Summary

Visualisering af membranflæsedannelse ved hjælp af scanningselektronmikroskopi

Published: May 27, 2021
doi:

Summary

Makropinocytose er en stærkt bevaret endocytisk proces initieret ved dannelsen af F-actinrige arklignende membranfremspring, også kendt som membranflæser. Øget hastighed af makropinocytotisk solind internalisering har været impliceret i forskellige patologiske tilstande. Denne protokol præsenterer en metode til at kvantificere membranflæsedannelse in vitro ved hjælp af scanningselektronmikroskopi.

Abstract

Membranruffling er dannelsen af bevægelige plasmamembranfremspring indeholdende et meshwork af nyligt polymeriserede actinfilamenter. Membranflæser kan dannes spontant eller som reaktion på vækstfaktorer, inflammatoriske cytokiner og phorbolestere. Nogle af membranfremspringene kan omorganisere sig i cirkulære membranflæser, der smelter sammen ved deres distale margener og danner kopper, der lukker og adskiller sig i cytoplasmaet som store, heterogene vakuoler kaldet makropinosomer. Under processen fælder flæser ekstracellulær væske og opløste stoffer, der internaliserer i makropinosomer. Højopløselig scanningselektronmikroskopi (SEM) er en almindeligt anvendt billeddannelsesteknik til at visualisere og kvantificere membranflæsedannelse, cirkulære fremspring og lukkede makropinocytiske kopper på celleoverfladen. Følgende protokol beskriver cellekulturbetingelserne, stimulering af membranflæsedannelsen in vitro, og hvordan man fikserer, dehydrerer og forbereder celler til billeddannelse ved hjælp af SEM. Kvantificering af membranruffling, datanormalisering og stimulatorer og hæmmere af membranflæsedannelse er også beskrevet. Denne metode kan hjælpe med at besvare centrale spørgsmål om makropinocytoseens rolle i fysiologiske og patologiske processer, undersøge nye mål, der regulerer dannelsen af membranflæser, og identificere endnu ukarakteriserede fysiologiske stimulatorer samt nye farmakologiske hæmmere af makropinocytose.

Introduction

Makropinocytose er en endocytisk proces, der er ansvarlig for internalisering af en stor mængde ekstracellulær væske og dens indhold via dannelsen af dynamiske og aktindrevne plasmamembranfremspring kaldet membranflæser1. Mange af disse membranflæser danner kopper, der lukker og smelter tilbage på cellen og adskilles fra plasmamembranen som store, heterogene intracellulære endosomer, også kendt som makropinosomer1. Selvom makropinocytose induceres af vækstfaktorer som makrofagkolonistimulerende faktor (M-CSF) og epidermal vækstfaktor (EGF) i en lang række celletyper, er der også observeret en yderligere unik, calciumafhængig proces kendt som konstitutiv makropinocytose i medfødte immunceller 2,3,4,5,6,7,8.

Cellernes evne til at internalisere ekstracellulært materiale via makropinocytose har vist sig at spille en vigtig rolle i en række fysiologiske processer, der spænder fra næringsoptagelse til patogenfangst og antigenpræsentation 9,10,11. Men fordi denne proces er ikke-selektiv og inducerbar, har den også været impliceret i en række patologiske tilstande. Faktisk foreslog tidligere undersøgelser, at makropinocytose spiller en vigtig rolle i Alzheimers sygdom, Parkinsons sygdom, kræft, nefrolitose og aterosklerose 12,13,14,15,16. Desuden har visse bakterier og vira vist sig at udnytte makropinocytose til at få adgang til værtsceller og fremkalde infektion 17,18. Interessant nok kan stimulering af makropinocytose også udnyttes til målrettet levering af terapeutiske midler under forskellige sygdomstilstande 19,20.

Tidligere undersøgelser har undersøgt makropinocytose ved at kvantificere internaliserede fluorescerende mærkede væskefasemarkører i fravær og tilstedeværelse af farmakologiske midler, der hæmmer makropinocytose ved hjælp af flowcytometri og konfokal billeddannelse21,22. Aktuelt tilgængelige farmakologiske værktøjer, der hæmmer makropinocytose, er begrænset til og består af 1) actinpolymerisationshæmmere (cytochalasin D og latrunculiner), 2) PI3K-blokkere (LY-290042 og wortmannin) og 3) hæmmere af natriumhydrogenbyttere (NHE) (amilocid og EIPA)5,14,15,23,24,25 . Men fordi disse hæmmere har endocytose uafhængige virkninger, er det vanskeligt selektivt at bestemme makropinocytose bidrag til opløst optagelse og sygdomspatogenese, især in vivo21.

Scanning elektronmikroskopi (SEM) er en type elektronmikroskop, der producerer ultrahøjopløselige billeder af celler ved hjælp af en fokuseret stråle af elektroner26. I makropinocytoseforskning betragtes SEM-billeddannelse som guldstandardteknikken til at visualisere topografiske og morfologiske egenskaber ved plasmamembranen, kvantificere membranflæsedannelse og undersøge deres progression mod makropinosominternalisering. Desuden giver scanningselektronmikroskopi kombineret med kvantificering af opløst stofoptagelse i nærvær og fravær af makropinocytoseblokkere en pålidelig strategi til undersøgelse af makropinocytotisk solintualisering in vitro. Dette papir giver en detaljeret protokol om, hvordan man forbereder celler til SEM, visualiserer celleoverfladen, kvantificerer flæsedannelse og undersøger deres fremskridt mod koplukning og makropinosominternalisering.

Protocol

BEMÆRK: Følgende er en generel protokol, der bruges til at kvantificere membranflæsedannelse i RAW 264.7 makrofager ved hjælp af SEM-mikroskopi. Optimering kan være påkrævet for forskellige celletyper. 1. Cellelinje og cellekultur Dyrk RAW 264,7 makrofager i Dulbeccos Modified Eagle Medium (DMEM) suppleret med 10% (vol/vol) varmeinaktiveret føtal bovin serum (FBS), 100 IE/ml penicillin og 100 μg/ml streptomycin i en befugtet inkubator ved 37 °C og 5 % CO2. Udskif…

Representative Results

Her beskriver vi resultaterne fra den præsenterede teknik. Repræsentative SEM-billeder vist i figur 1 viser dannelse af membranflæser i RAW 264.7 makrofager efter behandling med PMA og M-CSF. Billeder blev først taget ved en forstørrelse på 3.500x til kvantificeringsformål og derefter ved højere forstørrelsesniveauer (8.500x til 16.000x) for at vise plasmamembranen ved større detaljer. Forbehandling af makrofager med makropinocytosehæmmeren EIPA-svækket membranflæsedannelse (<st…

Discussion

Den nuværende SEM-billeddannelsesprotokol giver et værktøj til at visualisere og kvantificere membranflæsedannelse, cirkulære fremspring og makropinocytiske kopper på celleoverfladen in vitro. Selvom den nuværende protokol fokuserer på makrofager, har undersøgelser vist, at membranflæsedannelse også forekommer på forskellige andre celletyper, herunder dendritiske celler, fibroblaster, neuroner og kræftceller 11,12,14,21,30.<sup cl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Libby Perry (Augusta University) for hendes hjælp med SEM-prøveforberedelsen. Dette arbejde blev støttet af National Institutes of Health [R01HL139562 (G.C.) og K99HL146954 (BS)] og American Heart Association [17POST33661254 (BS)].

Materials

0.5% Trypsin-EDTA Gibco 15400-054
2% Glutaraldehyde Electron Microscopy Sciences 16320
4% Paraformaldehyde Santa Cruz Biotechnology 281692
5-(N-ethyl-N-isopropyl)-Amiloride Sigma Life Science A3085
Accuri C6 Flow Cytometer
Carbon Adhesive Tabs Electron Microscopy Sciences 77825-09
Dimethyl Sulfoxide Corning 25-950-CQC
Dulbecco's Modified Eagle Medium Cytiva Life Sciences SH30022.01
Falcon 24-well Clear Flat Bottom TC-treated Multiwell Cell Culture Plate Falcon 353047
Fetal Bovine Serum Gemini Bio 900-108
FitC-dextran Thermo Fisher Scientific D1823
FM 4-64 Thermo Fisher Scientific T13320
HERAcell 150i CO2 incubator Thermo Fisher Scientific 51026282
Hummer Model 6.2 Sputter Coater Anatech USA 58565
JSM-IT500HR scanning electron microscope
Microscope Cover Glass Thermo Fisher Scientific 12-545-82
Pen Strep Gibco 15140-122
phorbol 12-myristate 13-acetate Millipore Sigma 524400
RAW 264.7 macrophage ATCC ATCC TIB-71
Recombinant Human M-CSF Peprotech 300-25
Samdri-790 Critical Point Dryer Tousimis Research Corporation 8778B
SEM Aluminum Specimen Mounts Electron Microscopy Sciences 75220
Sodium Cacodylate Electron Microscopy Sciences 12300
Texas red-dextra Thermo Fisher Scientific D1864
Trypan Blue Solution Thermo Fisher Scientific 15250061
Zeiss LSM 780 confocal microscope

References

  1. Bohdanowicz, M., Grinstein, S. Role of phospholipids in endocytosis, phagocytosis, and macropinocytosis. Physiological Reviews. 93 (1), 69-106 (2013).
  2. Canton, J. Macropinocytosis: New Insights Into Its Underappreciated Role in Innate Immune Cell Surveillance. Frontiers in Immunology. 9, 2286 (2018).
  3. Racoosin, E. L., Swanson, J. A. M-CSF-induced macropinocytosis increases solute endocytosis but not receptor-mediated endocytosis in mouse macrophages. Journal of Cell Science. 102, 867-880 (1992).
  4. Yoshida, S., et al. Differential signaling during macropinocytosis in response to M-CSF and PMA in macrophages. Frontiers in Physiology. 6, 8 (2015).
  5. Ghoshal, P., et al. Nox2-Mediated PI3K and Cofilin Activation Confers Alternate Redox Control of Macrophage Pinocytosis. Antioxidant and Redox Signal. 26 (16), 902-916 (2017).
  6. Bryant, D. M., et al. EGF induces macropinocytosis and SNX1-modulated recycling of E-cadherin. Journal of Cell Science. 120, 1818-1828 (2007).
  7. West, M. A., Bretscher, M. S., Watts, C. Distinct endocytotic pathways in epidermal growth factor-stimulated human carcinoma A431 cells. Journal of Cell Biology. 109 (6), 2731-2739 (1989).
  8. Hagiwara, M., Nakase, I. Epidermal growth factor induced macropinocytosis directs branch formation of lung epithelial cells. Biochemical and Biophysical Research Communications. 507 (1-4), 297-303 (2018).
  9. Commisso, C., et al. Macropinocytosis of protein is an amino acid supply route in Ras-transformed cells. Nature. 497 (7451), 633-637 (2013).
  10. Bosedasgupta, S., Pieters, J. Inflammatory stimuli reprogram macrophage phagocytosis to macropinocytosis for the rapid elimination of pathogens. PLoS Pathogens. 10 (1), 1003879 (2014).
  11. Liu, Z., Roche, P. A. Macropinocytosis in phagocytes: Regulation of MHC class-II-restricted antigen presentation in dendritic cells. Frontiers in Physiology. 6, 1 (2015).
  12. Zeineddine, R., Yerbury, J. J. The role of macropinocytosis in the propagation of protein aggregation associated with neurodegenerative diseases. Frontiers in Physiology. 6, 277 (2015).
  13. Yerbury, J. J. Protein aggregates stimulate macropinocytosis facilitating their propagation. Prion. 10 (2), 119-126 (2016).
  14. Jayashankar, V., Edinger, A. L. Macropinocytosis confers resistance to therapies targeting cancer anabolism. Nature Communication. 11 (1), 1121 (2020).
  15. Kanlaya, R., et al. Macropinocytosis is the major mechanism for endocytosis of calcium oxalate crystals into renal tubular cells. Cell Biochemistry and Biophysics. 67 (3), 1171-1179 (2013).
  16. Csanyi, G., et al. CD47 and Nox1 mediate dynamic fluid-phase macropinocytosis of native LDL. Antioxidants and Redox Signaling. 26 (16), 886-901 (2017).
  17. Francis, C. L., et al. Ruffles induced by Salmonella and other stimuli direct macropinocytosis of bacteria. Nature. 364 (6438), 639-642 (1993).
  18. Mercer, J., Helenius, A. Virus entry by macropinocytosis. Nature Cell Biology. 11 (5), 510-520 (2009).
  19. Liu, X., Ghosh, D. Intracellular nanoparticle delivery by oncogenic KRAS-mediated macropinocytosis. International Journal of Nanomedicine. 14, 6589-6600 (2019).
  20. Desai, A. S., Hunter, M. R., Kapustin, A. N. Using macropinocytosis for intracellular delivery of therapeutic nucleic acids to tumour cells. Philosophical Transactions of Royal Society of London B: Biological Sciences. 374 (1765), 20180156 (2019).
  21. Lin, H. P., et al. Identification of novel macropinocytosis inhibitors using a rational screen of Food and Drug Administration-approved drugs. British Journal of Pharmacology. 175 (18), 3640-3655 (2018).
  22. Singla, B., et al. PKCδ-Mediated Nox2 Activation Promotes Fluid-Phase Pinocytosis of Antigens by Immature Dendritic Cells. Frontiers in Immunology. 9, 537 (2018).
  23. Ivanov, A. I. Pharmacological inhibition of endocytic pathways: is it specific enough to be useful. Methods in Molecular Biology. 440, 15-33 (2008).
  24. Araki, N., et al. Effect of 3-methyladenine on the fusion process of macropinosomes in EGF-stimulated A431 cells. Cell Structure and Function. 31 (2), 145-157 (2006).
  25. Koivusalo, M., et al. Amiloride inhibits macropinocytosis by lowering submembranous pH and preventing Rac1 and Cdc42 signaling. Journal of Cell Biology. 188 (4), 547-563 (2010).
  26. Fischer, E. R., et al. Scanning electron microscopy. Current Protocols in Microbiology. , (2012).
  27. Yoshida, S., et al. Dorsal ruffles enhance activation of Akt by growth factors. Journal of Cell Science. 131 (22), (2018).
  28. Nakase, I., et al. Active macropinocytosis induction by stimulation of epidermal growth factor receptor and oncogenic Ras expression potentiates cellular uptake efficacy of exosomes. Science Reports. 5, 10300 (2015).
  29. Gold, S., et al. A clathrin independent macropinocytosis-like entry mechanism used by bluetongue virus-1 during infection of BHK cells. PLoS One. 5 (6), 11360 (2010).
  30. Mishra, R., Bhowmick, N. A. Visualization of Macropinocytosis in Prostate Fibroblasts. Bio- Protocols. 9 (10), (2019).
  31. Gordon, R. E. Electron microscopy: A brief history and review of current clinical application. Methods in Molecular Biology. 1180, 119-135 (2014).
  32. Mahankali, M., et al. The mechanism of cell membrane ruffling relies on a phospholipase D2 (PLD2), Grb2 and Rac2 association. Cell Signaling. 23 (8), 1291-1298 (2011).
check_url/62658?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ahn, W., Singla, B., Marshall, B., Csányi, G. Visualizing Membrane Ruffle Formation using Scanning Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (171), e62658, doi:10.3791/62658 (2021).

View Video