Summary

En in vitro modell for å studere tau aggregering bruke Lentiviral-mediert Transduction av Human neurons

Published: May 23, 2019
doi:

Summary

Denne protokollen detaljer en prosedyre der menneskelige neuronal kulturer er transduced med lentiviral konstruerer koding for mutant menneskelig tau. Transduced kulturer vise tau aggregater og tilhørende patologi.

Abstract

Avvikende aggregering av protein tau er pathogenically involvert i en rekke nevrodegenerative sykdommer, inkludert Alzheimers sykdom (AD). Selv om musemodeller av tauopathy har gitt en verdifull ressurs for å undersøke nevrotoksiske mekanismer for aggregert tau, blir det stadig tydeligere at, på grunn av interspecies forskjeller i nevrofysiologi, er musen hjernen uegnet for modellering av den menneskelige tilstand. Fremskritt i cellekultur metoder har gjort menneskelige neuronal kulturer tilgjengelig for eksperimentell bruk in vitro og har hjulpet i utviklingen av neurotherapeutics. Men til tross for tilpasning av menneskelig neuronal cellekulturer, in vitro modeller av menneskelig tauopathy er ennå ikke allment tilgjengelig. Denne protokollen beskriver en mobil modell av tau aggregering der menneskelige neurons er transduced med lentiviral-avledet vektorer som koden for pathogenically mutert tau smeltet til et gult fluorescerende protein (YFP) reporter. Transduced kulturer produserer tau aggregater som flekken positivt for thioflavin og vise markører for nevrotoksisitet, slik som redusert axonal lengde og økt lysosomal volum. Denne prosedyren kan være en nyttig og kostnadseffektiv modell for å studere menneskelig tauopathies.

Introduction

Patologisk aggregering av mikrotubulinettverket-assosiert protein tau er et definerende trekk ved mange nevrodegenerative sykdommer, inkludert AD, frontotemporal demens (FTD), pick ‘ s sykdom, og progressiv supranuclear parese (PSP)1. I en nondiseased tilstand, tau binder seg til og stabiliserer mikrotubulinettverket filamenter i neuronal axons2. Men, sykdom-assosiert hyperphosphorylation av tau fremmer tau aggregering, dissosiasjon fra mikrotubuli, og neuronal toksisitet3. Den toksiske effekter av aggregert tau kan innebære avvikende aktivering av kolinerge4 og glutamatergic reseptorer5 resulterer i feilregulering av intracellulære kalsium og, til slutt, celle død. I dyremodeller, reduksjon av hjernen tau forbedrer patologi i AD mus6 og i musemodeller av repeterende milde traumatisk hjerneskade7.

Montering bevis viser at strukturen og bindende affinitet av mus-avledet tau er forskjellig fra menneske-avledet tau og at musen tau er uegnet for modellering menneskelig tauopathies8. Men menneskelige celle tauopathy modeller er ikke allment kommersielt tilgjengelig. Det overordnede målet med dette arbeidet er å beskrive en in vitro modell av tau aggregering der menneskelige neurons er transduced med lentiviral-avledet vektorer som inneholder mutant menneskelige tau konstruksjoner9. Tau aggregat forårsaker lentiviral konstruerer koder for tau gjenta domenet harboring P301L og V337M mutasjoner smeltet til en YFP reporter (tau-RDLM-YFP) mens kontroll konstruerer kode for Wild-type (WT) tau gjenta domenet smeltet til en YFP reporter (tau-WT-YFP). Neuronal kulturer transduced bruker denne metoden uttrykke omtrent ni ganger mer tau enn nontransduced kulturer. Selv om mengden tau uttrykk overexpressed er omtrent lik mellom tau-RDLM-YFP-og tau-WT-YFP-transduced celler, bare neurons transduced med tau-RDLM-YFP display aggregater. Kulturer transduced med tau-RDLM-YFP flekken positivt for thioflavin og vise reduksjoner i axonal lengde og Synaptic tetthet. Derfor kan denne cellulære modellen være et nyttig verktøy for å studere tau aggregering in vitro.

Protocol

1. utarbeidelse av media og reagenser Tine kjelleren membranen matrise belegg for kultur plater ved 4 ° c (ikke la kjelleren membran matrise å varme opp eller det vil stivne). Lag 1 mL alikvoter og oppbevar dem ved-20 ° c eller-70 ° c. Rekonstituer grunnleggende Fibroblast vekstfaktor (bFGF) i sterilt fosfat-bufret saltvann (PBS) ved 10 μg/mL og gjør 10 μL alikvoter. Oppbevar dem ved 4 ° c. Til en ny, uåpnet, 500 mL flaske DMEM/F12 med glutamin, tilsett B27 (10 mL), N2 (5 mL), og pe…

Representative Results

Tau-RDLM-YFP-transduced neurons ble fluorescensmerkete merket med YFP, og RDLM-transduced kulturer vises aggregater etter Transduction. Disse inkluderinger farget positivt for thioflavin (figur 1). Som figur 1 demonstrerer, denne protokollen produserer neuronal kulturer som viser thioflavin-positive tau aggregater. For innledende eksperimenter, anbefales det at neuronal differensiering er bekreftet av immunolabeling den Nevron-spesifikke markør β-tubulin III i…

Discussion

Denne protokollen beskriver generering av en in vitro modell av menneskelig tauopathy som viser sølv-beis-positive aggregater og thioflavin-positive neurofibrillary floker (NFTs). Videre transduced celler viser tau-indusert patologi som morfologiske defekter, redusert synaptogenesis, og en økt lysosomal volum. Den største fordelen med denne protokollen er at det gir en tilgjengelig og kostnadseffektiv modell av neuronal tauopathy, som kan brukes til narkotika screening studier, samt for analyse av tau toksisitet. Denn…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gjerne takke Dr. Peter Davies ved Albert Einstein College of Medicine for å forsyne PHF-1 og CP13 antistoffer og Dr. Marc Diamond ved University of Texas, Southwestern, for å gi tau konstruksjoner. Dette arbeidet ble støttet av tilskudd fra Alzheimer ‘ s Association (NIRG-14-322164) til S.H.Y. og fra California Institute for regenererende Medicine (TB1-01193) til P.R.

Materials

10 cm culture dishes Thermofisher 12556002
15 ml tubes Biopioneer CNT-15
16% paraformaldehyde Thermofisher 50-980-487
24 well culture plates Thermofisher 930186
50ml tubes Biopioneer CNT-50
70% ethanol in spray bottle Various sources NA
B27 supplement Thermofisher 17504044
Basement membrane matrix (Matrigel) Corning 356231
Basic FGF Biopioneer HRP-0011
Bovine serum albumin Sigma A7906
Cell culture incubator Various sources NA
Centrifuge Various sources NA
DMEM-F12 culture media with glutamine Thermofisher 10565042
Ethanol (50% concentration or higher) Various sources NA
Flourescently labeled secondary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Fluorescent microscope Various sources NA
Glass coverslips Thermofisher 1254581
Glass slides Thermofisher 12-550-15
Human neural stem cells Various sources NA
Lentiviral vectors Various sources custom order
Mounting media Thermofisher P36934
N2 supplement Thermofisher 17502048
Penicillin-Streptomycin Thermofisher 15140122
Phosphate buffered saline Thermofisher 14190250
Primary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Rocking or rotating platform Various sources NA
Sterile cell culture hood Various sources NA
Thioflavin S Sigma T1892-25G
Triton X-100 Thermofisher BP151-100
Water bath Various sources NA

References

  1. Rojas, J. C., Boxer, A. L. Neurodegenerative disease in 2015: Targeting tauopathies for therapeutic translation. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 74-76 (2016).
  2. Kadavath, H., et al. Tau stabilizes microtubules by binding at the interface between tubulin heterodimers. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (24), 7501-7506 (2015).
  3. Wang, Y., Mandelkow, E. Tau in physiology and pathology. Nature Reviews Neurology. 17 (1), 5-21 (2016).
  4. Gomez-Ramos, A., et al. Characteristics and consequences of muscarinic receptor activation by tau protein. European Neuropsychopharmacology. 19 (10), 708-717 (2009).
  5. Warmus, B. A., et al. Tau-mediated NMDA receptor impairment underlies dysfunction of a selectively vulnerable network in a mouse model of frontotemporal dementia. Journal of Neuroscience. 34 (49), 16482-16495 (2014).
  6. DeVos, S. L., et al. Tau reduction in the presence of amyloid-beta prevents tau pathology and neuronal death in vivo. Brain. 141 (7), 2194-2212 (2018).
  7. Cheng, J. S., et al. Tau reduction diminishes spatial learning and memory deficits after mild repetitive traumatic brain injury in mice. PLOS ONE. 9 (12), e115765 (2014).
  8. Ando, K., et al. Accelerated human mutant tau aggregation by knocking out murine tau in a transgenic mouse model. The American Journal of Pathology. 178 (2), 803-816 (2011).
  9. Reilly, P., et al. Novel human neuronal tau model exhibiting neurofibrillary tangles and transcellular propagation. Neurobiology of Disease. 106, 222-234 (2017).
  10. Kfoury, N., Holmes, B. B., Jiang, H., Holtzman, D. M., Diamond, M. I. Trans-cellular Propagation of Tau Aggregation by Fibrillar Species. The Journal of Biological Chemistry. 287 (23), 19440-19451 (2012).
  11. Yuan, S. H., et al. Cell-surface marker signatures for the isolation of neural stem cells, glia and neurons derived from human pluripotent stem cells. PLOS ONE. 6 (3), e17540 (2011).
  12. Marchenko, S., Flanagan, L. Passaging human neural stem cells. Journal of Visualized Experiments. (7), e263 (2007).
  13. Lathuiliere, A., et al. Motifs in the tau protein that control binding to microtubules and aggregation determine pathological effects. Scientific Reports. 7 (1), 13556 (2017).
  14. Asai, H., et al. Depletion of microglia and inhibition of exosome synthesis halt tau propagation. Nature Neuroscience. 18 (11), 1584-1593 (2015).
check_url/59433?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aulston, B., Liu, Q., Reilly, P., Yuan, S. H. An In Vitro Model for Studying Tau Aggregation Using Lentiviral-mediated Transduction of Human Neurons. J. Vis. Exp. (147), e59433, doi:10.3791/59433 (2019).

View Video