Cet article décrit la modélisation de l’ischémie-reperfusion (I / R) dans un embryon de poussin de 3 jours à l’aide d’un crochet personnalisé à l’aiguille de la colonne vertébrale pour mieux comprendre le développement et le traitement de l’I / R. Ce modèle est simple, rapide et peu coûteux.
L’ischémie et les troubles de la reperfusion (I / R), tels que l’infarctus du myocarde, les accidents vasculaires cérébraux et les maladies vasculaires périphériques, sont quelques-unes des principales causes de maladie et de décès. De nombreux modèles in vitro et in vivo sont actuellement disponibles pour étudier le mécanisme I/R dans la maladie ou les tissus endommagés. Cependant, à ce jour, aucun modèle in ovo I/R n’a été rapporté, ce qui permettrait de mieux comprendre les mécanismes I/R et d’accélérer le dépistage des drogues. Cet article décrit la modélisation I/R à l’aide d’un crochet personnalisé à l’aiguille de la colonne vertébrale dans un embryon de poussin de 3 jours pour comprendre les mécanismes de développement et de traitement de l’I/R. Notre modèle peut être utilisé pour étudier les anomalies au niveau de l’ADN, de l’ARN et des protéines. Cette méthode est simple, rapide et peu coûteuse. Le modèle actuel peut être utilisé indépendamment ou en conjonction avec des modèles I/R in vitro et in vivo existants.
Les lésions tissulaires d’ischémie-reperfusion ont été liées à un certain nombre de pathologies, notamment les crises cardiaques, les accidents vasculaires cérébraux ischémiques, les traumatismes et les maladies vasculaires périphériques1,2,3,4,5. Cela est principalement dû à l’absence d’une compréhension globale de la progression de la maladie et à l’absence d’un modèle de recherche efficace. Une lésion ischémique se produit lorsque l’apport sanguin à une zone spécifique du tissu est coupé. En conséquence, le tissu ischémique finit par se nécroser, bien que le taux varie en fonction du tissu. Par conséquent, la restauration de l’approvisionnement en sang peut aider à atténuer les dommages. Cependant, il a été observé, dans certains cas, que la reperfusion provoque plus de dommages tissulaires que l’ischémie seule6,7,8. Par conséquent, la compréhension des mécanismes moléculaires et cellulaires de l’ischémie-reperfusion est nécessaire pour développer une intervention thérapeutique efficace. À l’heure actuelle, aucun traitement efficace pour les lésions I/R n’est connu. Cette disparité a incité à la création de nouveaux modèles expérimentaux, allant des modèles in vitro aux modèles in vivo, pour résoudre le problème existant9,10,11,12,13.
Les embryons de poussins (Gallus gallus domesticus) sont largement utilisés dans la recherche en raison de leur facilité d’accès, de leur acceptabilité éthique, de leur taille relativement grande (par rapport à d’autres embryons), de leur faible coût et de leur croissance rapide14. Nous avons utilisé un embryon de poussin à 72 h de développement pour créer un in ovo I/R en obstruant et en libérant l’artère droite de vitelline à l’aide d’une aiguille spinale. Nous l’avons nommé le modèle Hook-I/R ischemia-reperfusion (Figure 1). Le modèle utilisé dans cette étude est capable de simuler avec précision tous les processus en aval, y compris les voies oxydatives et inflammatoires, qui sont fréquemment associées à des dommages I/R15,16,17.
L’objectif de la recherche sur l’ischémie-reperfusion est de créer des stratégies thérapeutiques qui préviennent la mort cellulaire et favorisent la récupération29,30. Pour surmonter les contraintes actuelles dans la recherche I/R, nous avons conçu un modèle d’embryon de poussin Hook I/R pour produire un modèle I/R fiable et reproductible. À notre connaissance, le nôtre est le premier modèle I/R jamais créé dans un embryon de poussin de 3 jou…
The authors have nothing to disclose.
Nous tenons à exprimer notre gratitude à Hari Shankar pour ses contributions critiques lors de la vidéographie et du montage, à M. Baqer Hussain pour la voix off, à M. Asghar Rizvi pour le montage vidéo, à M. Mohammad Haider pour les tournages vidéo, à M. Mohammad Danish Siddiqui pour l’assistance pendant les expériences.
(-80°C) freezer | Haier, China | – | |
1.5mL Centrifuge tube | TARSONS, India | 500010X | |
100mm Petri dish (sterile) | Tarsons, India | 460050 | |
18G Needle (18G×1.5 (1.25×38mm) | Ramsons, India | 13990 | |
1mL Syringe | DISPO VAN | – | |
26G Needle (26G×1/2 (10.45x13mm) | DISPO VAN, india | 30722D | |
37°C egg incubator with adjustable percentage humidity | Gentek, India | GL-100 | |
37°C laboratory incubator | SCIENCE TECH, India | CB 101-14 | |
3-Methyladenine (3-MA) | Sigma Aldrich, USA | M9281 | |
3mL Pasture Pipette | TARSONS, India | 940050 | |
50mL Beaker | TARSONS, India | – | |
5mL Syringe | DISPO VAN, India | IP53 | |
70% ethanol | Merck Millipore, United States | 64-17-5 | |
Adhesive tape/Cello tape | Sunrise, India | – | |
Ambra1 primers | Applied Biosystems, Foster city, USA | Hs00387943_m1 | |
Anti-mouse IgG | Cell Signaling Technology, USA | 7076S | |
Anti-Rabbit IgG | Jackson Immuno Research Laboratories, USA | 711-035-152 | |
Atg7 | R&D Systems, USA | MAB6608 | |
Atg7 primers | Applied Biosystems, Foster city, USA | Hs00893766_m1 | |
Autoclave Bag | Tarsons, India | 550022 | |
Autoclave Machine | Local made, Lucknow, India | – | |
Beclin-1 | Proteintech, USA | 66665-1-Ig | |
Beta Actin | ImmunoTag, USA | ITT07018 | |
Bovine Serum Albumin | Himedia, Mumbai, India | TC194 | |
Calcium Chloride | Himedia, Mumbai, India | GRM534 | |
Catalase | ImmunoTag, USA | ITT5155 | |
Cleaning wipes | Kimberly-Clark, India | 370080 | |
Cleaved Caspase3 | ImmunoTag, USA | ITT07022 | |
di-Sodium hydrogen phosphate heptahydrate | Himedia, Mumbai, India | GRM39611 | |
Doppler blood flowmeter | Moors instrument, United Kingdom | moorVMS-LDF1 | |
Egg rack | – | – | |
Egg rack | – | – | |
GAPDH | ImmunoTag, USA | M1000110 | |
GAPDH primers | Applied Biosystems, Foster city, USA | Hs02758991_g1 | |
Glycine | Himedia, Mumbai, India | MB013 | |
Kidney tray | HOSPITO | – | |
LC3A/B | Cell Signaling Technology, USA | 4108S | |
Methanol | Rankem laboratories, Mumbai, India | M0252 | |
Micromanipulator | Narishige, Japan | M-152 | |
N-acetyl-L-cysteine (NAC) | Sigma Aldrich, USA | A7250 | |
Naringenin | Sigma Aldrich, USA | 67604-48-2 | |
NF-kβ | Thermo Fisher Scientific, USA | 51-0500 | |
NLRP3 | ImmunoTag, USA | ITT07438 | |
Nose plier | Local made, Lucknow, India | – | |
Ocular forceps | Stoelting, Germany | 52106-40 | |
Ocular iris | Tufft Surgical Instruments, Jaipur, India | Hard Age Vannas Micro Scissors Angled 8CM / 3 1/8" | |
OHP marker pen | Camlin, India | – | |
ORP-150 | ImmunoTag, USA | ITT08329 | |
Pointed sharp edge scissor | Stoelting, Germany | 52132-11 | |
Potassium Chloride | Himedia, Mumbai, India | MB043 | |
Potassium phosphate monobasic anhydrous | Himedia, Mumbai, India | MB050 | |
Protease Inhibitor | Abcam, United States | Ab65621 | |
SOD-1 | ImmunoTag, USA | ITT4364 | |
Sodium Chloride | Fisher Scientific, Mumbai, India | 27605 | |
Sodium dodecyl sulphate | Himedia, Mumbai, India | GRM886 | |
Spinal needle 25GA; 3.50 IN (90.51 X 90mm) | Ramson, India | GS-2029 | |
Stereo Zoom surgical microscope | Olympus, Japan | SZ2-STU3 | |
Syringe discarder | BIOHAZARD | 882210 | |
Toothed forceps | Stoelting, Germany | 52102-30 | |
Tris Base | G Biosciences, United States | RC1217 | |
Tris Hydrochloric Acid | Himedia, Mumbai, India | MB030 | |
Tween 20 | G Biosciences, United States | RC1227 | |
White Leghorn Chicken 0-day eggs | – | – | |
Z-Val-Ala-Asp(OMe)-FMK | MP Biomedicals, LLC, USA | FK009 |