Summary

בידוד מיוציטים פרוזדוריים וחדריים באיכות גבוהה למדידות בו זמנית של Ca2+ Transients וזרם סידן מסוג L

Published: November 03, 2020
doi:

Summary

מודלים עכבריים מאפשרים ללמוד מנגנוני מפתח של arrhythmogenesis. לשם כך, קרדיומיוציטים באיכות גבוהה נחוצים לביצוע מדידות מהדק תיקון. כאן מתוארת שיטה לבידוד מיוציטים פרוזדוריים וחדרי מורין באמצעות זילוח לנגנדורף מבוסס אנזים מדרדר, המאפשר מדידות בו זמנית של סידן חולף וזרם סידן מסוג L.

Abstract

מודלים של עכברים ממלאים תפקיד מכריע בחקר הפרעות קצב ומאפשרים לחקור מנגנונים מרכזיים של הפרעות קצב, כולל שינוי בתפקוד תעלת היונים וטיפול בסידן. לשם כך, קרדיומיוציטים פרוזדוריים או חדריים באיכות גבוהה נחוצים לביצוע מדידות מהדק טלאי או לחקור הפרעות בטיפול בסידן. עם זאת, התשואה המוגבלת של קרדיומיוציטים באיכות גבוהה המתקבלים על ידי פרוטוקולי הבידוד הנוכחיים אינה מאפשרת את שתי המדידות באותו עכבר. מאמר זה מתאר שיטה לבידוד מיוציטים פרוזדוריים וחדרי מורין באיכות גבוהה באמצעות זילוח לנגנדורף מבוסס אנזים מדרדר, למדידות עוקבות בו זמנית של מעברי סידן וזרם סידן מסוג L מחיה אחת. לבבות עכבר מתקבלים, ואבי העורקים הוא cannulated במהירות כדי להסיר דם. לאחר מכן הלבבות מחוררים תחילה בתמיסה נטולת סידן (37°C) כדי לנתק את הרקמה ברמה של דיסקים משולבים ולאחר מכן בתמיסת אנזים המכילה מעט סידן כדי לשבש מטריצה חוץ-תאית (37°C). הלב המעוכל מנותח לאחר מכן לאטריה ולחדרים. דגימות רקמה נחתכות לחתיכות קטנות ומומסות על ידי פיפטציה בזהירות למעלה ולמטה. העיכול האנזימטי מופסק, והתאים מוכנסים מחדש בהדרגה לריכוזי הסידן הפיזיולוגיים. לאחר טעינה עם מחוון פלואורסצנטי Ca2+, קרדיומיוציטים מבודדים מוכנים למדידה בו זמנית של זרמי סידן וחולפים. בנוסף, נדונות מלכודות בידוד ופרוטוקולי מהדק טלאי ועקבות מייצגים של זרמי סידן מסוג L עם מדידות ארעיות סידן בו זמנית במיוציטים מורין פרוזדורים וחדריים שבודדו כמתואר לעיל.

Introduction

הפרעות קצב לב הן נפוצות ואחד האתגרים העיקריים כיום בתחום הבריאות, שכן הן משפיעות על מיליוני אנשים ברחבי העולם. הפרעות קצב קשורות לתחלואה גבוהה ולתמותה 1,2 ומייצגות את הסיבה הבסיסית לרוב מקרי המוות הלבבי הפתאומי3. אפשרויות הטיפול העדכניות שיפרו את הישרדות המטופלים, אך עדיין מדובר בעיקר בטיפולים סימפטומטיים ולא במנגנונים הבסיסיים. לכן, טיפולים אלה הם בעלי יעילות מוגבלת ועלולים לגרום לעתים קרובות לתופעות לוואי חמורות 4,5,6. שיפור אפשרויות הטיפול הנוכחיות דורש תובנה לגבי הפתופיזיולוגיה הבסיסית, מה שיוצר את הצורך במודלים מתאימים למחקר. מודלים של בעלי חיים קטנים – ובמיוחד מודלים של עכברים – ממלאים תפקיד מכריע במחקר הפרעות קצב, שכן הם מאפשרים לחקור מנגנוני מפתח של הפרעות קצב, למשל ההשפעה הגנטית על אלקטרופיזיולוגיה תאית, תפקוד תעלות יונים או טיפול בסידן 7,8.

לשם כך נדרשים קרדיומיוציטים פרוזדוריים וחדריים מבודדים בכמות מספקת וכדאיות. ספקטרום רחב של גישות בידוד שונות להשגת מיוציטים פרוזדוריים וחדריים תואר בעבר 9,10,11,12,13 וכמה קבוצות הציגו נתונים ממדידות סימולטניות של זרם מסוג L וזרם סידן המושרה על ידי מעבר סידן מפרוזדורים 14 או חדר 15 קרדיומיוציטים מורין. עם זאת, למיטב ידיעתנו אין נתונים זמינים על מדידות פרוזדורים כמו גם חדרים מחיה אחת. החוקרים מתמקדים במגוון רחב של נושאים, החל מאלקטרופיזיולוגיה ועד פרוטאומיקה, מחקרים פונקציונליים כמו התכווצות תאים או אינטראקציות חלבונים, תפקוד מיטוכונדריאלי או גנטיקה – כולם זקוקים לקרדיומיוציטים מבודדים. לפיכך, רבים מהפרוטוקולים שפורסמו לא פותחו במיוחד עבור מחקרי מהדק טלאי, מה שמוביל לתפוקות מוגבלות ואיכות תאים לא מספקת למחקרי מהדק טלאים. לפיכך, מדידות בו זמנית של מהדק טלאי וסידן ארעיות של תאים פרוזדוריים וחדרים שבודדו מבעל חיים אחד אינן יכולות להתבצע עם פרוטוקולים מבוססים.

בידוד של מיוציטים מורינים – במיוחד פרוזדורים – עבור ניסויים מהדק טלאי נותר מאתגר. מאמר זה מספק שיטה פשוטה ומהירה לבידוד של מיוציטים פרוזדוריים וחדרי מורין באיכות גבוהה באמצעות זילוח לנגנדורף מבוסס אנזים מדרדר, המאפשר לאחר מכן מדידות בו זמנית הן של זרם קרום נטו והן של מעבר סידן המושרה בזרם מחיה אחת. מאמר זה מפרט פרוטוקול לבידוד מיוציטים פרוזדוריים וחדריים שמקורם בעכברים מסוג בר ובעכברים הנושאים מוטציות גנטיות. פרוטוקול זה יכול לשמש עכברים זכרים ונקבות כאחד. בידוד המיוציטים, התמונות והתוצאות המייצגות המתוארות להלן התקבלו מעכברי בר מסוג C57Bl/6 בגיל 6 (± 1) חודשים. עם זאת, פרוטוקול זה שימש בהצלחה עבור עכברים בגילאים שונים החל מ 2 עד 24 חודשים עם גנוטיפים שונים. איור 1 מראה את מערך הבידוד ותקריב של לב משומר במהלך זילוח אנזימים.

Protocol

כל ההליכים בנושא בעלי חיים אושרו על ידי המועצה לביקורת בעלי חיים בסקסוניה התחתונה (LAVES, AZ-18/2900) ונערכו בהתאם לכל ההנחיות המוסדיות, הלאומיות והבינלאומיות לרווחת בעלי חיים. 1. סידורים מראש הכינו 1 ליטר של חיץ זילוח 10x (טבלה 1), 500 מ”ל של חיץ זילוח 1x (טבלה 2), 50 מ”ל של חיץ עיכול (טבל?…

Representative Results

תפוקת הבידוד נקבעת לאחר החזרת הסידן על ידי הנחת 10 מיקרוליטר של תרחיף התא על שקופית מיקרוסקופ. יותר מ-100 תאים בני קיימא, בצורת מוט, שאינם מתכווצים/10 μL לבידוד תאים פרוזדוריים ויותר מ-1,000 תאים בני קיימא, בצורת מוט, שאינם מתכווצים/10 μL לבידוד תאים חדריים נחשבים לתנובה מספקת ומתקבלים בדרך כלל באמצ…

Discussion

מאמר זה מספק דרך קלה ופונקציונלית להשיג מיוציטים פרוזדוריים וחדריים באיכות גבוהה מאותו עכבר עבור מחקרי מהדק טלאי עם הקלטות סידן חולפות בו זמנית. איכות הנתונים המתקבלים תלויה מאוד באיכות בידוד התא. כפי שהוזכר לעיל, שיטות רבות לבודד קרדיומיוציטים murine תוארו בעבר 9,10,11,12.<sup …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי קרן המחקר הגרמנית (DFG; תוכנית מדען קליני ברפואת כלי דם (PRIME), MA 2186/14-1 לפ’ טומסיץ וד’ שוטלר; VO1568/3-1, IRTG1816 ופרויקט SFB1002 A13 עד N. Voigt), קרן המחקר הגרמנית תחת אסטרטגיית המצוינות של גרמניה (EXC 2067/1- 390729940 ל- N. Voigt), המרכז הגרמני למחקר קרדיווסקולרי (DZHK; 81X2600255 ל- S. Clauss ו- N. Voigt; 81Z0600206 ל- S. Kääb), קרן הקורונה (S199/10079/2019 ל- S. Clauss), ERA-NET למחלות לב וכלי דם (ERA-CVD; 01KL1910 ל- S. Clauss), קרן היינריך-ולוטה-מילפנצל (ל-S. Clauss) וקרן Else-Kröner-Fresenius (EKFS 2016_A20 ל-N. Voigt). למממנים לא היה כל תפקיד בהכנת כתבי היד.

Materials

2,3-Butanedione monoxime Sigma-Aldrich 31550
27G cannula Servoprax L10220
4-Aminopyridine Sigma-Aldrich A78403
Anhydrous DMSO Sigma-Aldrich D12345
Aortic cannula Radnoti 130163-20
BaCl2 Sigma-Aldrich 342920
blunt surgical forceps Kent Scientific INS650915-4
Bovine Calf Serum Sigma-Aldrich 12133C
CaCl2 Sigma-Aldrich C5080
Caffeine Sigma-Aldrich C0750
Circulating heated water bath Julabo ME
Collagenase Type II Worthington LS994177
disscetion scissors Kent Scientific INS600124
DL-aspartat K+-salt Sigma-Aldrich A2025
EGTA Sigma-Aldrich E4378
Fluo-3 Invitrogen F3715
Fluo-3 AM Invitrogen F1242
Glucose Sigma-Aldrich G8270
Guanosine 5′-triphosphate tris salt Sigma-Aldrich G9002
Heating coil Radnoti 158821
Heparin Ratiopharm 25.000 IE/5ml
HEPES Sigma-Aldrich H9136
induction chamber CWE incorporated 13-40020
Isoflurane Cp-pharma 1214
Jacketed heart chamber Radnoti 130160
KCl Merck 1049360250
KH2PO4 Sigma-Aldrich P5655
MgCl x 6H2O Sigma-Aldrich M0250
MgSO4 x 7H2O Sigma-Aldrich M9397
Na2ATP Sigma-Aldrich A2383
Na2HPO4 x 2H2O Sigma-Aldrich S5136
NaCl Sigma-Aldrich S3014
NaHCO3 Sigma-Aldrich S5761
Nylon mesh (200 µm) VWR-Germany 510-9527
pasteur pipette Sigma Aldrich Z331759
petri-dishes Thermo Fisher 150318
Pluronic Acid F-127 Sigma-Aldrich P2443
Probenecid Sigma-Aldrich P8761
Roller Pump Ismatec ISM597D
surgical forceps Kent Scientific INS650908-4
surgical scissors Kent Scientific INS700540
suturing silk Fine Science Tools NC9416241
syringe Merck Z683531-100EA
Taurin Sigma-Aldrich 86330

References

  1. Camm, A. J., et al. Guidelines for the management of atrial fibrillation: the Task force for the management of atrial fibrillation of the European Society of Cardiology (ESC). Europace. 12 (10), 1360-1420 (2010).
  2. Chugh, S. S., et al. Worldwide epidemiology of atrial fibrillation: a global burden of disease 2010 study. Circulation. 129 (8), 837-847 (2014).
  3. Tonchev, I., Luria, D., Orenstein, D., Lotan, C., Biton, Y. For whom the bell tolls : Refining risk assessment for sudden cardiac death. Current Cardiology Reports. 21 (9), 106 (2019).
  4. Kirchhof, P., et al. 2016 ESC Guidelines for the management of atrial fibrillation developed in collaboration with EACTS. European Heart Journal. 37 (38), 2893-2962 (2016).
  5. Dobrev, D., Nattel, S. New antiarrhythmic drugs for treatment of atrial fibrillation. Lancet. 375 (9721), 1212-1223 (2010).
  6. Heijman, J., Voigt, N., Carlsson, L. G., Dobrev, D. Cardiac safety assays. Current opinion in pharmacology. 15, 16-21 (2014).
  7. Schüttler, D., et al. Animal models of atrial fibrillation. Circulation Research. 127 (1), 91-110 (2020).
  8. Clauss, S., et al. Animal models of arrhythmia: classic electrophysiology to genetically modified large animals. Nature Reviews. Cardiology. 16 (8), 457-475 (2019).
  9. Voigt, N., Pearman, C. M., Dobrev, D., Dibb, K. M. Methods for isolating atrial cells from large mammals and humans. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 86, 187-198 (2015).
  10. Jansen, H. J., Rose, R. A. Isolation of atrial myocytes from adult mice. Journal of Visualized Experiments. (149), e59588 (2019).
  11. Blackwood, E. A., Bilal, A. S., Azizi, K., Sarakki, A., Glembotski, C. C. Simultaneous isolation and culture of atrial myocytes, ventricular myocytes, and non-myocytes from an adult mouse heart. Journal of Visualized Experiments. (160), e61224 (2020).
  12. Omatsu-Kanbe, M., Yoshioka, K., Fukunaga, R., Sagawa, H., Matsuura, H. A simple antegrade perfusion method for isolating viable single cardiomyocytes from neonatal to aged mice. Physiological Report. 6 (9), 13688 (2018).
  13. Köhncke, C., et al. Isolation and Kv channel recordings in murine atrial and ventricular cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments. (73), e50145 (2013).
  14. Brandenburg, S., et al. Axial tubule junctions activate atrial Ca(2+) release across species. Frontiers in Physiology. 9, 1227 (2018).
  15. Hofhuis, J., et al. Dysferlin links excitation-contraction coupling to structure and maintenance of the cardiac transverse-axial tubule system. Europace. 22 (7), 1119-1131 (2020).
  16. Voigt, N., Zhou, X. B., Dobrev, D. Isolation of human atrial myocytes for simultaneous measurements of Ca2+ transients and membrane currents. Journal of Visualized Experiment. (77), e50235 (2013).
  17. Voigt, N., Makary, S., Nattel, S., Dobrev, D. Voltage-clamp-based methods for the detection of constitutively active acetylcholine-gated I(K,ACh) channels in the diseased heart. Methods in Enzymology. 484, 653-675 (2010).
  18. Voigt, N., Nattel, S., Dobrev, D. Proarrhythmic atrial calcium cycling in the diseased heart. Advances in Experimental Medicine and Biology. 740, 1175-1191 (2012).
  19. Trafford, A. W., Díaz, M. E., Eisner, D. A. A novel, rapid and reversible method to measure Ca buffering and time-course of total sarcoplasmic reticulum Ca content in cardiac ventricular myocytes. Pflugers Archiv: European Journal of Physiology. 437 (3), 501-503 (1999).
  20. Hamill, O. P., Marty, A., Neher, E., Sakmann, B., Sigworth, F. J. Improved patch-clamp techniques for high-resolution current recording from cells and cell-free membrane patches. European Journal of Physiology. 391 (2), 85-100 (1981).
  21. Voigt, N., et al. Enhanced sarcoplasmic reticulum Ca2+ leak and increased Na+-Ca2+ exchanger function underlie delayed afterdepolarizations in patients with chronic atrial fibrillation. Circulation. 125 (17), 2059-2070 (2012).
  22. Fakuade, F. E., et al. Altered atrial cytosolic calcium handling contributes to the development of postoperative atrial fibrillation. Cardiovascular Research. , (2020).
  23. Chen, W., Frangogiannis, N. G. The role of inflammatory and fibrogenic pathways in heart failure associated with aging. Heart Failure Reviews. 15 (5), 415-422 (2010).
  24. Plačkić, J., Kockskämper, J. Isolation of atrial and ventricular cardiomyocytes for in vitro studies. Methods in Molecular Biology. 1816, 39-54 (2018).
  25. Díaz, M. E., Trafford, A. W., Eisner, D. A. The effects of exogenous calcium buffers on the systolic calcium transient in rat ventricular myocytes. Biophysical Journal. 80 (4), 1915-1925 (2001).
  26. Zimmerman, A. N., Hülsmann, W. C. Paradoxical influence of calcium ions on the permeability of the cell membranes of the isolated rat heart. Nature. 211 (5049), 646-647 (1966).
  27. Chen, X., O’Connell, T. D., Xiang, Y. K. With or without Langendorff: A new method for adult myocyte isolation to be tested with time. Circulation Research. 119 (8), 888-890 (2016).
  28. Kappadan, V., et al. High-resolution optical measurement of cardiac restitution, contraction, and fibrillation dynamics in beating vs. blebbistatin-uncoupled isolated rabbit hearts. Frontiers in Physiology. 11, 464 (2020).
  29. Brack, K. E., Narang, R., Winter, J., Ng, G. A. The mechanical uncoupler blebbistatin is associated with significant electrophysiological effects in the isolated rabbit heart. Experiment in Physiology. 98 (5), 1009-1027 (2013).
  30. Seibertz, F., Reynolds, M., Voigt, N. Single-cell optical action potential measurement in human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Journal of Visual Experiment. , e61890 (2020).
check_url/61964?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tomsits, P., Schüttler, D., Kääb, S., Clauss, S., Voigt, N. Isolation of High Quality Murine Atrial and Ventricular Myocytes for Simultaneous Measurements of Ca2+ Transients and L-Type Calcium Current. J. Vis. Exp. (165), e61964, doi:10.3791/61964 (2020).

View Video