Summary

In Situ Chemotaxis Assay att undersöka mikrobiellt beteende i akvatiska ekosystem

Published: May 05, 2020
doi:

Summary

Presenteras här är protokollet för en in situ chemotaxis analys, en nyligen utvecklad mikrofluidic enhet som möjliggör studier av mikrobiellt beteende direkt i miljön.

Abstract

Mikrobiella beteenden, såsom motilitet och chemotaxis (förmågan hos en cell att ändra sin rörelse som svar på en kemisk gradient), är utbredd över bakterie-och arkaeala domäner. Chemotaxis kan resultera i betydande resursförvärvsfördelar i heterogena miljöer. Det spelar också en avgörande roll i symbiotiska interaktioner, sjukdomar och globala processer, såsom biogeokemisk cykling. Men nuvarande tekniker begränsar chemotaxis forskning till laboratoriet och är inte lätt tillämpliga inom området. Presenteras här är ett steg-för-steg-protokoll för utplacering av in situ chemotaxis assay (ISCA), en enhet som möjliggör robust förhör av mikrobiell chemotaxis direkt i den naturliga miljön. ISCA är en mikrofluidisk enhet som består av en 20 brunnsmatris, där kemikalier av intresse kan laddas. När de är utplacerade i vattenhaltiga miljöer sprider sig kemikalier ur brunnarna, vilket skapar koncentrationsgradienter som mikrober känner av och reagerar på genom att simma in i brunnarna via chemotaxis. Brunnsinnehållet kan sedan samplas och användas för att (1) kvantifiera styrkan hos de chemotactic svaren på specifika föreningar genom flödescytometri, (2) isolera och kultur lyhörda mikroorganismer, och (3) karakterisera identitet och genomisk potential av de svarande populationerna genom molekylära tekniker. ISCA är en flexibel plattform som kan användas i alla system med en vattenfas, inklusive marina miljöer, sötvatten och jord.

Introduction

Olika mikroorganismer använder motilitet och chemotaxis att utnyttja ojämna näringsmiljöer, hitta värdar, eller undvika skadliga förhållanden1,2,3. Dessa mikrobiella beteenden kan i sin tur påverka andelen kemisk omvandling4 och främja symbiotiska partnerskap över land-, sötvatten och marina ekosystem2,5.

Chemotaxis har studerats ingående under laboratorieförhållanden under de senaste 60 åren6. Den första kvantitativa metoden för att studera chemotaxis, kapillär analysen, innebär en kapillär röret fylld med en putativ chemoattractant nedsänkt i en suspension av bakterier6. Diffusion av kemikalien ut ur röret skapar en kemisk gradient, och chemotactic bakterier svara på denna gradient genom att migrera in i röret7. Sedan utvecklingen av kapillär analysen, fortfarande används i stor utsträckning idag, många andra tekniker har utvecklats för att studera chemotaxis under alltmer kontrollerade fysiska / kemiska förhållanden, med den senaste innebär användning av mikrofluidik8,9,10.

Mikrofluidik, tillsammans med höghastighetsvideomikroskopi, möjliggör spårning av enstaka cellers beteende som svar på noggrant kontrollerade lutningar. Även om dessa tekniker har avsevärt förbättrat vår förståelse av chemotaxis, har de begränsats till laboratorieanvändning och inte översätta lätt till fältutbyggnad i miljösystem. Som en konsekvens har kapaciteten hos naturliga samhällen av bakterier att använda chemotaxis inom naturliga ekosystem inte undersökts; således är nuvarande förståelse av den potentiella ekologiska betydelsen av chemotaxis partisk mot konstgjorda laboratorieförhållanden och ett begränsat antal laboratorie-odlade bakteriell isolat. Den nyligen utvecklade ISCA övervinner dessa begränsningar11.

ISCA bygger vidare på den allmänna principen om kapilläranalysen; emellertid, Det använder sig av moderna mikrofabricering tekniker för att leverera en mycket replikerade, lätt deployable experimentell plattform för kvantifiering av chemotaxis mot föreningar av intresse för den naturliga miljön. Det möjliggör också identifiering och karakterisering av chemotactic mikroorganismer genom direkt isolering eller molekylära tekniker. Medan den första fungerande enheten var själv fabricerade och konstruerade av glas och PDMS11, den senaste formsprutade versionen är sammansatt av polykarbonat, med hjälp av en mycket standardiserad tillverkning förfarande (för intresse för den senaste versionen av enheten, kan motsvarande författare kontaktas).

ISCA är kreditkortsstor och består av 20 brunnar fördelade i en 5 x 4 brunnsarray, var och en kopplad till den yttre vattenmiljön av en liten hamn (800 μm i diameter; Bild 1). Förmodade kemoattrater lastade i brunnarna diffusa i miljön via hamnen, och chemotactic mikrober svara genom att simma genom hamnen i brunnen. Eftersom många faktorer kan påverka resultatet av ett ISCA-experiment i den naturliga miljön, kommer detta steg-för-steg-protokoll att hjälpa nya användare att övervinna potentiella hinder och underlätta effektiva distributioner.

Protocol

Vi rekommenderar att du utför avsnitt 1 före fältexperiment för att optimera resultaten. 1. Optimering av laboratorium OBS: De volymer som beskrivs i optimeringsförfarandet är tillräckliga för en enda ISCA (som består av 20 brunnar). Förberedelse av kemikalien av intresseOBS: Den optimala koncentrationen för varje kemoattratant behöver ofta bestämmas under laboratorieförhållanden före fältutplaceringar. Det kemiska koncentrationsfälte…

Representative Results

Detta avsnitt presenterar laboratorieresultat med hjälp av ISCA för att testa den chemotactic svar marina mikrober till en koncentrationsintervall av glutamin, en aminosyra kända för att locka jordbakterier14. Koncentrationen av glutamin som framkallat den starkaste chemotactic svaret i laboratorietesterna användes för att utföra en chemotaxis analys i den marina miljön. För att utföra laboratorietesterna berikades havsvattensamhällen som provsmakades från k…

Discussion

På skalan av vattenlevande mikroorganismer, är miljön långt ifrån homogen och kännetecknas ofta av fysikaliska / kemiska gradienter som strukturerar mikrobiella samhällen1,15. Kapaciteten hos motil mikroorganismer att använda beteende (dvs. chemotaxis) underlättar födosök inom dessa heterogena mikromiljöer1. Att studera kemotaxis direkt i miljön har potential att identifiera viktiga interspecifika interaktioner och kemiska pre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning finansierades delvis av Gordon och Betty Moore Foundation Marine Microbiology Initiative, genom bidrag GBMF3801 till JRS och RS, och en investigator Award (GBMF3783) till RS, samt en Australian Research Council Fellowship (DE160100636) till J.B.R., en utmärkelse från Simons Foundation till B.S.L. (594111), och ett anslag från Simons Foundation (542395) till R.S. som en del av Principles of Microbial Ecosystems (PriME) Collaborative.

Materials

Acrylic glue Evonik 1133 Acrifix 1S 0116
Acrylic sheet McMaster-Carr 8505K725 Or different company
Adhesive tape Scotch 3M 810 Scotch Magic tape
Autoclave Systec D-200 Or different company
Benchtop centrifuge Fisher Scientific 75002451 Or different company
Bungee cord Paracord Planet 667569184000 Or different company
Centrifuge tube – 2 mL Sigma Aldrich BR780546-500EA Eppendorf tube
Conical centrifuge tube – 15 mL Fisher Scientific 11507411 Falcon tube
Conical centrifuge tube – 50 mL Fisher Scientific 10788561 Falcon tube
Deployment arm Irwin 1964719 Or different company
Deployment enclosure plug Fisher Scientific 21-236-4 See alternatives in manuscript
Disposable wipers Kimtech – Fisher Scientific 06-666 Kimwipes
Flow cytometer Beckman C09756 CYTOFlex
Glutaraldehyde 25% Sigma Aldrich G5882 Or different company
Green fluorescent dye Sigma Aldrich S9430 SYBR Green I – 1:10,000 final dilution
Hydrophilic GP filter cartridge – 0.2 µm Merck C3235 Sterivex filter
In Situ Chemotaxis Assay (ISCA) Contact corresponding authors
Laser cutter Epilog Laser Fusion pro 32 Or different company
Luria Bertani Broth Sigma Aldrich L3022 Or different company
Marine Broth 2216 VWR 90004-006 Difco
Nylon slotted flat head screws McMaster-Carr 92929A243 M 2 × 4 × 8 mm
Pipette set Fisher Scientific 05-403-151 Or different company
Pipette tips – 1 mL Fisher Scientific 21-236-2A Or different company
Pipette tips – 20 µL Fisher Scientific 21-236-4 Or different company
Pipette tips – 200 µL Fisher Scientific 21-236-1 Or different company
Sea salt Sigma Aldrich S9883 For artificial seawater
Serological pipette – 50 mL Sigma Aldrich SIAL1490-100EA Or different company
Syringe filter – 0.02 µm Whatman WHA68091002 Anatop filter
Syringe filter – 0.2 µm Fisher Scientific 10695211 Or different company
Syringe needle 27G Henke Sass Wolf 4710004020 0.4 × 12 mm
Syringes – 1 mL Codau 329650 Insulin Luer U-100
Syringes – 10 mL BD 303134 Or different company
Syringes – 50 mL BD 15899152 Or different company
Tube rack – 15 mL Thomas Scientific 1159V80 Or different company
Tube rack – 50 mL Thomas Scientific 1159V80 Or different company
Uncoated High-Speed Steel General Purpose Tap McMaster-Carr 8305A77 Or different company
Vacuum filter – 0.2 µm Merck SCGPS05RE Steritop filter

References

  1. Stocker, R. Marine microbes see a sea of gradients. Science. 338, 628-633 (2012).
  2. Raina, J. B., Fernandez, V., Lambert, B., Stocker, R., Seymour, J. R. The role of microbial motility and chemotaxis in symbiosis. Nature Reviews Microbiology. 17, 284-294 (2019).
  3. Chet, I., Asketh, P., Mitchell, R. Repulsion of bacteria from marine surfaces. Applied Microbiology. 30, 1043-1045 (1975).
  4. Smriga, S., Fernandez, V. I., Mitchell, J. G., Stocker, R. Chemotaxis toward phytoplankton drives organic matter partitioning among marine bacteria. PNAS. 113, 1576-1581 (2016).
  5. Matilla, M., Krell, T. The effect of bacterial chemotaxis on host infection and pathogenicity. FEMS Microbiology Reviews. 42, (2018).
  6. Adler, J. Chemotaxis in bacteria. Science. 153, 708-716 (1966).
  7. Adler, J., Dahl, M. M. A method for measuring the motility of bacteria and for comparing random and non-random motility. Journal of General Microbiology. 46, 161-173 (1967).
  8. Ahmed, T., Shimizu, T. S., Stocker, R. Microfluidics for bacterial chemotaxis. Integrative Biology. 2, 604-629 (2010).
  9. Hol, F. J. H., Dekker, C. Zooming in to see the bigger picture: microfluidic and nanofabrication tools to study bacteria. Science. 346, 1251821 (2014).
  10. Rusconi, R., Garren, M., Stocker, R. Microfluidics expanding the frontiers of microbial ecology. Annual Review of Biophysics. 43, 65-91 (2014).
  11. Lambert, B. S., et al. A microfluidics-based in situ chemotaxis assay to study the behaviour of aquatic microbial communities. Nature Microbiology. 2, 1344-1349 (2017).
  12. Marie, D., Partensky, F., Jacquet, S., Vaulot, D. Enumeration and cell cycle analysis of natural populations of marine picoplankton by flow cytometry using the nucleic acid stain SYBR Green I. Applied Environmental Microbiology. 63, 186-193 (1997).
  13. Rinke, C., et al. Obtaining genomes from uncultivated environmental microorganisms using FACS-based single-cell genomics. Nature Protocols. 9, 1038-1048 (2014).
  14. Gaworzewska, E. T., Carlile, M. J. Positive chemotaxis of Rhizobium leguminosarum and other bacteria towards root exudates from legumes and other plants. Microbiology. , (1982).
  15. Walker, T. S., Bais, H. P., Grotewold, E., Vivanco, J. M. Root exudation and rhizosphere biology. Plant Physiology. 132, 44-51 (2003).
check_url/61062?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Clerc, E. E., Raina, J., Lambert, B. S., Seymour, J., Stocker, R. In Situ Chemotaxis Assay to Examine Microbial Behavior in Aquatic Ecosystems. J. Vis. Exp. (159), e61062, doi:10.3791/61062 (2020).

View Video