Summary

Bruk av optogenetikk for å reversere nevroplastisitet og hemme kokainsøking hos rotter

Published: October 05, 2021
doi:

Summary

Metodene beskrevet her skisserer en prosedyre som brukes til å optogenetisk reversere kokainindusert plastisitet i en atferdsmessig relevant krets hos rotter. Vedvarende lavfrekvent optisk stimulering av thalamo-amygdala-synapser induserer langvarig depresjon (LTD). In vivo optogenetisk indusert LTD hos kokain-erfarne rotter resulterte i påfølgende demping av signalmotivert narkotikasøking.

Abstract

Denne protokollen viser trinnene som trengs for å bruke optogenetiske verktøy for å reversere kokainindusert plastisitet ved thalamo-amygdala-kretser for å redusere påfølgende kokainsøkende atferd hos rotter. I vår forskning hadde vi funnet ut at når rotter selvadministrerer intravenøs kokain parret med et audiovisuelt signal, blir synapser dannet ved innganger fra den mediale genikulate kjernen i thalamus (MGN) på hovedneuroner i lateral amygdala (LA) sterkere etter hvert som cue-kokainforeningen læres. Vi hadde en hypotese om at reversering av den kokaininduserte plastisiteten i disse synapsene ville redusere den kokainsøkende atferden. For å oppnå denne typen nevromodulering in vivo, ønsket vi å indusere synaptisk langvarig depresjon (LTD), noe som reduserer styrken til MGN-LA-synapser. Til dette formål brukte vi optogenetikk, som tillater nevromodulering av hjernekretser ved hjelp av lys. Den eksitatoriske opsin oChiEF ble uttrykt på presynaptiske MGN-terminaler i LA ved å infusere en AAV inneholdende oChiEF i MGN. Optiske fibre ble deretter implantert i LA og 473 nm laserlys ble pulsert med en frekvens på 1 Hz i 15 minutter for å indusere LTD og reversere kokainindusert plastisitet. Denne manipulasjonen fører til en langvarig reduksjon i evnen til signaler forbundet med kokain til å indusere narkotikasøkende handlinger.

Introduction

Stoffmisbruk er et svært alvorlig folkehelseproblem i USA og over hele verden. Til tross for flere tiår med intens forskning, er det svært få effektive terapeutiske alternativer 1,2. Et stort tilbakeslag for behandlingen er det faktum at kronisk narkotikabruk genererer langsiktige assosiative minner mellom miljømessige signaler og stoffet selv. Reeksponering for narkotikarelaterte signaler driver fysiologiske og atferdsmessige responser som motiverer fortsatt narkotikabruk og tilbakefall3. En ny terapeutisk strategi er å vedta minnebaserte behandlinger som tar sikte på å manipulere kretsene som er involvert i regulering av narkotika-cue-foreninger. Nylig ble det observert at synapser i lateral amygdala (LA), spesielt de som oppstår fra thalamus mediale geniculate nucleus (MGN), styrkes av gjentatt cue-assosiert kokain selvadministrasjon, og at denne potensieringen kan støtte kokainsøkende atferd 4,5. Derfor ble det foreslått at cue-indusert gjenoppretting kunne dempes ved å reversere plastisiteten ved MGN-LA-synapser.

Evnen til å presist målrette den synaptiske plastisiteten til en bestemt hjernekrets har vært en stor utfordring for feltet. Tradisjonelle farmakologiske verktøy har hatt en viss suksess i å redusere tilbakefallsatferd, men er begrenset av manglende evne til å manipulere individuelle synapser. Den nylige utviklingen av in vivo optogenetikk har imidlertid gitt verktøyene som trengs for å overvinne disse begrensningene og kontrollere nevrale veier med tidsmessig og romlig presisjon 6,7,8. Ved å uttrykke lysfølsomme opsiner i en bestemt hjernekrets, kan laserlys deretter brukes til å aktivere eller hemme kretsen. Frekvensavhengig optisk stimulering kan brukes til å spesifikt manipulere den synaptiske plastisiteten til kretsen i et dyr som oppfører seg.

Dette manuskriptet skisserer prosedyren som er tatt for å manipulere den atferdsmessig relevante MGN-LA-kretsen ved bruk av in vivo optogenetikk. Først ble eksitatorisk opsin oChIEF uttrykt i MGN og optiske fibre ble bilateralt implantert i LA. Dyr ble deretter trent til å selvadministrere kokain på en køavhengig måte, noe som forsterker MGN-LA-banen. Deretter ble vedvarende, lavfrekvent stimulering med 473 nm laserlys brukt til å produsere kretsspesifikk LTD. Reversering av plastisiteten indusert av kokainbruk genererte en langvarig reduksjon i signalenes evne til å utløse handlinger som er forbundet med narkotikasøkende atferd.

Protocol

Forsøkene beskrevet i denne protokollen var i samsvar med retningslinjene fastsatt av National Institutes of Health Guide for Care and Use of Laboratory Animals og ble godkjent av University of Pittsburghs institusjonelle dyrepleie- og brukskomité. Alle prosedyrer ble utført med voksne, naive Sprague-Dawley-rotter som veide 275-325 g ved ankomst. 1. Konstruksjon av optiske fiberimplantater og patchkabler Forbered optiske fiberimplantater etter tidligere p…

Representative Results

En tidslinje som beskriver rekkefølgen på eksperimenter er vist i figur 1. Gjennom atferdseksperimenter tjener antall kokaininfusjoner samt antall svar på den aktive spaken som et mål på intensiteten av kokainsøkende atferd. I løpet av de første dagene med selvadministrasjon av kokain bør antallet aktive responser øke gradvis for hver dag de anskaffelsesdagene, før antallet tiltak stabiliseres i løpet av den andre uken. Omvendt bør inaktive spakresponser forbli lave gjennom hele…

Discussion

Som beskrevet ovenfor er det flere kritiske trinn som er viktige for å oppnå de riktige eksperimentelle resultatene. Protokollen vil sannsynligvis bare være effektiv hos dyr som får selvadministrasjon av kokain på riktig måte, og til dags dato har den bare blitt testet ved hjelp av parametrene som er skissert ovenfor. Det er mulig at kokaindosen, tidsplanen for forsterkning og signalparametrene kan modifiseres med sannsynligvis liten effekt på atferdsresultatene, med unntak av at en annenordens forsterkningsplan k…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å anerkjenne støtte fra USPHS tilskudd K01DA031745 (MMT), R01DA042029 (MMT), DA035805 (YHH), F31DA039646 (MTR), T32031111 (MTR), og Pennsylvania Department of Health.

Materials

0.9% Saline Fisher Scientific NC0291799
A.M.P.I. Stimulus Isolator Iso-Flex
AAV5.hSyn.oChIEF.tdTomato Duke Viral Vector Core (via Roger Tsien) #268 See Lin et al., 2009; Nabavi et al., 2014
AAV5.hSyn.tdTomato (Control) Duke Viral Vector Core Control See Lin et al., 2009; Nabavi et al., 2014
Artificial Tears (Opthalmic Ointment) Covetrus 70349
ATP Magnesium Salt Fisher Scientific A9187
Betadine Butler Schein 38250
Calcium chloride Fisher Scientific C1016
Cesium chloride Fisher Scientific 289329
Cesium hydroxide Fisher Scientific 516988
Cesium methanesulfonate Fisher Scientific C1426
Cocaine HCl NIDA Drug Supply Center 9041-001
Cryostat Leica CM1950
D-Glucose Sigma-Aldrich G8270
DMSO Fisher Scientific BP231-1
Dual-Channel Temperature Controller Warner Instruments TC-344C
EGTA Fisher Scientific E3889
Ethanol University of Pittsburgh Chemistry Stockroom 200C5000
Ferrule Dust Caps Thor Labs CAPL White plastic dust caps for 1.25 mm Ferrules
Ferrule Mating Sleeves Doric Lenses F210-3011 Sleeve_BR_1.25, Bronze, 1.25 mm ID
Ferrules Precision Fiber Products MM-FER2007C-2300 Ø1.25 mm Multimode LC/PC Ceramic ferrule, Ø230 μm hole size
Fiber Optic Thor Labs FP200URT 200 μm core multimode fiber (0.5 NA)
Fiber Optic Rotary Joint Prizmatix (Ordered from Amazon) 18 mm diameter, FC-FC connector for fiber
Fiber Stripping Tool Thor Labs T12S21
Fluoroshield with DAPI Sigma-Aldrich F6057
Gentamicin Henry Schein 6913
GTP Sodium Salt Fisher Scientific G8877
Hamilton syringe Hamilton 80085 10 μL volume, 26 gauge, 2 inch, point style 3
Heat Gun Allied Electronics 972-6966 250 V, 750-800 °F
Heat-Curable Epoxy Precision Fiber Products PFP-353ND-8OZ
Heparin Henry Schein 55737
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Hydrochloric Acid Fisher Scientific 219405490
Isoflurane Henry Schein 29405
Ketamine HCl Henry Schein 55853 Ketamine is a controlled substance and should be handled according to institutional guidelines
Lactated Ringer’s Henry Schein 9846
Laser, driver, and laser-to-fiber coupler OEM Laser Systems BL-473-00100-CWM-SD-xx-LED-0 100 mW, 473-nm, diode-pumped solid-state laser (One option)
L-glutathione Fisher Scientific G4251
Lidocaine Butler Schein 14583
Light Sensor Thor Labs PM100D Compact energy meter console with digital display
Loctite instant adhesive Grainger 5E207
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich 203726
Microelectrode Amplifier/Data Acquisition Molecular Devices MULTICLAMP700B / Digidata 1440A
Microinjector pump Harvard Apparatus 70-4501 Dual syringe
Micromanipulator Sutter Instruments MPC-200/ROE-200
Microscope Olympus BX51WI Upright microscope for electrophysiology
Microscope Olympus BX61VS Epifluorescent slide-scanning microscope
N-methyl-D-glucamine Sigma-Aldrich M2004
Orthojet dental cement, liquid Lang Dental 1504BLK black
Orthojet dental cement, powder Lang Dental 1530BLK Contemporary powder, black
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Patch Cables Thor Labs FP200ERT Multimode, FT030 Tubing
Picrotoxin Fisher Scientific AC131210010
Polishing Disc Thor Labs D50FC
Polishing Pad Thor Labs NRS913 9" x 13"
Polishing Paper Thor Labs LFG5P 5 μm grit
Polishing Paper Thor Labs LFG3P 3 μm grit
Polishing Paper Thor Labs LFG1P 1 μm grit
Polishing Paper Thor Labs LFG03P 0.3 μm grit
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9333
Potassium hydroxide Fisher Scientific P5958
Potassium methanesulfonate Fisher Scientific 83000
QX-314-Cl Alomone Labs Q-150
Rimadyl (Carprofen) Henry Schein 24751
Self-Administration Chambers/Software Med Associates MED-NP5L-D1
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich 1064980500
Sodium L-Ascorbate Sigma-Aldrich A7631
Sodium Pentobarbital Henry Schein 24352
Sodium phosphate Sigma-Aldrich S9638
Sodium phosphocreatine Fisher Scientific P7936
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P2256
Stainless steel machine screws WW Grainger  6GB25 M2-0.40mm Machine Screw, Pan, Phillips, A2 Stainless Steel, Plain, 3 mm Length
Stereotaxic adapter for ferrules Thor Labs XCL
Stereotaxic Frame Stoelting 51603
Sucrose Sigma-Aldrich S8501
Suture Thread Fine Science Tools 18020-50 Silk thread; Size: 5/0, Diameter: 0.12 mm
TEA-Chloride Fisher Scientific T2265
Thiourea Sigma-Aldrich T8656
Vetbond Tissue Adhesive Covetrus 001505
Vibratome Leica VT1200S
Xylazine Butler Schein 33198

References

  1. Connors, N. J., Hoffman, R. S. Experimental treatments for cocaine toxicity: A difficult transition to the bedside. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 347 (2), 251-257 (2013).
  2. Makani, R., Pradhan, B., Shah, U., Parikh, T. Role of repetitive transcranial magnetic stimulation (rTMS) in treatment of addiction and related disorders: A systematic review. Current Drug Abuse Reviews. 10 (1), 31-43 (2017).
  3. Shaham, Y., Shalev, U., Lu, L., De Wit, H., Stewart, J. The reinstatement model of drug relapse: History, methodology and major findings. Psychopharmacology. 168 (1-2), 3-20 (2003).
  4. Rich, M. T., Huang, Y. H., Torregrossa, M. M. Plasticity at Thalamo-amygdala Synapses Regulates Cocaine-Cue Memory Formation and Extinction. Cell Reports. 26 (4), 1010-1020 (2019).
  5. Rich, M. T., Huang, Y. H., Torregrossa, M. M. Calcineurin promotes neuroplastic changes in the amygdala associated with weakened cocaine-cue memories. Journal of Neuroscience. 40 (6), 1344-1354 (2020).
  6. Deisseroth, K. Optogenetics 10 years of microbial opsins in neuroscience. Nature Neuroscience. 18 (9), 1213-1225 (2015).
  7. Gradinaru, V., et al. Molecular and cellular approaches for diversifying and extending optogenetics. Cell. 141 (1), 154-165 (2010).
  8. Nabavi, S., Fox, R., Proulx, C. D., Lin, J. Y., Tsien, R. Y., Malinow, R. Engineering a memory with LTD and LTP. Nature. 511 (7509), 348-352 (2014).
  9. Sparta, D. R., Stamatakis, A. M., Phillips, J. L., Hovelsø, N., Van Zessen, R., Stuber, G. D. Construction of implantable optical fibers for long-term optogenetic manipulation of neural circuits. Nature Protocols. 7 (1), 12-23 (2012).
  10. Stripling, J. S. A simple intravenous catheter for use with a cranial pedestal in the rat. Pharmacology, Biochemistry and Behavior. 15 (5), 823-825 (1981).
  11. Lin, J. Y., Lin, M. Z., Steinbach, P., Tsien, R. Y. Characterization of engineered channelrhodopsin variants with improved properties and kinetics. Biophysical Journal. 96 (5), 1803-1814 (2009).
  12. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates Hard Cover Edition. , 466 (2013).
  13. Ting, J. T., Daigle, T. L., Chen, Q., Feng, G. Acute brain slice methods for adult and aging animals: Application of targeted patch clamp analysis and optogenetics. Methods in Molecular Biology. 1183, 221-242 (2014).
  14. Bender, B. N., Torregrossa, M. M. Dorsolateral striatum dopamine-dependent cocaine seeking is resistant to pavlovian cue extinction in male and female rats. Neuropharmacology. 182, (2021).
  15. Milton, A. L., Everitt, B. J. The persistence of maladaptive memory: Addiction, drug memories and anti-relapse treatments. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 36 (4), 1119-1139 (2012).
  16. Torregrossa, M. M., Taylor, J. R. Learning to forget: Manipulating extinction and reconsolidation processes to treat addiction. Psychopharmacology. 226 (4), 659-672 (2013).
  17. Kalivas, P. W., Volkow, N. D. The Neural Basis of Addiciton: A Pathology of Motivation and Choice. American Journal of Psychiatry. 162 (8), 1403-1413 (2005).
  18. Stefanik, M. T., et al. Optogenetic inhibition of cocaine seeking in rats. Addiction Biology. 18 (1), 50-53 (2013).
  19. Arguello, A. A., et al. Role of a Lateral Orbital Frontal Cortex-Basolateral Amygdala Circuit in Cue-Induced Cocaine-Seeking Behavior. Neuropsychopharmacology. 42 (3), 727-735 (2017).
  20. Cruz, A. M., Spencer, H. F., Kim, T. H., Jhou, T. C., Smith, R. J. Prelimbic cortical projections to rostromedial tegmental nucleus play a suppressive role in cue-induced reinstatement of cocaine seeking. Neuropsychopharmacology. 46 (8), 1399-1406 (2021).
  21. Cruz, F. C., Javier Rubio, F., Hope, B. T. Using c-fos to study neuronal ensembles in corticostriatal circuitry of addiction. Brain Research. 1628, 157-173 (2015).
  22. Rubio, F. J., et al. Context-Induced Reinstatement of Methamphetamine Seeking Is Associated with Unique Molecular Alterations in Fos-Expressing Dorsolateral Striatum Neurons. Journal of Neuroscience. 35 (14), 5625-5639 (2015).
  23. Siuda, E. R., et al. Spatiotemporal Control of Opioid Signaling and Behavior. Neuron. 86 (4), 923-935 (2015).
  24. McCracken, C. B., Grace, A. A. High-frequency deep brain stimulation of the nucleus accumbens region suppresses neuronal activity and selectively modulates afferent drive in rat orbitofrontal cortex in vivo. Journal of Neuroscience. 27 (46), 12601-12610 (2007).
  25. Zhang, H., Bramham, C. R. Bidirectional Dysregulation of AMPA Receptor-Mediated Synaptic Transmission and Plasticity in Brain Disorders. Frontiers in Synaptic Neuroscience. 12 (26), (2020).
check_url/63185?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rich, M. T., Huang, Y. H., Torregrossa, M. M. Using Optogenetics to Reverse Neuroplasticity and Inhibit Cocaine Seeking in Rats. J. Vis. Exp. (176), e63185, doi:10.3791/63185 (2021).

View Video