Summary

Gebruik van bissectie om mitochondriaal DNA in de runderoöcyt te verminderen

Published: July 06, 2022
doi:

Summary

Hier presenteren we een protocol om de mitochondriale DNA-kopienummers in een runderoöcyt aanzienlijk te verminderen (P < 0,0001). Deze methode maakt gebruik van centrifugatie en bisectie om de mitochondriën van de eicel aanzienlijk te verminderen en kan een verhoogde kans op ontwikkeling mogelijk maken in de gereconstrueerde interspecies somatische celkerntransferembryo's.

Abstract

Interspecies somatische celkernoverdracht (iSCNT) kan worden gebruikt om bedreigde soorten te redden, maar er bestaan twee verschillende populaties mitochondriaal DNA (mtDNA) in het gereconstrueerde embryo: één in het ontvangende ooplasma en één in de donorsomatische cel. Deze mitochondriale heteroplasmie kan leiden tot ontwikkelingsproblemen bij het embryo en de foetus. Handgemaakte kloonprotocollen omvatten eicelbissectie, die kan worden gebruikt om het mtDNA-kopienummer te verminderen, waardoor de mate van mitochondriale heteroplasmie in een gereconstrueerd embryo wordt verminderd. Centrifugatie van ontblote, volwassen runderoöcyten produceerde een zichtbare mitochondriale dichte fractie aan één pool van de eicel. De zonae pellucidae van eicellen werden verwijderd door blootstelling aan een pronase-oplossing. Bisection werd uitgevoerd met behulp van een microblade om de zichtbare mitochondriale fractie te verwijderen. qPCR werd gebruikt om het mtDNA te kwantificeren dat aanwezig is in DNA-monsters geëxtraheerd uit hele eicellen en doorsneden ooplasten, waardoor een vergelijking van mtDNA-kopienummers voor en na bisectie mogelijk werd. Kopieernummers werden berekend met behulp van cyclusdrempelwaarden, de regressielijnformule van een standaardcurve en een verhouding die de respectieve maten van mtDNA PCR-producten en genomische PCR-producten omvatte. Eén runderoöcyt had een gemiddeld mtDNA-kopienummer (± standaarddeviatie) van 137.904 ± 94.768 (n = 38). Eén mitochondria-uitgeputte ooplast had een gemiddeld mtDNA-kopienummer van 8.442 ± 13.806 (n = 33). Gemiddelde mtDNA-kopieën aanwezig in een mitochondriale rijke ooplast waren 79.390 ± 58.526 mtDNA-kopieën (n = 28). De verschillen tussen deze berekende gemiddelden geven aan dat de centrifugatie en daaropvolgende bisectie de mtDNA-kopieaantallen in de mitochondria-uitgeputte ooplast aanzienlijk kunnen verminderen in vergelijking met de oorspronkelijke oöcyt (P < 0,0001, bepaald door eenrichtings-ANOVA). De vermindering van mtDNA zou de mate van mitochondriale heteroplasmie in een gereconstrueerd embryo moeten verminderen, mogelijk ter bevordering van de standaard embryonale en foetale ontwikkeling. Suppletie met mitochondriaal extract uit de somatische donorcel kan ook essentieel zijn om een succesvolle embryonale ontwikkeling te bereiken.

Introduction

Somatische celkernoverdracht (SCNT) omvat de fusie van een enucleated eicel van één dier en een somatische cel van een dier van dezelfde soort. In de meeste gevallen zijn de eicel en de somatische cel afkomstig van dezelfde soort en zijn de levende geboortecijfers lager dan 6%1. Sommige onderzoeken omvatten het gebruik van interspecies SCNT (iSCNT), waaronder de fusie van een somatische cel en eicel die afkomstig zijn van twee verschillende soorten. In deze studies zijn de levende geboortecijfers zelfs lager dan in SCNT – meestal minder dan 1% 1. iSCNT heeft echter de capaciteit om te worden gebruikt als een methode om bedreigde soorten te redden, omdat somatische cellen van deze dieren toegankelijker zijn dan hun geslachtscellen1. Ontvangende eicellen die in iSCNT worden gebruikt, zijn vaak binnenlandse of veel voorkomende laboratoriumsoorten, zoals koeien, varkens en muizen. Sommige pogingen die tot nu toe zijn gedaan, hebben met succes levende jongen voortgebracht, hoewel de geproduceerde nakomelingen intragenerische dieren waren (de ontvangende eicelsoorten en donorcelsoorten waren leden van hetzelfde geslacht)2,3,4. Intergenerische modellen (die gebruik maken van een eicel en somatische cel van dieren in verschillende geslachten) hebben nog geen levende dieren geproduceerd en de meerderheid van de gereconstrueerde embryo’s arresteert in het 8-16 celstadium van in vitro ontwikkeling 5,6,7,8. Een mogelijke verklaring voor deze embryonale ontwikkelingsstilstand is het optreden van mitochondriale heteroplasmie in de embryo’s – de aanwezigheid van meer dan één mitochondriaal DNA (mtDNA) type in een enkele cel. Heteroplasmie kan leiden tot problemen zoals ontwikkelingsinefficiëntie of falen in het embryo of bij het levende dier1. Pathogenese kan ook later in het leven van het dier optreden9. Hoewel dit probleem ook aanwezig is bij SCNT-nakomelingen, verergert de interspecifieke component binnen iSCNT-embryo’s het probleem.

Wanneer het embryonale mtDNA afkomstig is van twee verschillende soorten, werken de ontvangende eicelmitochondriën, die de meerderheid vertegenwoordigen, niet efficiënt of effectief met de kern van de donorcel 1,10. Grotere taxonomische verschillen tussen de twee soorten die in iSCNT worden gebruikt, verergeren dit probleem waarschijnlijk; intragenerische levende nakomelingen geproduceerd (Bos gaurus en Bos indicus nakomelingen met Bos taurus eicellen), evenals nakomelingen geproduceerd via traditionele SCNT (bijv. Ovis aries nakomelingen met Ovis aries oocyten) bleken chimaera’s te zijn (mtDNA van twee individuen was aanwezig in deze dieren 11,12,13). Toch ontwikkelden ze zich veel verder dan de intergenerische SCNT-embryo’s14,15. De uitwisseling van informatie tussen de mitochondriën van de eicel en de kern van de donorcel zou succesvoller kunnen zijn in het intragenerische embryo dan in het intergenerische embryo16.

De hoeveelheid mtDNA in een volwassen runderoöcyt is ongeveer 100 keer groter dan de hoeveelheid die in één somatische cel wordt aangetroffen12. Het verminderen van deze verhouding zou de somatische celmitochondriën kunnen aanmoedigen om zich te vermenigvuldigen in het gereconstrueerde embryo, waardoor een grotere populatie productieve mitochondriën aanwezig kan zijn16. Dit zou op zijn beurt meer energie kunnen leveren om aan de behoeften van het zich ontwikkelende embryo te voldoen15. Eerdere pogingen om het mtDNA-kopienummer van de eicel of het embryo te verminderen, omvatten chemische toepassing, micromanipulatie en het aanvullen van de eicel of het embryo met extra mitochondriën van de donorcelsoort 16,17,18,19,20. Chemische toepassing (zoals 2′,3′-dideoxycytidine) is echter niet ideaal voor embryonale ontwikkeling en heeft het aantal kopieën van eicellen met ongeveer de helftvan 18 verminderd. Eerdere mtDNA-reductie van oöcyten door micromanipulatie hebben slechts gemiddeld 64% van het mtDNA17 van de eicel verwijderd. Hoewel de suppletie van donorcelmitochondriën een haalbare optie zou kunnen zijn, heeft het gebruik ervan nog geen levend intergenerisch dier opgeleverd binnen iSCNT-studies21.

Het gebruik van bisection om het mtDNA-kopienummer van de eicel te verminderen, is nog niet gebruikt in gepubliceerde studies. Het doorsnijden van eicellen met de bedoeling om de ooplasten te fuseren met een somatische cel is het uitgangspunt van handgemaakt klonen (HMC), dat meestal bisectie gebruikt als methode om het polaire lichaam en de metafaseplaat uit de metafase II (MII) eicel te verwijderen. HMC heeft met succes nakomelingen geproduceerd in verschillende soorten, waaronder geiten, runderen, varkens, schapen en paarden 22,23,24,25,26, maar omvat meestal geen centrifugatiestap voorafgaand aan bisectie. Het integreren van snelle centrifugatie van de eicel maakt de isolatie van mitochondriën (en dus mtDNA) aan één pool van de eicel mogelijk, die vervolgens kan worden doorsneden met behulp van een microblade om die mitochondria-dichte fracties te verwijderen. Twee mitochondriale uitgeputte ooplasten kunnen vervolgens worden gefuseerd met een somatische cel, zoals het geval is in HMC, om een gereconstrueerd embryo te vormen dat aanzienlijk minder mtDNA van de eicelsoort bevat.

De vraag die we met dit protocol proberen te beantwoorden, is hoe mtDNA in de runderoöcyt kan worden verminderd om een levensvatbaar gereconstrueerd embryo te produceren dat minder heteroplasmatisch mtDNA bevat. In dit protocol werden eicellen gecentrifugeerd en doorsneden. Ooplast en intacte oöcyt mtDNA-kopienummers werden berekend om de effectiviteit van deze techniek te bepalen bij het verminderen van het mtDNA-kopienummer van de runderoöcyt.

Protocol

Het volgende protocol volgt de richtlijnen voor dierverzorging en ethiek van de Utah State University. 1. Voorbereiding van de media Bereid voorafgaand aan de behandeling van de eicel de volgende oplossingen, zoals beschreven in tabel 1: 400 μL Hyaluronidase-oplossing, 500 μL T2-media, 1.020 μL T20-media en 800 μL T10-media. Verdeel de T10-media in twee putjes van een vierputtenplaat, 400 μL per putje. Label één put met “M” en de twe…

Representative Results

Kwantitatieve PCR (qPCR) resultaten worden gebruikt om de relatieve hoeveelheden mtDNA aanwezig in elke ooplast te bepalen. De beschreven reactie is ontworpen om het 12S-gebied van runder mtDNA te versterken. Als de bisectie succesvol was, zullen de monsters van hele eicellen en mitochondriale ooplasten vergelijkbare Ct-waarden hebben. De monsters van mitochondria-gereduceerde ooplasten zullen hogere Ct-waarden hebben in vergelijking met de monsters van de andere twee gro…

Discussion

Methoden die eerder werden gebruikt om het aantal mtDNA-kopieën in eicellen te verminderen, hebben hun respectieve nadelen. Micromanipulatie-gebaseerde verwijdering van mitochondriën uit eicellen vermindert mtDNA-kopieaantallen met gemiddeld 64%27. Een unieke methode, die eerder werd gebruikt voor enucleatie, omvat het gebruik van Pasteur-pipetten met een kleine diameter en het splitsen van een zona pellucida-vrije eicel op de grens tussen een microdruppel van media en de omliggende minerale oli…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen hun collega’s van de Utah State University, de onderzoekers van reproductive science in de San Diego Zoo en Dr. Rebecca Krisher van Genus PLC bedanken.

Materials

1.5 mL centrifuge tubes Fisher Scientific 5408129
60 mm dish Sigma-Aldrich D8054
Centrifuge Eppendorf 5424
Cytochalasin B Sigma-Aldrich C6762
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F2442
M199 Media Sigma-Aldrich M4530
Mineral Oil Sigma-Aldrich M8410
Mini Centrifuge SCILOGEX D1008
mtDNA Primer: Forward (12S) GGGCTACATTCTCTACACCAAG
mtDNA Primer: Reverse (12S) GTGCTTCATGGCCTAATTCAAC
NanoDrop Spectrophotometer Thermo Scientific ND2000
Opthalmic Scalpel with Aluminum Handle PFM Medical 207300633 Microblade for bisection
Protease/pronase Sigma-Aldrich P5147
QIAamp DNA Micro Kit Qiagen 56304
QuantStudio™ 3 – 96-Well 0.2-mL ThermoFisher A28567
Search plate Fisher Scientific FB0875711A
SYBR Green qPCR Master Mix ThermoFisher K0221 qPCR master mix
Synthetic Oviductal Fluid with HEPES (HSOF)
ThermoPlate Tokai Hit TPi-SMZSSX Heating stage

References

  1. Loi, P., Modlinski, J. A., Ptak, G. Interspecies somatic cell nuclear transfer: A salvage tool seeking first aid. Theriogenology. 76 (2), 217-228 (2011).
  2. Wani, N. A., Vettical, B. S., Hong, S. B. First cloned Bactrian camel (camelus bactrianus) calf produced by interspecies somatic cell nuclear transfer: A step towards preserving the critically endangered wild Bactrian camels. PLOS ONE. 12 (5), 0177800 (2017).
  3. Oh, H. J., et al. Cloning endangered gray wolves (canis lupus) from somatic cells collected postmortem. Theriogenology. 70 (4), 638-647 (2008).
  4. Srirattana, K., et al. Full-term development of gaur-bovine interspecies somatic cell nuclear transfer embryos: Effect of trichostatin a treatment. Cellular Reprogramming. 14 (3), 248-257 (2012).
  5. Kwon, D. K., et al. Blastocysts derived from adult fibroblasts of a rhesus monkey (macaca mulatta) using interspecies somatic cell nuclear transfer. Zygote. 19 (3), 199-204 (2011).
  6. Lee, E., et al. Production of cloned sei whale (Balaenoptera borealis) embryos by interspecies somatic cell nuclear transfer using enucleated pig oocytes. Journal of Veterinary Science. 10 (4), 285 (2009).
  7. Lorthongpanich, C., Laowtammathron, C., Chan, A. W., Kedutat-Cairns, M., Parnpai, R. Development of interspecies cloned monkey embryos reconstructed with bovine enucleated oocytes. Journal of Reproduction and Development. 54 (5), 306-313 (2008).
  8. Hong, S. G., et al. Production of transgenic canine embryos using interspecies somatic cell nuclear transfer. Zygote. 20 (1), 67-72 (2011).
  9. Stewart, J. B., Chinnery, P. F. The dynamics of mitochondrial DNA heteroplasmy: Implications for human health and disease. Nature Reviews Genetics. 16 (9), 530-542 (2015).
  10. Takeda, K. Mitochondrial DNA transmission and confounding mitochondrial influences in cloned cattle and pigs. Reproductive Medicine and Biology. 12 (2), 47-55 (2013).
  11. Lanza, R. P., et al. Cloning of an endangered species (Bos Gaurus) using interspecies nuclear transfer. Cloning. 2 (2), 79-90 (2000).
  12. Evans, M. J., et al. Mitochondrial DNA genotypes in nuclear transfer-derived cloned sheep. Nature Genetics. 23 (1), 90-93 (1999).
  13. Meirelles, F. V., et al. Complete replacement of the mitochondrial genotype in a Bos indicus calf reconstructed by nuclear transfer to a Bos taurus oocyte. Genetics. 158 (1), 351-356 (2001).
  14. Beyhan, Z., Iager, A. E., Cibelli, J. B. Interspecies nuclear transfer: Implications for embryonic stem cell biology. Cell Stem Cell. 1 (5), 502-512 (2007).
  15. Lagutina, I., Fulka, H., Lazzari, G., Galli, C. Interspecies somatic cell nuclear transfer: advancements and problems. Cellular Reprogramming. 15 (5), 374-384 (2013).
  16. Jiang, Y., et al. Interspecies somatic cell nuclear transfer is dependent on compatible mitochondrial DNA and reprogramming factors. PLoS ONE. 6 (4), 14805 (2011).
  17. Chiaratti, M. R., et al. Embryo mitochondrial DNA depletion is reversed during early embryogenesis in cattle. Biology of Reproduction. 82 (1), 76-85 (2010).
  18. Spikings, E. C., Alderson, J., John, J. C. Regulated mitochondrial DNA replication during oocyte maturation is essential for successful porcine embryonic development. Biology of Reproduction. 76 (2), 327-335 (2007).
  19. Cagnone, G. L., et al. Restoration of normal embryogenesis by mitochondrial supplementation in pig oocytes exhibiting mitochondrial DNA deficiency. Scientific Reports. 6 (1), 1-15 (2016).
  20. Spikings, E. C., Alderson, J., John, J. C. Regulated mitochondrial DNA replication during oocyte maturation is essential for successful porcine embryonic development. Biology of Reproduction. 76 (2), 327-335 (2007).
  21. Ferreira, A. F., et al. Does supplementation with mitochondria improve oocyte competence? A systematic review. Reproduction. 161 (3), 269-287 (2021).
  22. Bhat, M. H., et al. Live birth of a pashmina goat kid after transfer of handmade cloned embryos. Journal of Reproduction and Development. , (2019).
  23. Tecirlioglu, R. T., et al. Birth of a cloned calf derived from a vitrified hand-made cloned embryo. Reproduction, Fertility and Development. 15 (7), 361 (2003).
  24. Zhang, P., et al. Handmade cloned transgenic piglets expressing the nematode fat-1 gene. Cellular Reprogramming. 14 (3), 258-266 (2012).
  25. Zhang, P., et al. Handmade cloned transgenic sheep rich in omega-3 fatty acids. PLOS ONE. 8 (2), 55941 (2013).
  26. Lagutina, I., et al. Somatic cell nuclear transfer in horses: Effect of oocyte morphology, embryo reconstruction method and donor cell type. Reproduction. 130 (4), 559-567 (2005).
  27. Chiaratti, M. R., et al. Embryo mitochondrial DNA depletion is reversed during early embryogenesis in cattle. Biology of Reproduction. 82 (1), 76-85 (2010).
  28. Hosseini, S. M., et al. and efficient method of manual oocyte enucleation using a pulled pasteur pipette. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Animal. 49 (8), 569-575 (2013).
  29. Zampolla, T., Spikings, E., Rawson, D., Zhang, T. Cytoskeleton proteins F-actin and tubulin distribution and interaction with mitochondria in the granulosa cells surrounding stage III zebrafish (danio rerio) oocytes. Theriogenology. 76 (6), 1110-1119 (2011).
  30. International Union for Conservation of Nature. The IUCN Red List of Threatened Species. International Union for Conservation of Nature. , (2021).
  31. Berg, D. K., Li, C., Asher, G., Wells, D. N., Oback, B. Red deer cloned from antler stem cells and their differentiated progeny. Biology of Reproduction. 77 (3), 384-394 (2007).
  32. Gómez, M. C., et al. Birth of African wildcat cloned kittens born from domestic cats. Cloning and Stem Cells. 6 (3), 247-258 (2004).
  33. Lanza, R. P., et al. Cloning of an endangered species (Bos gaurus) using interspecies nuclear transfer. Cloning. 2 (2), 79-90 (2000).

Play Video

Cite This Article
Adams, L., Liu, Y., Durrant, B., Ruggeri, E., Young, C., Krisher, R., Polejaeva, I. Use of Bisection to Reduce Mitochondrial DNA in the Bovine Oocyte. J. Vis. Exp. (185), e64060, doi:10.3791/64060 (2022).

View Video