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Medicine

免疫不全ニューロパチーを検出するための神経超音波プロトコル

Published: October 7, 2021 doi: 10.3791/62900

Summary

この記事では、炎症性ニューロパチーの診断を支援するための多発性ニューロパチーにおける神経超音波のプロトコルを紹介します。

Abstract

神経超音波は、神経伝導研究の補完的なツールとして、多発ニューロパチーの鑑別診断にますます使用されています。断面積(CSA)の増加などの末梢神経の形態学的変化は、さまざまな免疫介在性多発ニューロパチーで説明されています。神経超音波における最も顕著な形態学的変化は、慢性炎症性脱髄性多発ニューロパチー(CIDP)スペクトラム疾患について記載されている。CIDPは、神経腫脹(CSA増加)の程度およびパターンを測定することにより、遺伝性および他の多発性神経障害と区別することができる。脱髄炎症性ニューロパチーの典型的な所見は、不均一な筋膜構造を伴う多巣性神経腫脹であるが、脱髄性遺伝性ニューロパチーにおけるCSAの増加は、より一般化された均質な方法で起こる。他の非炎症性軸索ニューロパチーでは、神経は、特に典型的な閉じ込め部位において、正常またはわずかなCSA増加を伴って現れることがある。本稿では、神経超音波の技術的要件、標準化された検査プロトコルを使用した検査手順、CSAの現在の基準値、および炎症性神経障害患者の典型的な超音波病理学的所見について説明します。

Introduction

臨床検査の次に、大線維性多発ニューロパチーの評価には、運動系または感覚系の関与を特徴付け、軸索と脱髄損傷を区別するための電気生理学的検査が含まれます1。軸索性多発ニューロパチーでは、毒性および糖尿病性ニューロパチーが主な原因ですが、脱髄性多発ニューロパチーでは、CIDPなどの遺伝性または炎症性ニューロパチーを考慮する必要があります2,3,4CIDPの一般的に使用される診断基準は、2005年に制定され、2010年と2021年に改訂された欧州神経学会連盟/末梢神経学会(EFNS / PNS)基準です5。これらは、CIDPを診断するための臨床的および電気生理学的基準を定義し、脱髄または炎症を検出するための神経生検などの追加の基準を説明しています。しかし、場合によっては、徹底的な診断検査にもかかわらず、神経障害の原因はあいまいなままです。このような場合、神経超音波は、神経を機能的ではなく形態学的に検査するための補完的な方法を提供します6。いくつかの研究は、CIDPを診断する際の追加ツールとして神経超音波の使用を証明したため、2021年の改訂されたEFNS / PNS基準はガイドライン5で神経超音波を実装しました。磁気共鳴ニューログラフィー(MRN)などの他のイメージング方法と比較した神経超音波の利点は、治療を行う神経科医がベッドサイドツールとして直接使用できることです。比較的費用対効果が高いです。非侵襲的で痛みを伴わないため、繰り返し使用できます。

神経超音波で観察されるCIDPの典型的な特徴は、断面積(CSA)の増加7,8であり、遺伝性多発ニューロパチーにも見られます。CIDPでは、これは個々の神経セグメントに不均一に影響を及ぼします7,9

正常なCSA値を明確にし、超音波検査の適切な解剖学的位置を決定しようとするさまざまな検査プロトコルが公開されています10,11,12,13,14,15。これらの立場のいくつかは、ほとんどの試験プロトコルで類似しています。しかしながら、検査プロセスを標準化しそして測定の解釈を単純化するための広く受け入れられているプロトコルは存在しない。

本稿では,多発性ニューロパチーの標準化されたプロトコールを用いた神経超音波検査の実例を示し,CSAの様々な基準値を提示し,炎症性ニューロパチー患者の典型的な病理所見を示す。

神経超音波の技術要件
神経筋超音波は、対応する超音波装置616の化合物画像化を用いてBモード(輝度モードグレーレベルを有する2次元画像)で行われる。複合イメージングは、ソニックプローブ(トランスデューサ)内の圧電素子の電子制御を可能にし、異なる角度からターゲット構造を照らす17。超音波は、末梢神経の組織学的構造のためにいくつかの方向に反射される。さまざまな角度からの音の結果として、そうでなければ失われた反射のより重要な部分がサウンドプローブ(レシーバー)に戻り、画像を生成することができます。神経筋超音波の場合、18MHzリニアアレイトランスデューサを備えた高解像度超音波プローブが、より深い神経の場合、追加の12MHzリニアアレイプローブ(例えば、膝窩窩の脛骨および腓骨神経を表示するため)が使用されます6,16。トランスデューサの周波数が低いと、空間分解能と横方向の分解能が低下するため、神経境界と周囲の構造との区別の精度が低下します。最適な設定は、メーカーが提供する神経筋イメージング用のプリセットを使用して一定に保つことができます。検査中、画像の奥行きと焦点位置は、検査する構造に合わせて調整し、常に神経の位置に適合させる必要があります。B画像ゲインと深度依存ゲインを調整して、均一な明るさで画像を最適化することができます。血管は神経構造に近いことが多く、同じ位置で測定を行うための目印としてよく使用されます。それらの解剖学的相互作用を描写し、神経と血管を区別するために、パルスドップラーおよび色分けされた二重超音波検査を使用して流速と方向を表示する必要もあります16,18。パルス繰り返し周波数は、四肢の血管内の予想される低流速に適合させるか、色分け16のためにパワードップラーを選択する必要があります。

神経は超音波を入射角によって反射が異なるため、超音波画像はエコー源性(異方性)が異なります16,19。超音波はこの角度の神経によって最も強く反射されるため、最良の画像は直交角度から達成されます。したがって、人工的な異方性や神経の変形を避けるために、検査中は神経に垂直に追加の圧力をかけずにプローブを中立位置に保持する必要があります(図1)。断面積(CSA)は、測定19における上神経組織の変化を避けるために、薄い高エコー性神経外神経(図2)内で測定される。テクニカル超音波の詳細については、参考文献6,16,17,18,19,20,21を参照してください。

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Protocol

この作業のすべての試験は、ドイツのルール大学ボーフムの制度的ガイドラインに従って実施されました。

1.実験準備

  1. 患者の準備
    1. 患者の選択基準を確認してください:炎症起源が疑われる多発ニューロパチーと診断された成人患者を調べます。
    2. 患者の除外基準を確認してください:検査する領域に開いた傷や感染症のある患者を検査しないでください。
  2. インストゥルメンタルチェックポイント
    1. 超音波装置と使用されているすべての材料の完全性を確認してください( 材料の表を参照)。
    2. 超音波検査を開始する前に、超音波装置に患者名と詳細を入力してください(装置によって異なります)。
    3. 適切な超音波プローブ(14〜18 MHzを推奨)を選択し( 材料の表を参照)、神経筋超音波用にプリセットします。
    4. 検査全体を通して、深さを調整し、最適な画質を得ることに集中してください。
    5. 可能な限り、断面図で各神経の完全な経過を調べます。
      注:検査に推奨される神経は、正中神経、尺骨神経、橈骨神経、頸根、腕神経叢、迷走神経、および脛骨神経、腓骨神経、腓腹神経です(図3)。これらの各神経の検査は、次のセクションとビデオに示されています。以下のプロトコルに従った超音波検査全体は、~30-45分かかります。

2.超音波検査

  1. 患者を中立位置に座らせ、腕を脚などの表面に回外に置いて、腕の神経の検査を開始します。
  2. 超音波ゲルをトランスデューサープローブ、手首、前腕、肘、上腕の上に置きます。
  3. 正中神経の検査のために、手首レベルで横方向のスキャンを実行することから始めます。
  4. 正中神経の解剖学的経過を上腕までたどるように近位に移動します。
  5. 以下の部位で正中神経のCSAを測定する:手根管(網膜屈曲)の入り口で;前腕部(網膜屈筋の近位10〜15 cm、肘(肘の曲がり角)、上腕動脈の隣の上腕(内側上顆と腋窩の間の距離の中央)。
  6. 尺骨神経の検査のために、手首尺骨から正中神経のレベルで横方向のスキャンを実行することから始めます。
  7. 尺骨に沿って尺骨神経の解剖学的経過をたどって上腕まで近位に移動します。
    注意: 上腕に向かって移動し、患者に肘で曲げた腕を上げて、溝と上腕を調べます。
  8. 以下の部位で尺骨神経のCSAを測定する:ギヨン運河の入り口で。前腕(ギヨン管の近位10〜15 cm)。肘(内側上顆と肘頭の間)。上腕(内側上顆と腋窩の間の距離の中央)。
  9. 橈骨神経を調べるには、患者に肘で曲げた胃の前に腕を持たせ、上腕骨のすぐ隣の橈骨神経をスキャンします。
  10. 付随する動脈や静脈との混同を避けるために、カラーデュプレックスモードを使用してください。
    注:カラーデュプレックスモードは、腕骨前部動脈の血流を示し、対応する静脈の流れが少ない場合がありますが、橈骨神経では流れが発生しません。さらに、静脈は外圧を加えることによって圧迫することができ、神経はできません。
  11. 次の部位で橈骨神経のCSAを測定します:らせん溝の橈骨神経。
  12. 迷走神経、頸神経根、腕神経叢の検査を続けます。
  13. 首の真ん中に超音波ゲルを置きます。
  14. 迷走神経を調べるには、首の中央で横方向のスキャンを行い、頸動脈を見つけます。
    注:迷走神経は頸動脈と頸静脈のすぐ隣にあります。
  15. 次の部位で迷走神経のCSAを測定します:頸動脈分岐部のレベルで頸動脈鞘で。
  16. 頸部神経根の検査では、C5、C6、C7でプローブを背側と少し上下に動かします。
    注:頸神経根は、横突起の前結節と後結節の間に現れます。C7は、その横突起から前結節がないことによって認識することができるが、前結節および後結節の両方が他の頸神経根と共に見出される。
  17. 神経根が横突起にわたって出る可能な限り最も近位の位置で、CSAまたは頸部神経根の直径のいずれかを測定します:C5;C6;C7.
  18. 腕神経叢を調べるには、頸神経根の解剖学的経過を遠位にたどり、体幹と索体が機能するのを見つけます。
  19. 次の部位で神経叢のCSAを測定します:斜角筋内空間(斜角筋前部と内側斜角筋の間);鎖骨上腔(鎖骨下腔の隣)。
  20. 脚の神経の検査を続けてください。
  21. 足を少し曲げた状態で患者を片側に寝かせます。トランスデューサープローブ、膝窩窩、腓骨、くるぶし、および下腿の上に超音波ゲルを置きます。
  22. 腓骨神経の検査のために、腓骨頭を感じ、トランスデューサーをその真後ろに置き、次に膝窩窩まで神経の経過をたどります。
  23. 以下の部位で腓骨神経のCSAを測定する:腓骨頭のすぐ近位;膝窩窩で。
  24. 膝窩窩の脛骨神経を調べるには、膝窩窩の腓骨神経と膝窩動脈を見つけます。
    注:ほとんどの場合、脛骨神経は膝窩動脈のすぐ上にあります。
  25. 次の部位で脛骨神経のCSAを測定します:膝窩窩で。
  26. 足首の脛骨神経を検査するには、プローブを内側くるぶしのすぐ後ろに置きます。
    注:脛骨神経は、ほとんどの場合、後脛骨動脈のすぐ隣にあります。
  27. 次の部位で脛骨神経のCSAを測定します:内側足首のレベルで。
  28. 腓腹神経の検査のために、外側足首にプローブを置きます。
    注:腓腹神経は、ほとんどの場合、表在静脈の隣にあります。
  29. 下肢の近位にある腓腹神経の解剖学的経過をたどる。
  30. 次の部位で腓腹神経のCSAを測定します:腓腹筋の外側頭と内側頭の間。
  31. 両側ですべての測定を実行します。
  32. すべての測定結果を保存し(超音波装置によって異なります)、検査を終了します。
    注: 図3 は、CSAのすべての測定サイトの概要を示しています。

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Representative Results

各超音波検査室は、特定の超音波装置と検査官または集団依存変数が各検査室でわずかに異なる結果につながる可能性があるため、健康な地域集団からデータを収集することによってCSA基準値を確立する必要があります。ただし、どのCSA値が正常と見なすことができるかを示すために、2つの主要なドイツの神経超音波グループからのデータと、これまでに公開されたすべての参照値13、14、152223の最近のメタアナリシスを表1に要約します。当科でこのプロトコールで研究された患者の参考値は、Kerasnoudis et al.22によるものです(表1)。

脱髄炎症性ニューロパチーの典型的な所見は、不均一な束を伴う多巣性神経腫脹であるが、脱髄性遺伝性ニューロパチーにおける神経腫脹は、より一般化され均質に起こる12,24。CSAの増加の組織学的相関は、急性炎症および反復脱髄および髄鞘再形成であると想定される。ただし、これはまだ調査されていません7.他の非炎症性軸索ニューロパチーでは、神経は、特に典型的な閉じ込め部位において、正常またはわずかに増加したサイズに見えることがある25,26,27,28。

結果の解釈を簡素化するために、調整されたボーフム超音波スコアがスコアリングシステムとして提案されており、CIDPなどの慢性炎症性神経障害と非炎症性神経障害を区別するのに役立ちます。

調整されたボーフム超音波スコアは、上記の測定部位のうち、前腕の正中神経、上腕の正中神経、前腕の尺骨神経、上腕の尺骨神経、上腕の橈骨神経、ふくらはぎの腓腹神経の6つのCSAが有意に拡大した部位の数から計算されます。これら6つのサイトのみの検査には、~15分かかります。これらの6つの部位のそれぞれは、神経が体の片側または両側に病理学的CSA拡大を示す場合、1ポイントでスコアリングされます。したがって、最小スコアは0ポイント、最大スコアは6ポイントです。このスコアリングシステムでは、≥2ポイントが割り当てられている場合、神経伝導研究で軸索損傷が追加された場合でも、電気生理学的基準による検出が困難であっても、感度~53%、特異度~83%のCIDPの診断が可能です。

異なるグループは、ニューロパシー10、11182930を区別するために他のスコアリングシステムを提案している。これらのスコアはどれも広く使用されていません。調整されたボーフム超音波スコアは、CIDPをギランバレー症候群と区別するための4つの測定部位から得られたボーフム超音波スコア10と、CIDPをMMN、MADSAMおよび血管炎またはパラタンパク血症性ニューロパチーと区別するための9つの測定部位から得られた神経超音波プロトコル30を説明する以前の出版物に基づいています。これらの異なるスコアは、正確な質問に応じて使用する必要があります。調整されたボーフム超音波スコアは、神経伝導研究が電気生理学的EFNS / PNS基準5によって定義される可能性のあるCIDPを示した場合にCIDPを診断するために開発されました。

しかしながら、調整されたボーフム超音波スコアが計算のために6つの神経部位のみを使用する場合であっても、さらに他のすべての記載された神経部位および各神経の全過程を調べて、限局性病変31を検出するか、または均質な拡大を除外すべきである。均質な神経肥大の場合、遺伝性ニューロパチーを考慮する必要があります24。均質性および筋膜構造の変化に関するスコアリングシステムは以前に説明されており、均質性の評価に役立つ可能性があります8,24,32

健康な人の超音波画像については、 図4を参照してください。例えば、CIDP患者からの画像は、 図5を参照されたい。

Figure 1
図1:手首の正中神経の検査。 人工的な異方性や神経の変形を避けるために、検査中は、神経に垂直に追加の圧力をかけずにプローブを中立位置に保持する必要があります。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 2
図2:断面積(CSA)の測定。 断面積は、薄い高エコー性上神経内で測定されます。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 3
図3:CSAの測定部位の概要。 青い星 - 正中神経、緑の星 - 尺骨神経、赤い星 - 橈骨神経、ピンクの星 - 迷走神経、黄色の星 - 頸部根と腕神経叢、白い星 - 腓骨神経、紫色の星 - 脛骨神経、茶色の星 - 腓腹神経。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 4
図4:調整されたボーフム超音波スコアに使用された6つの神経部位の健康な人の画像例。 A - 前腕の正中神経、B - 上腕の正中神経、C - 上腕の橈骨神経、D - 前腕の尺骨神経、E - 上腕の尺骨神経、F - ふくらはぎの腓腹神経。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

Figure 5
図5:調整されたボーフム超音波スコアに使用された6つの神経部位のCIDP患者の画像例。 A - 前腕の正中神経、B - 上腕の正中神経、C - 上腕の橈骨神経、D - 前腕の尺骨神経、E - 上腕の尺骨神経、F - ふくらはぎの腓腹神経。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

ケラスヌーディスら22 グリムら23 メタアナリシス
フィッセら13-15
神経 敷地 CSAを意味する 標準偏差 CSAを意味する CSAを意味する 95%信頼区間
(ミリメートル2) (ミリメートル2) (ミリメートル2) (ミリメートル2)
正中神経 手首 8.43 2.07 10.6 8.3 7.9 - 8.7
前腕 6.6 1.6 7.2 6.4 5.9 - 6.9
- - 9.2 - -
上腕 8.4 2.87 9.1 8.3 7.5 - 9.0
尺骨神経 ギヨン・ロゲ 5.16 1.03 - 4.1 3.6 - 4.6
前腕 5.46 1.26 5.9 5.2 4.8 - 5.7
5.33 1.4 8.7 5.9 5.4 - 6.5
上腕 6.53 1.82 7 6.6 5.1 - 6.1
橈骨神経 上腕 3.26 1.52 - 5.1 4.0 - 6.2
迷走神経 頸動脈鞘 - - 2.2 2.2 1.5 – 2.9
C5クラス - - 2.4* 5.6 4.6 – 6.7
C6 クラス - - 3.4* 8.8 7.4 – 10.3
C7クラス - - - 9.5 8.0 – 10.9
神経 叢 斜角筋内空間 30.93 10.82 - - -
鎖骨上腔 46.13 18.27 - - -
腓骨神経 腓骨頭 7.1 2.3 - 8.4 6.8 – 9.9
膝窩窩 8.60 1.77 8.4 7.9 6.6 – 9.2
脛骨神経 膝窩窩 8.43 2.68 23.2 25.9 17.5 – 34.4
くるぶし 6.36 1.45 10.2 10 7.7 – 12.4
腓腹神経 腓腹筋の頭 1.82 0.64 2.2** 2.4 1.7 – 3.1
* Grimm et al.23 は直径を測定し、C5およびC6根のCSAではない。
** Grimm et al.23 は外側足首の腓腹神経を測定した。

表1:患者の参照CSA値。提案された参照値は、Kerasnoudis et al.22、Grimm et al.23の発表、およびFisse et al.13,14,15による最近のメタアナリシスに基づいています。ここに提示されたプロトコルの下で私たちの部門で研究された患者の基準値は、Kerasnoudis et al.22によるものです。

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Discussion

神経超音波は、多発性神経障害において有用な追加の診断ツールです。それは、神経肥大の程度およびパターンに応じて、多発ニューロパチーの考えられる原因に関する情報を与えることができる。さらに、CIDP患者の縦断的疾患経過におけるCSAの変化は、臨床疾患経過および治療応答と相関することが記載されている33343536

プロトコル内の重要なステップ
再現性のある結果を得るためには、一貫した方法論と検査の標準化が不可欠です37,38。各検査官は、異なる超音波装置および人口統計の局所的な違いに起因する偏差を考慮しなければならない。超音波測定の高品質および再現性を確保するためには、検査官の特定の訓練も必要である13,14,15,21,39。

テクニックの変更とトラブルシューティング
脱髄炎症性ニューロパチーにおける典型的な所見は、不均一な束を伴う多巣性神経腫脹である33,40。したがって、特定の神経部位のCSAの測定が必要ですが、神経全体をスキャンする必要があります。また、CIDPでは神経全体のCSA増加だけでなく、筋膜内腫脹、低エコー神経、高エコー神経も見られるため、筋膜構造とエコー源性の評価は決定的な症例に役立ちます。低エコー神経は急性浮腫に起因すると考えられ、高エコー神経は線維性リモデリングに起因すると考えられています40,41

テクニックの制限
神経超音波には解剖学的限界があり、すなわち、頸部神経根の検査は、肥満および短頸部の患者では困難または不可能であり得る。また、腰仙神経叢の下肢神経の近位神経根のイメージングは、超音波線の浸透深さが限られているため不可能です。これらの神経を評価する代替方法はMRN42によって可能であるが、超音波はその空間的および時間的柔軟性および費用効果の高い使用のためにより一般的な方法である43

既存手法との意義
神経超音波は、神経形態を評価するための多発性神経障害を診断する際の追加および補完的なツールとして推奨されます。神経伝導研究や脳脊髄液分析などの他のツールを含む標準的な診断トレーニングは、引き続き実行する必要があります。

この技術の将来の応用
多発性ニューロパチーの専門家にとって、神経超音波は臨床ルーチンでの診断に関心があり、考えられる病態生理学的側面、つまり炎症を表す洞察を与えることができるためです。したがって、神経超音波は臨床使用だけでなく神経筋研究においても有望な方法である。また、超音波技術の進歩に伴い、横波エラストグラフィや末梢神経の血管新生などの将来の超音波特性により、多発性神経障害の評価にさらに側面が追加される可能性があります。

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Disclosures

著者は、この原稿に関連する利益相反を宣言しません。

Acknowledgments

ルール大学ボーフムからの神経筋超音波の研究に対する支援に感謝します。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Affiniti 70 Philips GmbH n/a with preset for neuromuscular ultrasound
L18-5 linear array transducer Philips GmbH n/a
Ultrasound gel C + V Pharma Depot GmbH n/a

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References

  1. Lehmann, H. C., Wunderlich, G., Fink, G. R., Sommer, C. Diagnosis of peripheral neuropathy. Neurological Research and Practice. 2 (1), 20 (2020).
  2. Sommer, C., et al. Polyneuropathies- etiology, diagnosis, and treatment options. Deutsches Arzteblatt International. 115 (6), 83-90 (2018).
  3. Shahrizaila, N., Lehmann, H. C., Kuwabara, S. Guillain-Barré syndrome. The Lancet. 397 (10280), 1214-1228 (2021).
  4. Lehmann, H. C., Burke, D., Kuwabara, S. Chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy: update on diagnosis, immunopathogenesis and treatment. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 90 (9), 981-987 (2019).
  5. den Bergh, P. Y. K. V., et al. European Academy of Neurology/Peripheral Nerve Society guideline on diagnosis and treatment of chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy: Report of a joint Task Force - Second revision. Journal of the Peripheral Nervous System. , 1-27 (2021).
  6. Kramer, M., et al. Nerve ultrasound as helpful tool in polyneuropathies. Diagnostics. 11 (2), 211 (2021).
  7. Grimm, A., et al. A look inside the nerve - Morphology of nerve fascicles in healthy controls and patients with polyneuropathy. Clinical Neurophysiology. 128 (12), 2521-2526 (2017).
  8. Padua, L., et al. Heterogeneity of root and nerve ultrasound pattern in CIDP patients. Clinical Neurophysiology. 125 (1), 160-165 (2014).
  9. Winter, N., et al. Nerve ultrasonography as an additive tool to clinical examination and electrodiagnostics in sporadic mononeuritis - Imaging is the key. Ultraschall in der Medizin - European Journal of Ultrasound. 40 (4), 465-472 (2019).
  10. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Gold, R., Yoon, M. -S. Bochum ultrasound score allows distinction of chronic inflammatory from multifocal acquired demyelinating polyneuropathies. Journal of the Neurological Sciences. 348 (1-2), 211-215 (2015).
  11. Grimm, A., Rattay, T. W., Winter, N., Axer, H. Peripheral nerve ultrasound scoring systems: benchmarking and comparative analysis. Journal of Neurology. 264 (2), 1-11 (2016).
  12. Telleman, J. A., Grimm, A., Goedee, S., Visser, L. H., Zaidman, C. M. Nerve ultrasound in polyneuropathies. Muscle & Nerve. 57 (5), 716-728 (2017).
  13. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: a systematic review and meta-analysis-Part I: Upper extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (5), 1684-1691 (2021).
  14. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Krogias, C., Pitarokoili, K. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part II: Lower extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (7), 2313-2318 (2021).
  15. Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part III: Cervical nerve roots and vagal nerve. European Journal of Neurology. 28 (7), 2319-2326 (2021).
  16. Carroll, A. S., Simon, N. G. Current and future applications of ultrasound imaging in peripheral nerve disorders. World Journal of Radiology. 12 (6), 101-129 (2020).
  17. Entrekin, R. R., et al. Real-time spatial compound imaging: Application to breast, vascular, and musculoskeletal ultrasound. Seminars in Ultrasound, CT and MRI. 22 (1), 50-64 (2001).
  18. Walker, F. O., et al. Indications for neuromuscular ultrasound: Expert opinion and review of the literature. Clinical Neurophysiology. , 1-67 (2018).
  19. Dengler, R., et al. AANEM - IFCN glossary of terms in neuromuscular electrodiagnostic medicine and ultrasound. Muscle & Nerve. 62 (1), 10-12 (2020).
  20. Mah, J. K., van Alfen, N. Neuromuscular ultrasound: Clinical applications and diagnostic values. Canadian Journal of Neurological Sciences / Journal Canadien des Sciences Neurologiques. 45 (6), 605-619 (2018).
  21. Tawfik, E. A., et al. Guidelines for neuromuscular ultrasound training. Muscle & Nerve. 60 (4), 361-366 (2019).
  22. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Behrendt, V., Gold, R., Yoon, M. -S. Cross sectional area reference values for sonography of peripheral nerves and brachial plexus. Clinical Neurophysiology. 124 (9), 1881-1888 (2013).
  23. Grimm, A., Axer, H., Heiling, B., Winter, N. Nerve ultrasound normal values - Readjustment of the ultrasound pattern sum score UPSS. Clinical Neurophysiology. 129 (7), 1403-1409 (2013).
  24. Padua, L., et al. Intra- and internerve cross-sectional area variability: New ultrasound measures. Muscle & Nerve. 45 (5), 730-733 (2012).
  25. Kühn, E., et al. Correlates of polyneuropathy in Parkinson's disease. Annals of Clinical and Translational Neurology. 7 (10), 1898-1907 (2020).
  26. Pitarokoili, K., et al. Facing the diagnostic challenge: Nerve ultrasound in diabetic patients with neuropathic symptoms. Muscle & Nerve. 54 (1), 18-24 (2016).
  27. Pitarokoili, K., et al. High-resolution nerve ultrasound and electrophysiological findings in restless legs syndrome. Journal of Neuroimaging. 28 (5), 506-514 (2018).
  28. Fisse, A. L., et al. New approaches to critical illness polyneuromyopathy: High-resolution neuromuscular ultrasound characteristics and cytokine profiling. Neurocritical Care. 35 (1), 139-152 (2021).
  29. Grimm, A., Décard, B. F., Axer, H., Fuhr, P. The Ultrasound pattern sum score - UPSS. A new method to differentiate acute and subacute neuropathies using ultrasound of the peripheral nerves. Clinical Neurophysiology. 126 (11), 2216-2225 (2015).
  30. Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Haghikia, A., Gold, R., Yoon, M. -S. Nerve ultrasound protocol in differentiating chronic immune-mediated neuropathies. Muscle & Nerve. 54 (5), 864-871 (2016).
  31. Klauser, A. S., et al. Carpal tunnel syndrome assessment with US: Value of additional cross-sectional area measurements of the median nerve in patients versus healthy volunteers. Radiology. 250 (1), 171-177 (2009).
  32. Grimm, A., et al. Ultrasound pattern sum score, homogeneity score and regional nerve enlargement index for differentiation of demyelinating inflammatory and hereditary neuropathies. Clinical Neurophysiology. 127 (7), 2618-2624 (2016).
  33. Fisse, A. L., et al. Clinical, sonographic, and electrophysiologic longitudinal features of chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Journal of Neuroimaging. 29 (2), 223-232 (2018).
  34. Fionda, L., et al. Changes of clinical, neurophysiological and nerve ultrasound characteristics in CIDP over time: a 3-year follow-up. Journal of Neurology. 268 (8), 3011-3019 (2021).
  35. Härtig, F., et al. Nerve ultrasound predicts treatment response in chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy-a prospective follow-up. Neurotherapeutics. 15 (2), 439-451 (2018).
  36. Décard, B. F., Pham, M., Grimm, A. Ultrasound and MRI of nerves for monitoring disease activity and treatment effects in chronic dysimmune neuropathies - Current concepts and future directions. Clinical Neurophysiology. 129 (1), 155-167 (2018).
  37. Alshami, A. M., Cairns, C. W., Wylie, B. K., Souvlis, T., Coppieters, M. W. Reliability and size of the measurement error when determining the cross-sectional area of the tibial nerve at the tarsal tunnel with ultrasonography. Ultrasound in Medicine & Biology. 35 (7), 1098-1102 (2009).
  38. Impink, B. G., Gagnon, D., Collinger, J. L., Boninger, M. L. Repeatability of ultrasonographic median nerve measures. Muscle & Nerve. 41 (6), 767-773 (2010).
  39. Garcia-Santibanez, R., Dietz, A. R., Bucelli, R. C., Zaidman, C. M. Nerve ultrasound reliability of upper limbs: Effects of examiner training. Muscle & Nerve. 57 (2), 189-192 (2018).
  40. Gamber, D., et al. High-resolution nerve ultrasound to assess nerve echogenicity, fascicular count, and cross-sectional area using semiautomated analysis. Journal of Neuroimaging. 30 (4), 493-502 (2020).
  41. Fisse, A. L., et al. Nerve echogenicity and intranerve CSA variability in high-resolution nerve ultrasound (HRUS) in chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy (CIDP). Journal of Neurology. 266 (2), 468-475 (2019).
  42. van Rosmalen, M. H. J., et al. Quantitative assessment of brachial plexus MRI for the diagnosis of chronic inflammatory neuropathies. Journal of Neurology. 268 (3), 978-988 (2021).
  43. Pitarokoili, K., Schlamann, M., Kerasnoudis, A., Gold, R., Yoon, M. S. Comparison of clinical, electrophysiological, sonographic and MRI features in CIDP. Journal of the Neurological Sciences. 357 (1-2), 198-203 (2015).

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今月のJoVE、第176号、
免疫不全ニューロパチーを検出するための神経超音波プロトコル
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Fisse, A. L., Pitarokoili, K., Gold, R. Nerve Ultrasound Protocol to Detect Dysimmune Neuropathies. J. Vis. Exp. (176), e62900, doi:10.3791/62900 (2021).

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