Summary

Thorax rygmarv Hemisection kirurgi og åben-felt Locomotor vurdering hos rotter

Published: June 26, 2019
doi:

Summary

Rotte thorax spinal hemisektion er en værdifuld og reproducerbar model af ensidig rygmarvsskade til at undersøge neurale mekanismer af bevægeapparatet opsving og behandling effektivitet. Denne artikel indeholder en detaljeret trin-for-trin guide til at udføre hemisektion procedure og til at vurdere bevægeapparatet ydeevne i en Open-felt Arena.

Abstract

Rygmarvsskade (SCI) forårsager forstyrrelser i motoriske, sensoriske og autonome funktion under læsions niveau. Eksperimentelle dyremodeller er værdifulde værktøjer til at forstå de neurale mekanismer, der er involveret i bevægeapparatet opsving efter SCI og at designe terapier for kliniske populationer. Der er flere eksperimentelle SCI modeller herunder kontusion, kompression, og transection skader, der anvendes i en bred vifte af arter. En hemisektion involverer den ensidige transektion af rygmarven og forstyrrer alle stigende og faldende skrifter på den ene side kun. Spinal hemisektion producerer en meget selektiv og reproducerbar skade i forhold til kontusion eller kompressions teknikker, der er nyttige til at undersøge neurale plasticitet i skårede og beskadigede veje forbundet med funktionel genopretning. Vi præsenterer en detaljeret trin-for-trin protokol for at udføre en thorax hemisektion på T8 vertebrale niveau i rotter, der resulterer i en indledende lammelse af bagdel på siden af læsionen med gradueret spontan helbredelse af bevægeapparatet funktion over flere Uger. Vi tilbyder også en bevægeapparatet scoring protokol til at vurdere funktionelle opsving i det åbne felt. Den bevægeapparatet vurdering giver en lineær opsving profil og kan udføres både tidligt og gentagne gange efter skade for præcist at screene dyr for passende tidspunkter til at foretage mere specialiseret adfærdsmæssige test. Den hemisektion teknik præsenteret kan let tilpasses andre transektions modeller og arter, og bevægeapparatet vurdering kan anvendes i en række sci og andre skade modeller til at score bevægeapparatet funktion.

Introduction

Rygmarvsskade (SCI) er forbundet med alvorlige forstyrrelser i motoriske, sensoriske og autonome funktion. Eksperimentelle animalske modeller af SCI er værdifulde værktøjer til at forstå de anatomiske og fysiologiske begivenheder involveret i SCI patologi, at undersøge neurale mekanismer i reparation og nyttiggørelse, og at screene for virkning og sikkerhed af potentielle terapeutiske Interventioner. Rotten er de hyppigst anvendte arter i SCI Research1. Rotte modeller er lave omkostninger, let at reproducere, og et stort batteri af adfærdsmæssige tests er tilgængelige til at vurdere funktionelle resultater2. På trods af visse forskelle i tarmkanalen, deler rotte rygmarven samlet set lignende sensorimotoriske funktioner med større pattedyr, herunder primater3,4. Rotter også dele analoge fysiologiske og adfærdsmæssige konsekvenser til SCI, der relaterer til mennesker5. Ikke-menneskelige primat og store dyremodeller kan give en tættere tilnærmelse af human SCI6 og er afgørende for at bevise behandlingens sikkerhed og effektivitet forud for humane eksperimenter, men er mindre almindeligt anvendt på grund af etiske og dyrevelfærd overvejelser, udgifter og lovmæssige krav7.

Rotte transektion sci modeller udføres ved den målrettede afbrydelse af rygmarven med en selektiv læsion ved hjælp af en dissektion kniv eller af saks efter en laminektomi. Sammenlignet med en komplet transekel, delvis transektion i rotter resulterer i en mindre alvorlig skade, lettere postoperative dyrs pleje, spontan bevægeapparatet opsving, og mere tæt modeller sci hos mennesker, som er overvejende ufuldstændig med delvis besparende af væv, som forbinder rygmarven og liga konstruktioner8. En ensidig hemisektion forstyrrer alle stigende og faldende skrifter på den ene side og producerer kvantificerbare og meget reproducerbare underskud, hvilket forbedrer udforskning af de underliggende biologiske mekanismer. Den mest fremtrædende funktionelle konsekvens af hemisektion er en indledende lemmer lammelse på samme side og under niveauet af læsion med gradueret spontan helbredelse af bevægeapparatet funktion over flere uger9,10, 11 , 12. hemisektion modellen er især nyttig til at undersøge neurale plasticitet af beskadigede og resterende skrifter og kredsløb forbundet med funktionel nyttiggørelse9,11,12, 13,14,15,16,17,18. Specifikt, hemisektion udføres på thorax niveau, dvs over rygmarvs kredsløb, der styrer baglemmer bevægelse, er især nyttig til at undersøge ændringer i bevægeapparatet kontrol. Som en ikke-lineær forhold eksisterer mellem læsion sværhedsgrad og bevægeapparatet opsving efter sci19, passende adfærdsmæssige test til at vurdere funktionelle resultater er altafgørende i eksperimentelle modeller.

En omfattende batteri af adfærdsmæssige tests er tilgængelige til at vurdere specifikke aspekter af funktionelle bevægeapparatet opsving i rotte2,20. Mange bevægeapparatet tests giver ikke pålidelige foranstaltninger tidligt efter sci som rotter er for handicappede til at støtte deres kropsvægt. Et mål for spontan bevægelsesevne, der er følsom over for underskud tidligt efter skaden, og ikke kræver præoperativ uddannelse eller specialiseret udstyr, er gavnlig for at overvåge bevægeapparatet opsving for passende tidspunkter, hvor at supplere specialiserede adfærdsmæssige test. Martinez Open-felt Assessment score10, oprindeligt udviklet til at evaluere bevægeapparatet præstation efter cervikal sci i rotten, er en 20-punkts ordenstal vurdering af global bevægeapparatet præstation under spontan Overground bevægelse i en åbent felt. Scoring udføres separat for hver lemmer ved hjælp af en rubrik, der evaluerer specifikke parametre for en række bevægeapparatet foranstaltninger, herunder artikulær lemmer bevægelse, vægt støtte, ciffer position, stepping evner, forbimb-hindlemmer koordination, og hale Position. Assessment score er afledt af Basso, Beattie og bres, (BBB) Open-felt rating Scale designet til at evaluere bevægeapparatet ydeevne efter thorax kontusion21. Det er tilpasset til nøjagtigt og pålideligt evaluere både forbimb og baglemmer bevægeapparatet funktion, giver mulighed for uafhængig vurdering af de forskellige scoring parametre, der ikke er modtagelig med den hierarkiske scoring af BBB, og giver en lineær genopretning profil10. Desuden, i forhold til BBB, vurderingen score er følsom og pålidelig i mere alvorlige skade modeller10,11,20,22. Vurderings scoren er blevet anvendt til at vurdere bevægelseshæmning hos rotter efter cervikal10,12 og thorax9 sci alene og i kombination med traumatisk hjerneskade23.

Vi præsenterer her en detaljeret trin-for-trin protokol for at udføre en thorax hemisektion sci på T8 vertebrale niveau i den kvindelige lang-Evans rotte, og for at vurdere baglemmer bevægeapparatet opsving i det åbne felt.

Protocol

De eksperimenter, der er beskrevet i denne artikel, blev udført i overensstemmelse med retningslinjerne fra det canadiske råd om dyrepleje og blev godkendt af den etiske komité på Université de Montréal. 1. Thoracic hemisektion kirurgi Bær passende beskyttelsesudstyr (handsker, maske og kjole) for at opretholde et aseptisk miljø for kirurgi. Rengør operationsområdet med spritservietter, og Placer sterile kirurgiske gardiner over operationsområdet. Steriliser kirurgiske væ…

Representative Results

Reproducerbare læsioner med en høj grad af konsistens kan genereres med hemisektion teknik. For at vurdere og sammenligne læsioner størrelser mellem eksperimentelle grupper, det maksimale område af læsion som en procentdel af den samlede tværsnit af rygmarven kan let beregnes med histologisk farvning af rygmarvs sektioner. Figur 1 viser en repræsentativ læsion af den venstre hemicord og en overlejring af den andel af det maksimale læsionsområde, der deles mellem rotter med en genn…

Discussion

En stor styrke af hemisektion teknik er selektivitet og reproducerbarhed af læsion, som fører til reduceret variabilitet i histologiske og adfærdsmæssige fænotyper mellem dyr25. For at sikre en ensidig læsion på et passende spinal niveau er nøjagtig identifikation af både det korrekte vertebrale segment og rygmarvs midterlinjen kritisk. Da der kan være en tendens til rygmarven til at rotere i retning af snittet under hemisektion procedure, det kan være gavnligt at stabilisere ledningen …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af de canadiske institutter for sundhedsforskning (CIHR; MOP-142288) til M.M. M.M. blev støttet af en lønpris fra fonds de Recherche Québec Santé (FRQS), og A. R. B blev støttet af et stipendium fra FRQS.

Materials

Baytril CDMV 11242
Blunt dissection scissors World Precision Instruments 503669
Buprenorphine hydrochoride CDMV
Camera lens Pentax C31204TH 12.5-75mm, f1.8, 2/3" format, C-mount
CMOS video camera Basler acA2000-165uc 2/3" format, 2048 x 1088 pixels, up to 165 fps, C-mount, USB3
Compressed oxygen gas Praxair
Cotton tipped applicators CDMV 108703
Delicate bone trimmers Fine Science Tools 16109-14
Dissecting knife Fine Science Tools 10055-12
Dumont fine forceps (#5) Fine Science Tools 11254-20
Ethicon Vicryl 4/0 Violet Braided FS-2  suture (J392H) CDMV 111689
Feedback-controlled heating pad Harvard Apparatus 55-7020
Female Long-Evans rats Charles River Laboratories Strain code: 006 225-250g
Gelfoam CDMV 102348
Curved hemostat forceps Fine Science Tools 13003-10
Hot bead sterilizer Fine Science Tools 18000-45
Hydrogel 70-01-5022 Clear H20
Isofluorane CDMV 118740
Lactated Ringer's solution CDMV 116373
Lidocaine (2%) CDMV 123684
Needle 30 ga CDMV 4799
Open-field area Custom Circular Plexiglas arena 96 cm diameter, 40 cm wall height
Opthalmic ointment CDMV 110704
Personal computer  With USB3 connectivity to record video with the listed camera
Physiological saline CDMV 1399
Proviodine CDMV 4568
Rodent Liquid Diet Bioserv F1268
Scalpal blade #11 CDMV 6671
Self-retaining retractor World Precision Instruments 14240
Vannas iridectomy spring scissors Fine Science Tools 15002-08
Veterinary Anesthesia Machine and isofluarane vaporizer Dispomed 975-0510-000
VLC media player VideoLAN videolan.org/vlc

References

  1. Sharif-Alhoseini, M., et al. Animal models of spinal cord injury: a systematic review. Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).
  2. Sedy, J., Urdzikova, L., Jendelova, P., Sykova, E. Methods for behavioral testing of spinal cord injured rats. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 32 (3), 550-580 (2008).
  3. Butler, A. B., Hodos, W. . Comparative Vertebrate Neuroanatomy: Evolution and Adaptation. , 139-152 (2005).
  4. Nudo, R. J., Masterton, R. B. Descending pathways to the spinal cord: a comparative study of 22 mammals. Journal of Comparative Neurology. 277 (1), 53-79 (1988).
  5. Metz, G. A., et al. Validation of the weight-drop contusion model in rats: a comparative study of human spinal cord injury. Journal of Neurotrauma. 17 (1), 1-17 (2000).
  6. Friedli, L., et al. Pronounced species divergence in corticospinal tract reorganization and functional recovery after lateralized spinal cord injury favors primates. Science Translational Medicine. 7 (302), 302ra134 (2015).
  7. Talac, R., et al. Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies. Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).
  8. Kwon, B. K., Oxland, T. R., Tetzlaff, W. Animal models used in spinal cord regeneration research. Spine. 27 (14), 1504-1510 (2002).
  9. Brown, A. R., Martinez, M. Ipsilesional motor cortex plasticity participates in spontaneous hindlimb recovery after lateral hemisection of the thoracic spinal cord in the rat. Journal of Neuroscience. 38 (46), 9977-9988 (2018).
  10. Martinez, M., Brezun, J. M., Bonnier, L., Xerri, C. A new rating scale for open-field evaluation of behavioral recovery after cervical spinal cord injury in rats. Journal of Neurotrauma. 26 (7), 1043-1053 (2009).
  11. Martinez, M., Brezun, J. M., Zennou-Azogui, Y., Baril, N., Xerri, C. Sensorimotor training promotes functional recovery and somatosensory cortical map reactivation following cervical spinal cord injury. European Journal of Neuroscience. 30 (12), 2356-2367 (2009).
  12. Martinez, M., et al. Differential tactile and motor recovery and cortical map alteration after C4-C5 spinal hemisection. Experimental Neurology. 221 (1), 186-197 (2010).
  13. Leszczynska, A. N., Majczynski, H., Wilczynski, G. M., Slawinska, U., Cabaj, A. M. Thoracic hemisection in rats results in initial recovery followed by a late decrement in locomotor movements, with changes in coordination correlated with serotonergic innervation of the ventral horn. PLoS One. 10 (11), e0143602 (2015).
  14. Ballermann, M., Fouad, K. Spontaneous locomotor recovery in spinal cord injured rats is accompanied by anatomical plasticity of reticulospinal fibers. European Journal of Neuroscience. 23 (8), 1988-1996 (2006).
  15. Garcia-Alias, G., et al. Chondroitinase ABC combined with neurotrophin NT-3 secretion and NR2D expression promotes axonal plasticity and functional recovery in rats with lateral hemisection of the spinal cord. Journal of Neuroscience. 31 (49), 17788-17799 (2011).
  16. Petrosyan, H. A., et al. Neutralization of inhibitory molecule NG2 improves synaptic transmission, retrograde transport, and locomotor function after spinal cord injury in adult rats. Journal of Neuroscience. 33 (9), 4032-4043 (2013).
  17. Schnell, L., et al. Combined delivery of Nogo-A antibody, neurotrophin-3 and the NMDA-NR2d subunit establishes a functional ‘detour’ in the hemisected spinal cord. The European journal of neuroscience. 34 (8), 1256-1267 (2011).
  18. Shah, P. K., et al. Use of quadrupedal step training to re-engage spinal interneuronal networks and improve locomotor function after spinal cord injury. Brain. 136, 3362-3377 (2013).
  19. Schucht, P., Raineteau, O., Schwab, M. E., Fouad, K. Anatomical correlates of locomotor recovery following dorsal and ventral lesions of the rat spinal cord. Experimental Neurology. 176 (1), 143-153 (2002).
  20. Metz, G. A., Merkler, D., Dietz, V., Schwab, M. E., Fouad, K. Efficient testing of motor function in spinal cord injured rats. Brain Research. 883 (2), 165-177 (2000).
  21. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. Journal of Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  22. Barros Filho, T. E. P. d., Molina, A. E. I. S. Analysis of the sensitivity and reproducibility of the Basso, Beattie, Bresnahan (BBB) scale in Wistar rats. Clinics (Sao Paulo, Brazil). 63 (1), 103-108 (2008).
  23. Inoue, T., et al. Combined SCI and TBI: recovery of forelimb function after unilateral cervical spinal cord injury (SCI) is retarded by contralateral traumatic brain injury (TBI), and ipsilateral TBI balances the effects of SCI on paw placement. Experimental Neurology. 248, 136-147 (2013).
  24. Vichaya, E. G., Baumbauer, K. M., Carcoba, L. M., Grau, J. W., Meagher, M. W. Spinal glia modulate both adaptive and pathological processes. Brain, Behavior, and Immunity. 23 (7), 969-976 (2009).
  25. Ahmed, R. U., Alam, M., Zheng, Y. -. P. Experimental spinal cord injury and behavioral tests in laboratory rats. Heliyon. 5 (3), e01324 (2019).
  26. Ham, T. R., et al. Automated gait analysis detects improvements after intracellular sigma peptide administration in a rat hemisection model of spinal cord injury. annals of biomedical engineering. 47 (3), 744-753 (2019).
  27. Hamers, F. P. T., Koopmans, G. C., Joosten, E. A. J. CatWalk-assisted gait analysis in the assessment of spinal cord injury. Journal of Neurotrauma. 23 (3-4), 537-548 (2006).
  28. Neckel, N. D., Dai, H. N., Burns, M. P. A novel multidimensional analysis of rodent gait reveals the compensation strategies employed during spontaneous recovery from spinal cord and traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. , (2018).
  29. Fouad, K., Metz, G. A. S., Merkler, D., Dietz, V., Schwab, M. E. Treadmill training in incomplete spinal cord injured rats. Behavioural Brain Research. 115 (1), 107-113 (2000).
  30. Thibaudier, Y., et al. Interlimb coordination during tied-belt and transverse split-belt locomotion before and after an incomplete spinal cord injury. Journal of Neurotrauma. 34 (9), 1751-1765 (2017).
  31. Alluin, O., et al. Kinematic study of locomotor recovery after spinal cord clip compression injury in rats. Journal of Neurotrauma. 28 (9), 1963-1981 (2011).
  32. Martinez, M., Delivet-Mongrain, H., Leblond, H., Rossignol, S. Effect of locomotor training in completely spinalized cats previously submitted to a spinal hemisection. Journal of Neuroscience. 32 (32), 10961-10970 (2012).
  33. Behrmann, D. L., Bresnahan, J. C., Beattie, M. S., Shah, B. R. Spinal cord injury produced by consistent mechanical displacement of the cord in rats: behavioral and histologic analysis. Journal of Neurotrauma. 9 (3), 197-217 (1992).
  34. Soblosky, J. S., Colgin, L. L., Chorney-Lane, D., Davidson, J. F., Carey, M. E. Ladder beam and camera video recording system for evaluating forelimb and hindlimb deficits after sensorimotor cortex injury in rats. Journal of Neuroscience Methods. 78 (1-2), 75-83 (1997).
  35. Bareyre, F. M., et al. The injured spinal cord spontaneously forms a new intraspinal circuit in adult rats. Nature Neuroscience. 7 (3), 269-277 (2004).
  36. Courtine, G., et al. Recovery of supraspinal control of stepping via indirect propriospinal relay connections after spinal cord injury. Nature Medicine. 14 (1), 69-74 (2008).
  37. van den Brand, R., et al. Restoring voluntary control of locomotion after paralyzing spinal cord injury. Science. 336 (6085), 1182-1185 (2012).
  38. Lukovic, D., et al. Complete rat spinal cord transection as a faithful model of spinal cord injury for translational cell transplantation. Scientific Reports. 5, 9640-9640 (2015).
  39. Wilson, S., et al. The hemisection approach in large animal models of spinal cord injury: overview of methods and applications. Journal of Investigative Surgery. 10, 1-12 (2018).
  40. Martinez, M., Delivet-Mongrain, H., Leblond, H., Rossignol, S. Incomplete spinal cord injury promotes durable functional changes within the spinal locomotor circuitry. Journal of Neurophysiology. 108 (1), 124-134 (2012).
  41. Martinez, M., Delivet-Mongrain, H., Leblond, H., Rossignol, S. Recovery of hindlimb locomotion after incomplete spinal cord injury in the cat involves spontaneous compensatory changes within the spinal locomotor circuitry. Journal of Neurophysiology. 106 (4), 1969-1984 (2011).
  42. Capogrosso, M., et al. A brain–spine interface alleviating gait deficits after spinal cord injury in primates. Nature. 539, 284-288 (2016).
check_url/59738?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Brown, A. R., Martinez, M. Thoracic Spinal Cord Hemisection Surgery and Open-Field Locomotor Assessment in the Rat. J. Vis. Exp. (148), e59738, doi:10.3791/59738 (2019).

View Video