Summary

En in vitro-modell för att studera Tau aggregation använda Lentiviral medierad transduktion av mänskliga nerv celler

Published: May 23, 2019
doi:

Summary

Detta protokoll specificerar ett förfarande där mänskliga neuronala kulturer är transducerade med lentiviral konstruktioner kodning för muterade mänskliga Tau. Transduced kulturer visar Tau aggregat och tillhör ande patologier.

Abstract

Aberrant agg regering av proteinet Tau är patogeniskt involverad i ett antal neurodegenerativa sjukdomar, inklusive Alzheimers sjukdom (AD). Även mus modeller av tauopati har gett en värdefull resurs för att undersöka de neurotoxiska mekanismerna för aggregerade Tau, det blir alltmer uppenbart att, på grund av skillnader mellan arterna i neurofysiologi, mus hjärnan är olämplig för modellering av människans tillstånd. Framsteg inom cell odlings metoder har gjort humana neuronala kulturer tillgängliga för experimentell användning in vitro och har hjälpt till med utvecklingen av neurotherapeutics. Men trots anpassningen av mänskliga neuronala cell kulturer, in vitro-modeller av mänsklig tauopati är ännu inte allmänt tillgängliga. Detta protokoll beskriver en cellulär modell av Tau agg regering där mänskliga nerv celler är transducerade med lentiviral-derived vektorer som kod för patogent muterade Tau smält till en gul fluorescerande protein (YFP) reporter. Transduced kulturer producerar Tau aggregat som fläcken positivt för tioflavin och Visa markörer för neurotoxicitet, såsom minskad axonal längd och ökad lysosomala volym. Detta förfarande kan vara en användbar och kostnads effektiv modell för att studera mänskliga tauopatier.

Introduction

Patologisk agg regering av det mikrotubuliassocierade proteinet Tau är ett utmärkande drag för många neurodegenerativa sjukdomar, inklusive AD, frontotemporallobsdemens DEMENS (FTD), Pick ‘ s disease, och Progressiv Supranukleär Pares (PSP)1. I ett nondiseased tillstånd binder Tau till och stabiliserar mikrotubulefilament i neuronala axoner2. Emellertid, sjukdomsassocierad hyperfosforylering av Tau främjar Tau aggregation, dissociation från Mikrotubuli, och neuronala toxicitet3. De toxiska effekterna av aggregerade Tau kan innebära avvikande aktivering av kolinerga4 och glutamatergic receptorer5 resulterar i Dysreglering av intracellulära kalcium och, så småningom, celldöd. I djur modeller förbättrar minskningen av hjärnan Tau patologi i AD-möss6 och i mus modeller av repetitiva mild traumatisk hjärn skada7.

Montering bevis visar att strukturen och bindningsaffinitet av mus-härledda Tau skiljer sig från mänskligt framställda Tau och att musen Tau är olämpligt för modellering mänskliga tauopatier8. Emellertid, mänskliga celler tauopati modeller är inte allmänt kommersiellt tillgängliga. Det övergripande målet med detta arbete är att beskriva en in vitro-modell av Tau agg regering där mänskliga nerv celler är transducerade med lentiviral-härledda vektorer som innehåller muterade mänskliga Tau konstruktioner9. Tau aggregat orsakar lentiviral konstruktioner kodar för Tau upprepa domän hyser P301L och V337M mutationer smält till en yfp reporter (Tau-rdlm-yfp) medan kontroll konstruerar kod för Wild-Type (WT) Tau upprepa domän smält till en yfp reporter (Tau-WT-yfp). Neuronala kulturer transducerade med denna metod uttrycka cirka nio gånger mer Tau än icke-transducerade kulturer. Även om mängden Tau uttryck överuttrycks är ungefär lika mellan Tau-RDLM-YFP-och Tau-WT-YFP-transducerade celler, endast neuroner transducerade med Tau-RDLM-YFP Visa aggregat. Kulturer transducerade med Tau-RDLM-YFP fläcken positivt för thioflavin och Visa minskningar i axonal längd och synaptisk densitet. Därför kan denna cellulära modell vara ett användbart verktyg för att studera Tau aggregation in vitro-.

Protocol

1. beredning av media och reagenser Tina källaren membran matris beläggning för kultur tallrikar vid 4 ° c (Låt inte källaren membranet matris för att värma upp eller det kommer att stelna). Gör 1 mL Ali kvoter och förvara dem vid-20 ° c eller-70 ° c. Bered grundläggande fibroblasttillväxtfaktor (bFGF) i steril fosfatbuffrad saltlösning (PBS) vid 10 μg/mL och gör 10 μL Ali kvoter. Förvara dem vid 4 ° c. Till en ny, oöppnad, 500 mL flaska DMEM/F12 med glutamin, tillsätt …

Representative Results

Tau-rdlm-yfp-transduced neuroner var fluorescensmarkerade märkta med yfp, och rdlm-transduced kulturer visas aggregat efter transduktion. Dessa inne slutningar färgade positivt för tioflavin (figur 1). Som figur 1 visar, producerar detta protokoll neuronala kulturer som visar thioflavin-positiva Tau aggregat. För initiala experiment rekommenderas att neuronala differentiering bekräftas av immunolabeling den neuron-specifika markörer β-tubulin III i kultur…

Discussion

Detta protokoll beskriver generering av en in vitro-modell av mänsklig tauopati som uppvisar silver-fläck-positiva aggregat och tioflavin-positiva neurofibrillär trasor (NFTs). Dessutom, transducerade celler visar Tau-inducerad patologier såsom morfologiska defekter, minskad synaptogenes, och en ökad lysosomala volym. Den största fördelen med detta protokoll är att det ger en tillgänglig och kostnads effektiv modell av neuronala tauopati, som kan användas för drog screening studier, samt för analys av Tau tox…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Dr Peter Davies på Albert Einstein College of Medicine för att leverera PHF-1 och CP13 anti kroppar och Dr Marc Diamond vid University of Texas, sydvästra, för att ge Tau konstrukter. Detta arbete stöddes av bidrag från Alzheimer ‘ s Association (NIRG-14-322164) till S.H.Y. och från California Institute for regenerativ Medicine (TB1-01193) till P.R.

Materials

10 cm culture dishes Thermofisher 12556002
15 ml tubes Biopioneer CNT-15
16% paraformaldehyde Thermofisher 50-980-487
24 well culture plates Thermofisher 930186
50ml tubes Biopioneer CNT-50
70% ethanol in spray bottle Various sources NA
B27 supplement Thermofisher 17504044
Basement membrane matrix (Matrigel) Corning 356231
Basic FGF Biopioneer HRP-0011
Bovine serum albumin Sigma A7906
Cell culture incubator Various sources NA
Centrifuge Various sources NA
DMEM-F12 culture media with glutamine Thermofisher 10565042
Ethanol (50% concentration or higher) Various sources NA
Flourescently labeled secondary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Fluorescent microscope Various sources NA
Glass coverslips Thermofisher 1254581
Glass slides Thermofisher 12-550-15
Human neural stem cells Various sources NA
Lentiviral vectors Various sources custom order
Mounting media Thermofisher P36934
N2 supplement Thermofisher 17502048
Penicillin-Streptomycin Thermofisher 15140122
Phosphate buffered saline Thermofisher 14190250
Primary antibodies Various Sources, experiment dependent NA
Rocking or rotating platform Various sources NA
Sterile cell culture hood Various sources NA
Thioflavin S Sigma T1892-25G
Triton X-100 Thermofisher BP151-100
Water bath Various sources NA

References

  1. Rojas, J. C., Boxer, A. L. Neurodegenerative disease in 2015: Targeting tauopathies for therapeutic translation. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 74-76 (2016).
  2. Kadavath, H., et al. Tau stabilizes microtubules by binding at the interface between tubulin heterodimers. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (24), 7501-7506 (2015).
  3. Wang, Y., Mandelkow, E. Tau in physiology and pathology. Nature Reviews Neurology. 17 (1), 5-21 (2016).
  4. Gomez-Ramos, A., et al. Characteristics and consequences of muscarinic receptor activation by tau protein. European Neuropsychopharmacology. 19 (10), 708-717 (2009).
  5. Warmus, B. A., et al. Tau-mediated NMDA receptor impairment underlies dysfunction of a selectively vulnerable network in a mouse model of frontotemporal dementia. Journal of Neuroscience. 34 (49), 16482-16495 (2014).
  6. DeVos, S. L., et al. Tau reduction in the presence of amyloid-beta prevents tau pathology and neuronal death in vivo. Brain. 141 (7), 2194-2212 (2018).
  7. Cheng, J. S., et al. Tau reduction diminishes spatial learning and memory deficits after mild repetitive traumatic brain injury in mice. PLOS ONE. 9 (12), e115765 (2014).
  8. Ando, K., et al. Accelerated human mutant tau aggregation by knocking out murine tau in a transgenic mouse model. The American Journal of Pathology. 178 (2), 803-816 (2011).
  9. Reilly, P., et al. Novel human neuronal tau model exhibiting neurofibrillary tangles and transcellular propagation. Neurobiology of Disease. 106, 222-234 (2017).
  10. Kfoury, N., Holmes, B. B., Jiang, H., Holtzman, D. M., Diamond, M. I. Trans-cellular Propagation of Tau Aggregation by Fibrillar Species. The Journal of Biological Chemistry. 287 (23), 19440-19451 (2012).
  11. Yuan, S. H., et al. Cell-surface marker signatures for the isolation of neural stem cells, glia and neurons derived from human pluripotent stem cells. PLOS ONE. 6 (3), e17540 (2011).
  12. Marchenko, S., Flanagan, L. Passaging human neural stem cells. Journal of Visualized Experiments. (7), e263 (2007).
  13. Lathuiliere, A., et al. Motifs in the tau protein that control binding to microtubules and aggregation determine pathological effects. Scientific Reports. 7 (1), 13556 (2017).
  14. Asai, H., et al. Depletion of microglia and inhibition of exosome synthesis halt tau propagation. Nature Neuroscience. 18 (11), 1584-1593 (2015).
check_url/59433?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aulston, B., Liu, Q., Reilly, P., Yuan, S. H. An In Vitro Model for Studying Tau Aggregation Using Lentiviral-mediated Transduction of Human Neurons. J. Vis. Exp. (147), e59433, doi:10.3791/59433 (2019).

View Video