder AD, frontotemporal demens (FTD), pick ‘s sygdom, og progressiv supranuclear parese (PSP)1. I en ikke-syg tilstand binder Tau sig til og stabiliserer mikrotubulære filamenter i neuronale axoner2. Men, sygdoms associeret hyperfosforylering af Tau fremmer Tau aggregering, afkobling fra microtubules, og neuronal toksicitet3. De toksiske virkninger af aggregeret Tau kan indebære afvigende aktivering af kolinerge4 og glutamatergic receptorer5 resulterer i dysregulering af intracellulære calcium og i sidste ende, celledød. I dyremodeller forbedrer reduktionen af hjernen Tau patologi i AD-mus6 og i musemodeller af repetitive mild traumatisk hjerneskade7.

Montering beviser viser, at strukturen og bindende affinitet af mus-afledte Tau adskiller sig fra menneske-afledte Tau og at musen Tau er uegnet til modellering menneskelige tauopathies8. Men, humane celle tauopati modeller er ikke almindeligt kommercielt tilgængelige. Det overordnede mål med dette arbejde er at beskrive en in vitro model af Tau aggregering, hvor menneskelige neuroner er transduceret med lentiviral-afledte vektorer, der indeholder mutant Human Tau konstruktioner9. Tau aggregat forårsager lentiviral konstruktioner koder for Tau gentage domæne husly P301L og V337M mutationer smeltet til en yfp reporter (Tau-rdlm-yfp) mens kontrol konstruerer kode for Wild-type (WT) Tau gentage domæne fusioneret til en yfp reporter (Tau-WT-yfp). Neuronal kulturer transduceret ved hjælp af denne metode udtrykke cirka ni gange mere Tau end ikke-transduceret kulturer. Selv om mængden af Tau udtryk over udtrykkes er nogenlunde lige mellem Tau-RDLM-YFP-og Tau-WT-YFP-transduceret celler, kun neuroner transduceret med Tau-RDLM-YFP display aggregater. Kulturer transduceret med Tau-RDLM-YFP bejdse positivt for thioflavin og display reduktioner i axonal længde og synaptisk tæthed. Derfor, denne cellulære model kan være et nyttigt redskab til at studere Tau aggregering in vitro.

Protocol

1. klargøring af medier og reagenser Optø kælderen membran matrix belægning for kultur plader ved 4 °C (Lad ikke kælderen membran matrix til at varme op, eller det vil størkne). Der fremstille 1 mL aliquoter, og opbevar dem ved-20 °C eller-70 °C. Den grundlæggende fibroblast vækstfaktor (bFGF) rekonstruere i sterilt fosfat-bufferet saltvand (PBS) ved 10 μg/mL og fremstille 10 μL aliquoter. Opbevar dem ved 4 °C. Til en ny, uåbnet, 500 mL flaske DMEM/F12 med glutamin, tilsæt B2…

Representative Results

Tau-rdlm-yfp-transduceret neuroner blev optælling tagget med yfp, og rdlm-transduceret kulturer viste aggregater efter transduktion. Disse inklusioner farves positivt for thioflavin (figur 1). Som figur 1 demonstrerer, denne protokol producerer neuronal kulturer, der viser thioflavin-positive Tau aggregater. For indledende eksperimenter, anbefales det, at neuronal differentiering bekræftes ved immun mærkning af neuron-specifikke markør β-Tubulin III i kultu…

Discussion

Denne protokol beskriver dannelsen af en in vitro-model af human tauopati, der udviser sølv-bejdde-positive aggregater og thioflavin-positive neurofibrillære tangles (NFTS). Desuden, transducerede celler viser Tau-induceret patologier såsom morfologiske defekter, reduceret synaptogenesis, og en øget lysosomale volumen. Den største fordel ved denne protokol er, at det giver en tilgængelig og omkostningseffektiv model af neuronal tauopati, som kan bruges til Drug screening undersøgelser, samt til analyse af Tau toks…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke Dr. Peter Davies på Albert Einstein College of Medicine for at levere PHF-1 og CP13 antistoffer og Dr. Marc Diamond på University of Texas, Southwestern, for at give Tau konstruktioner. Dette arbejde blev understøttet af tilskud fra Alzheimer’s Association (NIRG-14-322164) til S.H.Y. og fra California Institute for regenerative Medicine (TB1-01193) til P.R.

Materials

10 cm culture dishes Thermofisher 12556002
15 ml tubes Biopioneer CNT-15
16% paraformaldehyde Thermofisher 50-980-487
24 well culture plates Thermofisher 930186
50ml tubes Biopioneer CNT-50
70% ethanol in spray bottle Various sources NA
B27 supplement Thermofisher 17504044
Basement membrane matrix (Matrigel) Corning 356231
Basic FGF Biopioneer HRP-0011
Bovine serum albumin Sigma A7906
Cell culture incubator Various sources NA
Centrifuge Various sources NA
DMEM-F12 culture media with glutamine Thermofisher 10565042
Ethanol (50% concentration or higher) Various sources NA
Flourescently labeled secondary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Fluorescent microscope Various sources NA
Glass coverslips Thermofisher 1254581
Glass slides Thermofisher 12-550-15
Human neural stem cells Various sources NA
Lentiviral vectors Various sources custom order
Mounting media Thermofisher P36934
N2 supplement Thermofisher 17502048
Penicillin-Streptomycin Thermofisher 15140122
Phosphate buffered saline Thermofisher 14190250
Primary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Rocking or rotating platform Various sources NA
Sterile cell culture hood Various sources NA
Thioflavin S Sigma T1892-25G
Triton X-100 Thermofisher BP151-100
Water bath Various sources NA

References

  1. Rojas, J. C., Boxer, A. L. Neurodegenerative disease in 2015: Targeting tauopathies for therapeutic translation. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 74-76 (2016).
  2. Kadavath, H., et al. Tau stabilizes microtubules by binding at the interface between tubulin heterodimers. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (24), 7501-7506 (2015).
  3. Wang, Y., Mandelkow, E. Tau in physiology and pathology. Nature Reviews Neurology. 17 (1), 5-21 (2016).
  4. Gomez-Ramos, A., et al. Characteristics and consequences of muscarinic receptor activation by tau protein. European Neuropsychopharmacology. 19 (10), 708-717 (2009).
  5. Warmus, B. A., et al. Tau-mediated NMDA receptor impairment underlies dysfunction of a selectively vulnerable network in a mouse model of frontotemporal dementia. Journal of Neuroscience. 34 (49), 16482-16495 (2014).
  6. DeVos, S. L., et al. Tau reduction in the presence of amyloid-beta prevents tau pathology and neuronal death in vivo. Brain. 141 (7), 2194-2212 (2018).
  7. Cheng, J. S., et al. Tau reduction diminishes spatial learning and memory deficits after mild repetitive traumatic brain injury in mice. PLOS ONE. 9 (12), e115765 (2014).
  8. Ando, K., et al. Accelerated human mutant tau aggregation by knocking out murine tau in a transgenic mouse model. The American Journal of Pathology. 178 (2), 803-816 (2011).
  9. Reilly, P., et al. Novel human neuronal tau model exhibiting neurofibrillary tangles and transcellular propagation. Neurobiology of Disease. 106, 222-234 (2017).
  10. Kfoury, N., Holmes, B. B., Jiang, H., Holtzman, D. M., Diamond, M. I. Trans-cellular Propagation of Tau Aggregation by Fibrillar Species. The Journal of Biological Chemistry. 287 (23), 19440-19451 (2012).
  11. Yuan, S. H., et al. Cell-surface marker signatures for the isolation of neural stem cells, glia and neurons derived from human pluripotent stem cells. PLOS ONE. 6 (3), e17540 (2011).
  12. Marchenko, S., Flanagan, L. Passaging human neural stem cells. Journal of Visualized Experiments. (7), e263 (2007).
  13. Lathuiliere, A., et al. Motifs in the tau protein that control binding to microtubules and aggregation determine pathological effects. Scientific Reports. 7 (1), 13556 (2017).
  14. Asai, H., et al. Depletion of microglia and inhibition of exosome synthesis halt tau propagation. Nature Neuroscience. 18 (11), 1584-1593 (2015).
check_url/59433?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aulston, B., Liu, Q., Reilly, P., Yuan, S. H. An In Vitro Model for Studying Tau Aggregation Using Lentiviral-mediated Transduction of Human Neurons. J. Vis. Exp. (147), e59433, doi:10.3791/59433 (2019).

View Video