Summary

Tensometric Small Volume Chamber Myography 를 이용한 마우스 흉부 대동맥의 내피 의존성 혈관 이완 측정

Published: August 12, 2022
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Summary

본 프로토콜은 마우스 대동맥 내피 기능의 실험적 생체외 평가에서 다중 챔버 근초음파 시스템을 사용하는 텐소메트릭 근초음파 기술의 개념 및 기술적 적용을 기술한다.

Abstract

소체실 텐소메트릭 근조영술은 실험실 동물 및 인체 조직에서 분리된 소동맥에서 크고 작은 혈관의 혈관 수축성을 평가하는 데 일반적으로 사용되는 기술입니다. 이 기술을 통해 연구자들은 다양한 환경 요인에 적응할 수있는 옵션을 통해 엄격하게 통제되고 표준화 된 (거의 생리적) 환경에서 격리 된 혈관을 유지하면서 혈관 수축 또는 혈관 확장을 유도 할 수있는 다양한 약리학 적 약제로 격리 된 혈관에 도전 할 수 있습니다. 근압 챔버는 또한 평활근 및 내피층의 기능에 개별적으로 또는 동시에 영향을 미칠 수 있는 다양한 호르몬, 억제제 및 작용제에 대한 반응성 혈관 반응성을 측정하는 플랫폼을 제공합니다. 혈관벽은 내막 (내피 층), 매체 (평활근 및 엘라스틴 섬유) 및 외막 (콜라겐 및 기타 결합 조직)의 세 가지 층으로 구성된 복잡한 구조입니다. 각 레이어의 기능적 특성을 명확하게 이해하려면 세 레이어를 동시에 연구하는 조합 접근 방식을 허용하는 실험 플랫폼과 시스템에 액세스하는 것이 중요합니다. 이러한 접근 방식은 생체 외 환경에서 생체 내 환경을 모방하는 반 생리 학적 조건에 대한 액세스를 요구합니다. 소부피 챔버 텐소메트릭 근조영술은 환경 단서, 실험 변수 또는 약리학적 작용제 및 길항제가 혈관 특성에 미치는 영향을 평가하기에 이상적인 환경을 제공했습니다. 수년 동안 과학자들은 텐소 메트릭 근전도 기술을 사용하여 다양한 약제에 대한 반응으로 내피 기능과 평활근 수축력을 측정했습니다. 이 보고서에서는 분리된 마우스 대동맥에서 내피 기능을 측정하기 위해 작은 부피 챔버 텐소메트릭 근압계 시스템을 사용합니다. 이 보고서는 흉부 대동맥과 같은 큰 동맥의 작은 부분에서 내피의 기능적 완전성을 평가하기 위해 작은 부피 챔버 텐소 메트릭 근조영술을 사용하는 방법에 중점을 둡니다.

Introduction

지난 수십 년 동안 소형 챔버 근조영술 시스템은 생체 외 실시간 환경에서 다양한 약리학적 제제 및 신경 전달 물질에 반응하여 혈관벽의 여러 층의 반응성을 측정하는 데 사용되었습니다. 혈관 반응성은 건강한 기능성 혈관의 주요 구성 요소이며 말초 및 뇌 혈관계의 혈류 및 관류 조절에 중요합니다1. 혈관벽 내에서 내피층과 평활근 층 사이의 상호 작용은 혈관 색조의 주요 결정 요인이며, 이는 또한 혈관벽을 둘러싼 결합 조직층의 구조적 변화(외막)에 의해 지속적으로 영향을 받습니다.

내피층은 산화질소(NO), 프로스타사이클린(PGI2) 및 내피 유래 과분극 인자(EDHF)를 포함한 몇 가지 혈관 확장 인자를 방출하거나 엔도텔린-1(ET-1) 및 트롬복산(TXA2)2,3,4와 같은 혈관 수축제를 생성하여 혈관 운동을 제어합니다. 이러한 요인 중 NO는 광범위하게 연구되었으며 염증, 이동, 생존 및 증식과 같은 다른 중요한 세포 기능에서 중요한 조절 역할은 과학 문헌 2,5에서 많이 인용되었습니다.

혈관 생물학 분야에서 챔버 근조영술은 혈관 생리학자와 약리학자에게 엄격하게 제어된 반생리학적 시스템에서 내피 기능을 측정할 수 있는 가치 있고 신뢰할 수 있는 도구를 제공했습니다1. 현재 과학자들이 사용할 수있는 두 가지 근전도 시스템이 있습니다 : 와이어 (또는 핀) 텐소 메트릭 (등척영) 근전도와 압력 근선 조영술. 와이어 근전도 시스템에서 혈관은 두 개의 와이어 또는 핀 사이에 뻗어 혈관 벽의 힘 또는 장력 발달의 등척성 측정을 허용하는 반면, 압력 근전도는 혈압의 변화가 혈관 색조 및 혈관 운동의 변화에 대한 주요 자극으로 간주되는 작은 저항 동맥에서 혈관 반응성 측정에 바람직한 플랫폼입니다. 장간막 및 대뇌 동맥과 같은 작은 저항 동맥의 경우 압력 근전도가 인체의 생리적 조건에 더 가까운 상태를 생성한다는 일반적인 동의가 있습니다. 작은 챔버 근전도는 대동맥과 같은 매우 작은 직경(200-500μm)의 혈관에서 훨씬 더 큰 혈관에 활용할 수 있습니다.

와이어 근전도는 등척성 조건에서 혈관 장력을 기록하는 강력한 시스템인 반면, 압력 근압계는 등압 조건의 변화에 대한 혈관 직경의 변화를 측정하는 데 더 적합한 시스템입니다. 압력이나 흐름의 변화에 반응하는 혈관의 직경 변화는 대동맥과 같은 큰 탄성 동맥에 비해 작은 근육 동맥 (세동맥)에서 훨씬 큽니다. 이러한 이유로 압력 근압계는 상당한혈관 1을 가진 작은 혈관에 더 나은 도구로 간주됩니다. 다중 챔버 소부피 챔버 텐소메트릭 근조영술의 또 다른 실용적인 강점 중 하나는 동일한 동맥의 여러 부분(최대 4개)과 동일한 동물을 연구하여 가변성을 줄이고 강력하고 결정적인 데이터를 생성함으로써 혈관 반응성에 대한 다양한 메커니즘의 기여를 식별할 수 있다는 것입니다. 또한 기술적으로 설정 및 유지 관리가 비교적 쉽습니다. 거의 모든 크기의 혈관은 와이어 근전도로 연구 할 수 있습니다. 이는 혈관 기능을 평가하기 위한 보다 비용 효율적인 솔루션이며 해부된 혈관의 길이가 압력 근전도 프로토콜에 비해 너무 짧은 실험에서 압력 근조영술에 대한 좋은 대안입니다.

이 보고서는 DMT-620 다중 챔버 근전도 시스템(DMT-USA)을 사용하는 소체적 챔버 텐소메트릭 근전도 기술에 장착 핀을 사용하여 분리된 마우스 흉부 대동맥 링의 내피 기능 평가를 위한 자세한 프로토콜을 제공합니다. 이 프로토콜은 평균 체중이 25-35g 인 6 개월 된 수컷 C57BL6 마우스를 사용합니다. 다행히도이 프로토콜은이 프로토콜을 사용할 수있는 광범위한 용기 유형과 직경을 고려하여 다양한 동물 유형 및 무게에 적용될 수 있습니다.

Protocol

모든 수술 절차 및 동물 관리는 미드웨스턴 대학교의 기관 동물 관리 및 사용 및 관리 위원회(IACUC)의 승인을 받았습니다(IACUC# AZ-3006, AZ-2936). 1. 완충액 준비 참고 : hepes 생리 염 용액 (HEPES-PSS) 완충액은 4 ° C에서 7 일 동안 안정적이지만 모든 완충액은 각 실험 당일에 새로 만드는 것이 좋습니다. 다른 모든 시약과 작용제는 각 실험에 대해 새로 ?…

Representative Results

여기에 설명된 십측영 소실 근조영술 프로토콜은 소동맥 및 대동맥의 혈관 반응성을 측정하는 표준 방법이며 동일한 실험용 소형 실험실 동물에서 최대 4개의 혈관 세그먼트에서 혈관 반응성을 동시에 측정할 수 있습니다. 이 보고서에서는 특히 분리된 마우스 대동맥의 내피 기능을 측정하기 위해 시스템을 사용합니다(그림 1). 이 프로토콜에서 격리된 대동맥 세그먼트는 ?…

Discussion

혈관 생물학 분야는 연구자가 혈관벽의 기능적 및 구조적 무결성을 평가하는 데 도움이되는 도구에 크게 의존합니다. 또한 혈관의 세 층, 즉 내막, 매체 및 외막 사이의 직간접 상호 작용에 특별한주의를 기울여야합니다. 이 세 가지 층 중 내막은 내피 세포의 단층에 의해 형성되며 혈관 건강과 지혈을 조절하는 데 매우 중요한 기능을 합니다.

내피 층의 손상은 죽상 동맥 경화…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구는 국립 보건원 (R15HL145646)과 미드 웨스턴 대학교 대학원 연구 대학의 자금 지원으로 지원되었습니다.

Materials

Acetylcholine SigmaAldrich A6625-100G
CaCl2 SigmaAldrich C4901-1KG
Carbogen gas Matheson H103847
Dissecting scissors FST 91460-11
DMT 620 Multi chamber myograph system DMT DMT 620 Multi chamber myograph system
Dumont forceps FST 91150-20
EDTA SigmaAldrich E5134-10G
Glucose SigmaAldrich G8270-1KG
HEPES SigmaAldrich H7006-1KG
KCl SigmaAldrich P9541-1KG
KH2PO4 SigmaAldrich P5655-1KG
LabChart ADI instruments Data acquisition software
Light source Volpi 14363
L-Name Fischer Scientific 50-200-7725
MgSO4 SigmaAldrich M2643-500G
Microscope Leica S6D stereo zoom microscope
NaCl SigmaAldrich S5886-5KG
NaHCO3 SigmaAldrich S5761-500G
Organ bath system DMT 720MO
Phenylephrine SigmaAldrich P6126-10G
Pump Welch 2546B-01
Software ADI instruments LabChart 8.1.20
Spring Scissors FST 15003-08
Sylgard 184 Kit Electron Microscopy Services 24236-10 silicone elastomer kit
Tank Regulator Fischer Scientific 10575147
Water bath system Fischer Scientific 15-462-10

References

  1. Wenceslau, C. F., et al. Guidelines for the measurement of vascular function and structure in isolated arteries and veins. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 321 (1), 77-111 (2021).
  2. Deanfield, J. E., Halcox, J. P., Rabelink, T. J. Endothelial function and dysfunction: Testing and clinical relevance. Circulation. 115 (10), 1285-1295 (2007).
  3. Lerman, A., Zeiher, A. M. Endothelial function: Cardiac events. Circulation. 111 (3), 363-368 (2005).
  4. Rajendran, P., et al. The vascular endothelium and human diseases. International Journal of Biological Sciences. 9 (10), 1057-1069 (2013).
  5. Galley, H. F., Webster, N. R. Physiology of the endothelium. British Journal of Anaesthesia. 93 (1), 105-113 (2004).
  6. Orita, H., et al. In vitro evaluation of phosphate, bicarbonate, and Hepes buffered storage solutions on hypothermic injury to immature myocytes. Cardiovascular Drugs and Therapy. 8 (6), 851-859 (1994).
  7. Liu, Y. H., Bian, J. S. Bicarbonate-dependent effect of hydrogen sulfide on vascular contractility in rat aortic rings. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 299 (4), 866-872 (2010).
  8. Griffiths, K., Madhani, M. The use of wire myography to investigate vascular tone and function. Methods in Molecular Biology: Atherosclerosis. 2419, 361-367 (2022).
  9. Pfeiffer, S., Leopold, E., Schmidt, K., Brunner, F., Mayer, B. Inhibition of nitric oxide synthesis by NG-nitro-L-arginine methyl ester (L-NAME): Requirement for bioactivation to the free acid, NG-nitro-L-arginine. British Journal of Pharmacology. 118 (6), 1433-1440 (1996).
  10. Bacon, P. A. Endothelial cell dysfunction in systemic vasculitis: New developments and therapeutic prospects. Current Opinion in Rheumatology. 17 (1), 49-55 (2005).
  11. Gallo, G., Volpe, M., Savoia, C. Endothelial dysfunction in hypertension: Current concepts and clinical implications. Frontiers in Medicine. 8, 798958 (2021).
  12. Mikolajczyk, K., et al. The important role of endothelium and extracellular vesicles in the cellular mechanism of aortic aneurysm formation. International Journal of Molecular Sciences. 22 (23), 13157 (2021).
  13. Vallance, P., Hingorani, A. Endothelial nitric oxide in humans in health and disease. International Journal of Experimental Pathology. 80 (6), 291-303 (1999).
  14. Tousoulis, D., Kampoli, A. M., Tentolouris, C., Papageorgiou, N., Stefanadis, C. The role of nitric oxide on endothelial function. Current Vascular Pharmacology. 10 (1), 4-18 (2012).
  15. Gibson, C., et al. Mild aerobic exercise blocks elastin fiber fragmentation and aortic dilatation in a mouse model of Marfan syndrome associated aortic aneurysm. Journal of Applied Physiology. 123 (1), 147-160 (2017).
  16. Xiao, X., Ping, N. N., Li, S., Cao, L., Cao, Y. X. An optimal initial tension for rat basilar artery in wire myography. Microvascular Research. 97, 156-158 (2015).
  17. Chung, A. W., Yang, H. H., Yeung, K. A., van Breemen, C. Mechanical and pharmacological approaches to investigate the pathogenesis of Marfan syndrome in the abdominal aorta. Journal of Vascular Research. 45 (4), 314-322 (2008).
  18. Zhong, C., et al. Age impairs soluble guanylyl cyclase function in mouse mesenteric arteries. International Journal of Molecular Sciences. 22 (21), 11412 (2021).

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Cite This Article
Gusek, B., Folk, R., Curry, T., Esfandiarei, M. Measurement of Endothelium-Dependent Vasorelaxation in the Mouse Thoracic Aorta Using Tensometric Small Volume Chamber Myography. J. Vis. Exp. (186), e63918, doi:10.3791/63918 (2022).

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