Summary

Использование оптогенетики для обращения вспять нейропластичности и ингибирования поиска кокаина у крыс

Published: October 05, 2021
doi:

Summary

Методы, описанные здесь, описывают процедуру, используемую для оптогенетического обращения вспять пластичности, вызванной кокаином, в поведенчески значимой цепи у крыс. Устойчивая низкочастотная оптическая стимуляция таламо-миндалиновых синапсов вызывает длительную депрессию (ЛТД). In vivo оптогенетически индуцированная ЛТД у крыс, испытывающих кокаин, приводила к последующему ослаблению поиска наркотиков, мотивированных сигналами.

Abstract

Этот протокол демонстрирует шаги, необходимые для использования оптогенетических инструментов для обращения вспять пластичности, вызванной кокаином, в таламо-миндалиновых цепях, чтобы уменьшить последующее поведение крысы в поисках кокаина. В нашем исследовании мы обнаружили, что, когда крысы самостоятельно вводят внутривенный кокаин в сочетании с аудиовизуальным сигналом, синапсы, образующиеся на входах из медиального геникулярного ядра таламуса (MGN) на основные нейроны боковой миндалины (LA), становятся сильнее по мере изучения ассоциации сигнал-кокаин. Мы предположили, что изменение пластичности, вызванной кокаином, в этих синапсах уменьшит поведение, мотивированное кокаином. Чтобы выполнить этот тип нейромодуляции in vivo, мы хотели вызвать синаптическую долгосрочную депрессию (LTD), которая снижает силу синапсов MGN-LA. С этой целью мы использовали оптогенетику, которая позволяет нейромодуляцию мозговых цепей с помощью света. Возбуждающий опсин oChiEF экспрессировался на пресинаптических терминалях MGN в LA путем введения AAV, содержащего oChiEF, в MGN. Затем оптические волокна были имплантированы в ЛОС-Анджелес, и лазерный свет 473 нм был импульсным с частотой 1 Гц в течение 15 минут, чтобы индуцировать LTD и обратную пластичность, вызванную кокаином. Эта манипуляция приводит к длительному снижению способности сигналов, связанных с кокаином, побуждать к действиям по поиску наркотиков.

Introduction

Злоупотребление психоактивными веществами является очень серьезной проблемой общественного здравоохранения в США и во всем мире. Несмотря на десятилетия интенсивных исследований, существует очень мало эффективных терапевтических вариантов 1,2. Основным препятствием для лечения является тот факт, что хроническое употребление наркотиков порождает долгосрочные ассоциативные воспоминания между сигналами окружающей среды и самим препаратом. Повторное воздействие сигналов, связанных с наркотиками, приводит к физиологическим и поведенческим реакциям, которые мотивируют продолжение употребления наркотиков и рецидив3. Новая терапевтическая стратегия заключается в принятии методов лечения, основанных на памяти, которые направлены на манипулирование схемами, участвующими в регулировании ассоциаций между наркотиками и сигналами. Недавно было замечено, что синапсы в боковой миндалине (LA), особенно те, которые возникают из медиального геникулярного ядра (MGN) таламуса, усиливаются повторным самоприменением кокаина, связанным с сигналом, и что это потенцирование может поддерживать поведение, ищущее кокаин 4,5. Поэтому было высказано предположение о том, что вызванное сигналом восстановление может быть ослаблено путем обращения вспять пластичности в синапсах MGN-LA.

Способность точно нацеливаться на синаптическую пластичность конкретной мозговой цепи была серьезной проблемой для этой области. Традиционные фармакологические инструменты имели некоторый успех в снижении рецидивирующего поведения, но ограничены неспособностью манипулировать отдельными синапсами. Тем не менее, недавнее развитие оптогенетики in vivo предоставило инструменты, необходимые для преодоления этих ограничений и управления нейронными путями с временной и пространственной точностью 6,7,8. Экспрессируя светочувствительные опсины в определенной мозговой цепи, лазерный свет затем может быть использован для активации или ингибирования цепи. Частотно-зависимая оптическая стимуляция может быть использована для специального манипулирования синаптической пластичностью цепи у ведущего себя животного.

В этой рукописи описывается процедура, предпринятая для манипулирования поведенчески значимой схемой MGN-LA с использованием оптогенетики in vivo . Во-первых, возбуждающий опсин oChIEF экспрессировался в MGN, а оптические волокна были двусторонне имплантированы в LA. Затем животных обучали самостоятельному введению кокаина в зависимости от сигнала, что потенцирует путь MGN-LA. Затем устойчивая низкочастотная стимуляция лазерным светом 473 нм была использована для получения специфической схемы LTD. Обращение вспять пластичности, вызванной употреблением кокаина, привело к длительному снижению способности сигналов вызывать действия, связанные с поведением в поисках наркотиков.

Protocol

Эксперименты, описанные в этом протоколе, соответствовали руководящим принципам, изложенным в Руководстве Национальных институтов здравоохранения по уходу и использованию лабораторных животных , и были одобрены Комитетом по институциональному уходу и использованию животных Ун…

Representative Results

Временная шкала, описывающая порядок экспериментов, показана на рисунке 1. Во время поведенческих экспериментов количество вливаний кокаина, а также количество реакций, сделанных на активном рычаге, служит мерой интенсивности поведения в поисках кокаина. В течение пер?…

Discussion

Как описано выше, существует несколько критических шагов, которые важны для достижения надлежащих экспериментальных результатов. Протокол, вероятно, будет эффективен только у животных, которые должным образом приобретают самостоятельное введение кокаина, и на сегодняшний день он был…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы отметить поддержку со стороны грантов USPHS K01DA031745 (MMT), R01DA042029 (MMT), DA035805 (YHH), F31DA039646 (MTR), T32031111 (MTR) и Департамента здравоохранения Пенсильвании.

Materials

0.9% Saline Fisher Scientific NC0291799
A.M.P.I. Stimulus Isolator Iso-Flex
AAV5.hSyn.oChIEF.tdTomato Duke Viral Vector Core (via Roger Tsien) #268 See Lin et al., 2009; Nabavi et al., 2014
AAV5.hSyn.tdTomato (Control) Duke Viral Vector Core Control See Lin et al., 2009; Nabavi et al., 2014
Artificial Tears (Opthalmic Ointment) Covetrus 70349
ATP Magnesium Salt Fisher Scientific A9187
Betadine Butler Schein 38250
Calcium chloride Fisher Scientific C1016
Cesium chloride Fisher Scientific 289329
Cesium hydroxide Fisher Scientific 516988
Cesium methanesulfonate Fisher Scientific C1426
Cocaine HCl NIDA Drug Supply Center 9041-001
Cryostat Leica CM1950
D-Glucose Sigma-Aldrich G8270
DMSO Fisher Scientific BP231-1
Dual-Channel Temperature Controller Warner Instruments TC-344C
EGTA Fisher Scientific E3889
Ethanol University of Pittsburgh Chemistry Stockroom 200C5000
Ferrule Dust Caps Thor Labs CAPL White plastic dust caps for 1.25 mm Ferrules
Ferrule Mating Sleeves Doric Lenses F210-3011 Sleeve_BR_1.25, Bronze, 1.25 mm ID
Ferrules Precision Fiber Products MM-FER2007C-2300 Ø1.25 mm Multimode LC/PC Ceramic ferrule, Ø230 μm hole size
Fiber Optic Thor Labs FP200URT 200 μm core multimode fiber (0.5 NA)
Fiber Optic Rotary Joint Prizmatix (Ordered from Amazon) 18 mm diameter, FC-FC connector for fiber
Fiber Stripping Tool Thor Labs T12S21
Fluoroshield with DAPI Sigma-Aldrich F6057
Gentamicin Henry Schein 6913
GTP Sodium Salt Fisher Scientific G8877
Hamilton syringe Hamilton 80085 10 μL volume, 26 gauge, 2 inch, point style 3
Heat Gun Allied Electronics 972-6966 250 V, 750-800 °F
Heat-Curable Epoxy Precision Fiber Products PFP-353ND-8OZ
Heparin Henry Schein 55737
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Hydrochloric Acid Fisher Scientific 219405490
Isoflurane Henry Schein 29405
Ketamine HCl Henry Schein 55853 Ketamine is a controlled substance and should be handled according to institutional guidelines
Lactated Ringer’s Henry Schein 9846
Laser, driver, and laser-to-fiber coupler OEM Laser Systems BL-473-00100-CWM-SD-xx-LED-0 100 mW, 473-nm, diode-pumped solid-state laser (One option)
L-glutathione Fisher Scientific G4251
Lidocaine Butler Schein 14583
Light Sensor Thor Labs PM100D Compact energy meter console with digital display
Loctite instant adhesive Grainger 5E207
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich 203726
Microelectrode Amplifier/Data Acquisition Molecular Devices MULTICLAMP700B / Digidata 1440A
Microinjector pump Harvard Apparatus 70-4501 Dual syringe
Micromanipulator Sutter Instruments MPC-200/ROE-200
Microscope Olympus BX51WI Upright microscope for electrophysiology
Microscope Olympus BX61VS Epifluorescent slide-scanning microscope
N-methyl-D-glucamine Sigma-Aldrich M2004
Orthojet dental cement, liquid Lang Dental 1504BLK black
Orthojet dental cement, powder Lang Dental 1530BLK Contemporary powder, black
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Patch Cables Thor Labs FP200ERT Multimode, FT030 Tubing
Picrotoxin Fisher Scientific AC131210010
Polishing Disc Thor Labs D50FC
Polishing Pad Thor Labs NRS913 9" x 13"
Polishing Paper Thor Labs LFG5P 5 μm grit
Polishing Paper Thor Labs LFG3P 3 μm grit
Polishing Paper Thor Labs LFG1P 1 μm grit
Polishing Paper Thor Labs LFG03P 0.3 μm grit
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9333
Potassium hydroxide Fisher Scientific P5958
Potassium methanesulfonate Fisher Scientific 83000
QX-314-Cl Alomone Labs Q-150
Rimadyl (Carprofen) Henry Schein 24751
Self-Administration Chambers/Software Med Associates MED-NP5L-D1
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich 1064980500
Sodium L-Ascorbate Sigma-Aldrich A7631
Sodium Pentobarbital Henry Schein 24352
Sodium phosphate Sigma-Aldrich S9638
Sodium phosphocreatine Fisher Scientific P7936
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P2256
Stainless steel machine screws WW Grainger  6GB25 M2-0.40mm Machine Screw, Pan, Phillips, A2 Stainless Steel, Plain, 3 mm Length
Stereotaxic adapter for ferrules Thor Labs XCL
Stereotaxic Frame Stoelting 51603
Sucrose Sigma-Aldrich S8501
Suture Thread Fine Science Tools 18020-50 Silk thread; Size: 5/0, Diameter: 0.12 mm
TEA-Chloride Fisher Scientific T2265
Thiourea Sigma-Aldrich T8656
Vetbond Tissue Adhesive Covetrus 001505
Vibratome Leica VT1200S
Xylazine Butler Schein 33198

References

  1. Connors, N. J., Hoffman, R. S. Experimental treatments for cocaine toxicity: A difficult transition to the bedside. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 347 (2), 251-257 (2013).
  2. Makani, R., Pradhan, B., Shah, U., Parikh, T. Role of repetitive transcranial magnetic stimulation (rTMS) in treatment of addiction and related disorders: A systematic review. Current Drug Abuse Reviews. 10 (1), 31-43 (2017).
  3. Shaham, Y., Shalev, U., Lu, L., De Wit, H., Stewart, J. The reinstatement model of drug relapse: History, methodology and major findings. Psychopharmacology. 168 (1-2), 3-20 (2003).
  4. Rich, M. T., Huang, Y. H., Torregrossa, M. M. Plasticity at Thalamo-amygdala Synapses Regulates Cocaine-Cue Memory Formation and Extinction. Cell Reports. 26 (4), 1010-1020 (2019).
  5. Rich, M. T., Huang, Y. H., Torregrossa, M. M. Calcineurin promotes neuroplastic changes in the amygdala associated with weakened cocaine-cue memories. Journal of Neuroscience. 40 (6), 1344-1354 (2020).
  6. Deisseroth, K. Optogenetics 10 years of microbial opsins in neuroscience. Nature Neuroscience. 18 (9), 1213-1225 (2015).
  7. Gradinaru, V., et al. Molecular and cellular approaches for diversifying and extending optogenetics. Cell. 141 (1), 154-165 (2010).
  8. Nabavi, S., Fox, R., Proulx, C. D., Lin, J. Y., Tsien, R. Y., Malinow, R. Engineering a memory with LTD and LTP. Nature. 511 (7509), 348-352 (2014).
  9. Sparta, D. R., Stamatakis, A. M., Phillips, J. L., Hovelsø, N., Van Zessen, R., Stuber, G. D. Construction of implantable optical fibers for long-term optogenetic manipulation of neural circuits. Nature Protocols. 7 (1), 12-23 (2012).
  10. Stripling, J. S. A simple intravenous catheter for use with a cranial pedestal in the rat. Pharmacology, Biochemistry and Behavior. 15 (5), 823-825 (1981).
  11. Lin, J. Y., Lin, M. Z., Steinbach, P., Tsien, R. Y. Characterization of engineered channelrhodopsin variants with improved properties and kinetics. Biophysical Journal. 96 (5), 1803-1814 (2009).
  12. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates Hard Cover Edition. , 466 (2013).
  13. Ting, J. T., Daigle, T. L., Chen, Q., Feng, G. Acute brain slice methods for adult and aging animals: Application of targeted patch clamp analysis and optogenetics. Methods in Molecular Biology. 1183, 221-242 (2014).
  14. Bender, B. N., Torregrossa, M. M. Dorsolateral striatum dopamine-dependent cocaine seeking is resistant to pavlovian cue extinction in male and female rats. Neuropharmacology. 182, (2021).
  15. Milton, A. L., Everitt, B. J. The persistence of maladaptive memory: Addiction, drug memories and anti-relapse treatments. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 36 (4), 1119-1139 (2012).
  16. Torregrossa, M. M., Taylor, J. R. Learning to forget: Manipulating extinction and reconsolidation processes to treat addiction. Psychopharmacology. 226 (4), 659-672 (2013).
  17. Kalivas, P. W., Volkow, N. D. The Neural Basis of Addiciton: A Pathology of Motivation and Choice. American Journal of Psychiatry. 162 (8), 1403-1413 (2005).
  18. Stefanik, M. T., et al. Optogenetic inhibition of cocaine seeking in rats. Addiction Biology. 18 (1), 50-53 (2013).
  19. Arguello, A. A., et al. Role of a Lateral Orbital Frontal Cortex-Basolateral Amygdala Circuit in Cue-Induced Cocaine-Seeking Behavior. Neuropsychopharmacology. 42 (3), 727-735 (2017).
  20. Cruz, A. M., Spencer, H. F., Kim, T. H., Jhou, T. C., Smith, R. J. Prelimbic cortical projections to rostromedial tegmental nucleus play a suppressive role in cue-induced reinstatement of cocaine seeking. Neuropsychopharmacology. 46 (8), 1399-1406 (2021).
  21. Cruz, F. C., Javier Rubio, F., Hope, B. T. Using c-fos to study neuronal ensembles in corticostriatal circuitry of addiction. Brain Research. 1628, 157-173 (2015).
  22. Rubio, F. J., et al. Context-Induced Reinstatement of Methamphetamine Seeking Is Associated with Unique Molecular Alterations in Fos-Expressing Dorsolateral Striatum Neurons. Journal of Neuroscience. 35 (14), 5625-5639 (2015).
  23. Siuda, E. R., et al. Spatiotemporal Control of Opioid Signaling and Behavior. Neuron. 86 (4), 923-935 (2015).
  24. McCracken, C. B., Grace, A. A. High-frequency deep brain stimulation of the nucleus accumbens region suppresses neuronal activity and selectively modulates afferent drive in rat orbitofrontal cortex in vivo. Journal of Neuroscience. 27 (46), 12601-12610 (2007).
  25. Zhang, H., Bramham, C. R. Bidirectional Dysregulation of AMPA Receptor-Mediated Synaptic Transmission and Plasticity in Brain Disorders. Frontiers in Synaptic Neuroscience. 12 (26), (2020).
check_url/63185?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Rich, M. T., Huang, Y. H., Torregrossa, M. M. Using Optogenetics to Reverse Neuroplasticity and Inhibit Cocaine Seeking in Rats. J. Vis. Exp. (176), e63185, doi:10.3791/63185 (2021).

View Video