Summary

تقييم الموجات فوق الصوتية غير الغازية لتطور سرطان بطانة الرحم في الحذف الموجه Pax8 لمثبطات الورم Arid1a و Pten في الفئران

Published: February 17, 2023
doi:

Summary

يصف هذا البروتوكول طريقة لمراقبة تطور التغيرات المورفولوجية بمرور الوقت في الرحم في نموذج فأر محفز لسرطان بطانة الرحم باستخدام التصوير بالموجات فوق الصوتية مع الارتباط بالتغيرات الإجمالية والنسيجية.

Abstract

يمكن دراسة سرطانات الرحم في الفئران بسبب سهولة التعامل والتلاعب الجيني في هذه النماذج. ومع ذلك ، غالبا ما تقتصر هذه الدراسات على تقييم علم الأمراض بعد الوفاة في الحيوانات التي تم قتلها رحيما في نقاط زمنية متعددة في مجموعات مختلفة ، مما يزيد من عدد الفئران اللازمة للدراسة. يمكن لفئران التصوير في الدراسات الطولية تتبع تطور المرض في الحيوانات الفردية ، مما يقلل من عدد الفئران اللازمة. سمحت التطورات في تكنولوجيا الموجات فوق الصوتية بالكشف عن التغيرات على مستوى الميكرومتر في الأنسجة. تم استخدام الموجات فوق الصوتية لدراسة نضوج الجريب في المبايض ونمو الطعم الأجنبي ولكن لم يتم تطبيقه على التغيرات المورفولوجية في رحم الفأر. يفحص هذا البروتوكول تجاور علم الأمراض مع مقارنات التصوير في الجسم الحي في نموذج فأر سرطان بطانة الرحم المستحث. كانت الميزات التي لوحظت بواسطة الموجات فوق الصوتية متسقة مع درجة التغيير التي شوهدت من قبل علم الأمراض الإجمالي والأنسجة. تم العثور على الموجات فوق الصوتية لتكون تنبؤية للغاية من علم الأمراض المرصودة ، ودعم دمج الموجات فوق الصوتية في الدراسات الطولية لأمراض الرحم مثل السرطان في الفئران.

Introduction

تظل الفئران واحدة من أهم النماذج الحيوانية للاضطرابات التناسلية1،2،3. هناك العديد من نماذج القوارض المعدلة وراثيا أو المستحثة لسرطانات المبيض والرحم. تعتمد هذه الدراسات عادة على مجموعات متعددة تم قتلها رحيما في نقاط زمنية مختلفة لالتقاط الاتجاهات الطولية في التغيرات المورفولوجية والمرضية. هذا يمنع القدرة على الحصول على بيانات مستمرة عن تطور السرطان في الماوس الفردي. بالإضافة إلى ذلك ، دون معرفة حالة تطور مرض الفئران الفردية ، تستند دراسات التدخل إلى نقاط زمنية محددة مسبقا ومتوسط نتائج الأفواج السابقة بدلا من العتبات الفردية للكشف عن التقدم فيمعين 4,5. لذلك ، هناك حاجة إلى مناهج التصوير التي تسمح بالتقييم الطولي في الحيوانات الحية لتسهيل النماذج قبل السريرية لاختبار الأدوية أو المركبات الجديدة وتسريع فهم البيولوجيا المرضية مع زيادة الدقة والتكاثر6.

يعد التصوير بالموجات فوق الصوتية (الولايات المتحدة) طريقة جذابة للمراقبة الطولية لتطور سرطان رحم الفأر لأنه سهل نسبيا وغير مكلف مقارنة بطرق التصوير الأخرى ، وسهل الأداء ، ويمكن أن يكون له دقة رائعة 6,7. يمكن لهذه الطريقة غير الغازية التقاط الميزات على مقياس ميكرون في الفئران المستيقظة أو مع الفئران تحت التخدير القصير باستخدام اختبار 5-10 دقائق. تم التحقق من صحة الفحص المجهري بالموجات فوق الصوتية كطريقة لقياس تطور جريب مبيض الفأر 8 ونمو الأورام المزروعة أو المستحثة9،10،11. كما تم استخدام الولايات المتحدة عالية التردد للحقن داخل الرحم عن طريق الجلد12 ومراقبة تغير رحم الفئران خلال دورة الشبق13. يمكن استخدام الولايات المتحدة عالية التردد مع الفئران الموجودة على منصات ثابتة متخصصة باستخدام نظام السكك الحديدية لعقد محول الطاقة / المسبار لالتقاط صور عالية الدقة مع وضع وضغط قياسيين ؛ ومع ذلك ، فإن هذه المعدات غير متوفرة في جميع المؤسسات. يمكن اعتماد طرق مسح محول الطاقة المحمولة باليد مع معدات أقل تكريسا واستخدامها لكل من التشخيص السريري والتطبيقات البحثية في الفئران.

ويبقى السؤال حول ما إذا كان يمكن استخدام التصوير الأمريكي باستخدام مجسات عالية التردد محمولة باليد لمراقبة تطور سرطان الرحم على مدى عدة أسابيع. على غرار الأمعاء ، فإن رحم القوارض عبارة عن بنية نحيلة رقيقة الجدران متحركة للغاية داخل البطن ومتجاورة عبر أعماق الأنسجة المتعددة ، مما يجعل التصوير أكثر صعوبة من الأعضاء غير المتحركة نسبيا مثل الكلى. سعت هذه الدراسة إلى إثبات العلاقة بين الأنسجة التي لوحظت بواسطة الموجات فوق الصوتية وعلم أمراض الأنسجة ، وتحديد معالم لتحديد موقع رحم الفأر ، وتحديد جدوى التقييم الطولي لسرطان بطانة الرحم. تقدم هذه الدراسة بيانات تظهر تطابقا نوعيا بين ظهور الرحم الذي تم تصويره بواسطة الولايات المتحدة وعلم أمراض الأنسجة ، بالإضافة إلى التصوير التسلسلي للفئران على مدى عدة أسابيع. تشير هذه النتائج إلى أنه يمكن استخدام الولايات المتحدة المحمولة باليد لمراقبة تطور سرطان بطانة الرحم في الفئران ، مما يخلق فرصة لجمع البيانات الطولية الفردية للفأر لدراسة سرطان الرحم دون الحاجة إلى معدات مخصصة.

Protocol

تم تنفيذ جميع الإجراءات والتجارب التي شملت الفئران وفقا للبروتوكولات المعتمدة من قبل لجنة جونز هوبكنز لرعاية واستخدام الحيوان. بالنسبة لجميع الإجراءات ، تم ارتداء معدات الوقاية الشخصية المناسبة ، بما في ذلك القفازات وأردية العزل التي تستخدم لمرة واحدة. تم اتخاذ الاحتياطات عند التعامل م?…

Representative Results

تم الحفاظ على الفئران المعدلة وراثيا Pax8-Cre-Arid1a-Pten (iPAD) على خلفية وراثية مختلطة (129S ، BALB / C ، C57BL / 6) ، كما هو موضح سابقا14. تم تغذية جميع الفئران تغذية الدوكسيسيكلين لمدة 2 أسابيع للحث على Cre recombinase. في العمل السابق من قبل مجموعتنا ، تم تناول الدوكسيسيكلين بواسطة gavage<sup class="xref…

Discussion

يفحص هذا البروتوكول فائدة الموجات فوق الصوتية لتقييم التغيرات المورفولوجية الرحمية في تطور السرطان الغدي في الرحم في الفئران. في هذه الدراسة ، من خلال اتباع تحريض سرطان بطانة الرحم في الفئران طوليا ، تم العثور على التفاصيل التشريحية المكتشفة بواسطة الموجات فوق الصوتية لتكون مؤشرات على ع…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نحن ممتنون للتمويل من برنامج NCI Ovarian Cancer SPORE P50CA228991 ، وبرنامج تدريب ما بعد الدكتوراه 5T32OD011089 ، ووقف ريتشارد دبليو تيليندي ، جامعة جونز هوبكنز. كما تم تمويل المشروع جزئيا من خلال الإعانات المقدمة للنفقات الجارية لمؤسسات التعليم العالي الخاصة من مؤسسة الترويج والمساعدة المتبادلة للمدارس الخاصة في اليابان.

Materials

Reagents and Equipment Used for Animal Care
Rodent Diet (2018, 625 Doxycycline) Envigio TD.01306 Mouse Feed
Reagents and Equipment Used for Ultrasound Imaging
10 mL injectable 0.9% NaCl  Hospira, Inc RL-7302 Isotonic Fluid
Absorbent Pad with Plastic Backing Daigger EF8313 Absorbant Pads
Anesthesia Induction Chambers Harvard Apparatus 75-2029 Induction Chamber
Anesthetic absorber kit with absorber canister, holder, tubing, & adapters CWE, Inc 13-20000 Nose Cone and Tubing
Aquasonic Clear Ultrasound Gel (0.25 Liter) Parker Laboratoies 08-03 Ultrasound Gel
BD Plastipak 3 mL Syringe BD Biosciences 309657 Syringe
F/Air Scavenger Charcoal Canister OMNICON 80120 Scavenging System for Anesthesia
Isoflurane, USP Vet One 502017 Anesthesia Agent
M1050 Non-Rebreathing Mobile Anesthesia Machine Scivena Scientific M1050 Anestheic Vaporizer
MX550S, 25-55 MHz Transducer, 15mm, Linear VisualSonics MX550S Ultrasound Transducer (Probe)
Nair Hair Aloe & Lanolin Hair Removal Lotion – 9.0 oz Nair Depilliating Cream
Philips Norelco Multigroomer All-in-One Trimmer Series 7000 Philips North America MG7750 Clippers
PrecisionGlide 25 G 1" Needle BD Biosciences 305125 Needle
Puralube Ophthalmic Ointment Dechra 17033-211-38 Lubricating Eye Drops
Vevo 3100 Imaging System VisualSonics Vevo 3100 Ultrasound Machine
Vevo LAB 5.6.1 VisualSonics Vevo LAB 5.6.1 Ultrasound Analysis Software
Vinyl Heating Pad with cover, 12 x 15" Sunbeam 731-500-000R Heating Pad
Wd Elements 2TB Basic Storage Western Digital Elements WDBU6Y0020BBK-WESN Data Storage
Reagents and Equipment Used for Immunohistochemistry
10% w/v Formalin Fischer Scientific SF98-4 Tissue Fixation Buffer
Animal-Free Blocker and Diluent, R.T.U. Vector Laboratories Inc.  SP5035 Antibody Blocker
Charged Super Frost Plus Glass Slides VWR 4831-703 Tissue Mounting Slides
Citrate Buffer MilliporeSigma  C9999-1000ML Epitope Retrival Buffer (pTEN)
Cytoseal – 60 Thermo Scientific 8310-4 Resin for Slide Sealing
Gold Seal Cover Glass Thermo Scientific 3322 Coverslide
Harris Modified Hematoxylin MilliporeSigma HHS32-1L Counterstain Buffer
Hybridization Incubator (Dual Chamber) Fischer Scientific 13-247-30Q Oven to Melt Parraffin
ImmPACT DAB Substrate, Peroxidase (HRP) Vector Laboratories Inc. SK-4105 Signal Development Substrate
ImmPRESS HRP Goat Anti-Rabbit IgG Polymer Detection Kit, Peroxidase Vector Laboratories Inc. MP-7451 Secondary IHC Antibody
Oster 5712 Digital Food Steamer Oster 5712 Vegetable Steamer for Epitope Retrival
rabbit mAB anti-ARID1a abcam ab182560 Primary IHC Antibody (1:1,000)
rabbit mAB anti-PTEN Cell Signaling 9559 Primary IHC Antibody (1:100)
Scotts Tap Water Substitute MilliporeSigma S5134-100ML "Blueing" Buffer
Tissue Path IV Cassette Fischer Scientific 22272416 Tissue Fixation Cassette
Trilogy Buffer Cell Marque  920P-10 Epitope Retrival Buffer (ARID1a)

References

  1. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertility Research and Practice. 6, 5 (2020).
  2. Kim, S. W., Kim, Y. Y., Kim, H., Ku, S. Y. Animal models closer to intrauterine adhesive pathology. Annals of Translational Medicine. 8 (18), 1125 (2020).
  3. Shi, D., Vine, D. F. Animal models of polycystic ovary syndrome: a focused review of rodent models in relationship to clinical phenotypes and cardiometabolic risk. Fertility and Sterility. 98 (1), 185-193 (2012).
  4. Greco, A., et al. Ultrasound biomicroscopy in small animal research: applications in molecular and preclinical imaging. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 519238 (2012).
  5. Palsdottir, K., et al. Interobserver agreement of transvaginal ultrasound and magnetic resonance imaging in local staging of cervical cancer. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology. 58 (5), 773-779 (2021).
  6. Gabrielson, K., et al. In vivo imaging with confirmation by histopathology for increased rigor and reproducibility in translational research: A review of examples, options, and resources. ILAR Journal. 59 (1), 80-98 (2018).
  7. Peterson, R. A., et al. Continuing education course #1: Non-invasive imaging as a problem-solving tool and translational biomarker strategy in toxicologic pathology. Toxicologic Pathology. 39 (1), 267-272 (2011).
  8. Pfeifer, L. F., Adams, G. P., Pierson, R. A., Singh, J. Ultrasound biomicroscopy: A non-invasive approach for in vivo evaluation of oocytes and small antral follicles in mammals. Reproduction, Fertility and Development. 26 (1), 48-54 (2013).
  9. Cheung, A. M., et al. Three-dimensional ultrasound biomicroscopy for xenograft growth analysis. Ultrasound in Medicine and Biology. 31 (6), 865-870 (2005).
  10. Snyder, C. S., et al. Complementarity of ultrasound and fluorescence imaging in an orthotopic mouse model of pancreatic cancer. BMC Cancer. 9, 106 (2009).
  11. Wu, G., Wang, L., Yu, L., Wang, H., Xuan, J. W. The use of three-dimensional ultrasound micro-imaging to monitor prostate tumor development in a transgenic prostate cancer mouse model. The Tohoku Journal of Experimental Medicine. 207 (3), 181-189 (2005).
  12. Rinaldi, S. F., et al. Ultrasound-guided intrauterine injection of lipopolysaccharide as a novel model of preterm birth in the mouse. The American Journal of Pathology. 185 (5), 1201-1206 (2015).
  13. Wang, T., et al. Ultrasonography in experimental reproductive investigations on rats. Journal of Visualized Experiments. 130, e56038 (2017).
  14. Suryo Rahmanto, Y., et al. Inactivation of Arid1a in the endometrium is associated with endometrioid tumorigenesis through transcriptional reprogramming. Nature Communications. 11, 2717 (2020).
  15. Pani, F., et al. Pre-existing thyroiditis ameliorates papillary thyroid cancer: Insights from a new mouse model. Endocrinology. 162 (10), bqab144 (2021).
check_url/64732?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Vistein, R., Winer, B., Myers, S., Liberto, J., Ishiyama, S., Guo, X., Saeki, H., Wang, T., Shih, I., Gabrielson, K. Non-Invasive Ultrasound Assessment of Endometrial Cancer Progression in Pax8-Directed Deletion of the Tumor Suppressors Arid1a and Pten in Mice. J. Vis. Exp. (192), e64732, doi:10.3791/64732 (2023).

View Video