Summary
好中球は、血液中に最も豊富に存在する白血球である。好中球は、このような炎症性サイトカインとアポトーシスの抑制の生産などの転写調節機能を有する。これらの関数は、単離核で、フローサイトメトリーによって核内因子の検出および定量化を可能にするここに示す方法で研究することができる
Abstract
好中球は、末梢血中に最も豊富に存在する白血球である。これらの細胞は、このように微生物を侵略に対する最初の防衛線となって、炎症や感染部位に最初に表示されています。好中球は、貪食作用、溶菌酵素の放出、活性酸素種の産生などの重要な抗菌機能を有する。これらの重要な防御機能に加えて、好中球などの炎症性サイトカインおよびアポトーシスの阻害の生産などの感染症に対応して他のタスクを実行します。サイトカインは、感染をクリアに役立つ他の白血球をリクルートする、アポトーシスの阻害は、好中球が感染部位で長生きすることができます。これらの機能は、転写レベルで調節されている。好中球は短命の細胞であるため、全く効率が存在しないためしかし、これらの細胞における転写調節応答の研究は、従来のレポーター遺伝子のメソッドで実行することはできません好中球のトランスフェクションのためcientテクニック。ここでは、フローサイトメトリーによって単離し、免疫標識核における核内因子の検出および定量化を可能にするシンプルで効率的な方法を提示する。我々は、ヒト末梢血から純粋な好中球を分離するための手法について説明抗受容体抗体で、これらの細胞を刺激し、隔離し、immunolabel核、フローサイトメトリーで核を分析します。メソッドが成功した好中球および他の細胞型から核内にNF-κBおよびエルク-1核内因子を検出するために使用されています。したがって、この方法では、種々の細胞型から単離核内転写因子の活性を分析するためのオプションを表します。
Introduction
好中球は末梢血1に最も豊富に存在する白血球である。炎症や感染症、好中球の間に、彼らは防衛2の最初の行として働く場所患部に出現する最初の細胞である。好中球は貪食作用、活性酸素種の産生、脱顆粒によって溶菌酵素の放出、および4,5 -炎症性サイトカインの産生を含むいくつかの抗菌メカニズムの3を所有しています 。好中球は急速に様々な細胞表面の受容体からのシグナル伝達を介して活性化取得短命な細胞である。好中球は、その短い寿命のため、端末の細胞と考えられ、炎症過程6の間に活性化されない限り、彼らはアポトーシスを受けるので、それは、彼らはまた、特定の遺伝子の転写のレベルを変更することにより、それらの表現を変更できることが明らかになってきたが。サイトカイン5と7,8アポトーシスの阻害の生産は、i 2アール好中球の転写レベルで調節mportant活性化に依存した細胞機能。核因子κB（NF-κB）は、サイトカイン産生4の転写制御で、様々な種類の細胞における細胞生存とアポトーシス9-11の調節に関与している。
核因子の活性化につながるシグナル伝達経路は、通常、レポーター遺伝子アッセイにより、または電気泳動移動度シフトアッセイ（EMSA）によって研究されている。好中球は短命の細胞であるため、好中球のトランスフェクションのための効率的な技術が存在しないためしかし、これらの細胞における転写調節応答の研究は、レポーター遺伝子アッセイを使用して実行することはできません。 EMSAのアッセイは、核因子活性化12,13を探索するために好中球に使用されてきたが、それが放射性物質の使用を伴うので、しかしながら、この方法論は、複雑で高価である。クレオはsuccessfu使用されています別の技術であるLLY単球14をトランスフェクトする。したがって、少なくとも理論的には、核因子の活性化は、トランスフェクションによる好中球（低効率にもかかわらず）で検出することができた。しかし、この技術は、時間がかかり、おそらく少ない定量より高価になるだろう。免疫染色された細胞の顕微鏡分析はまた、核内で核内因子を検出するために使用することができる。実際、我々は核 こうして15にNF-κBの転座を検出した。残念なことに、この手法はまた、時間のかかるレス定量的、かつ観察者バイアスの影響を受けます。
ここでは、フローサイトメトリーによって単離し、免疫標識核における核内因子の検出および定量化を可能にするシンプルで効率的な方法を提示する。我々は、F（フローサイトメトリーにより、ヒト末梢血から好中球を分離抗受容体抗体とインテグリンまたはFc受容体を介して、これらの細胞を刺激し、隔離し、immunolabel核を、核を分析するための手法について説明igure 1）。メソッドが成功し、NF-κB15および好中球の核内エルク-1 16核内因子を検出するために使用されています。この方法の感度は、核内の核因子レベルの小さな変化を検出することができます。また、この方法は、他の細胞型から核内転写因子のレベルを分析するために使用することができます。
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Protocol
1。ヒトの血液から好中球の分離（PMN）
- 抗凝固剤としてヘパリン（10 U / ml）で約20mlヒトの血液を使用します。血液はvenopunctureによって成人の健康なボランティアから採取した。 UNAM - 全ての実験は、のInstituto de InvestigacionesBiomédicasにおける生命倫理委員会の承認の下で行われた。
- 15mlコニカル遠心チューブにPBSで6％デキストランT500の2ミリリットルを入れて、血液の10ミリリットルを追加します。チューブを反転することによって2倍または3倍を混ぜて、それが赤血球沈降を可能にするために45分間放置します。
- 新鮮な15mlコニカル遠心管に5ミリリットルのFicoll-Paqueは置く。
- 赤血球沈降の上方に形成された白血球血小板血漿を取り、慎重に第2層を形成するのFicoll-Paqueの上に移します。 2フェーズがあることを確認してください。
- 4℃で20分間、516×gで遠心分離し、遠心分離後、血漿とのFicoll-Paqueの相間での単核細胞の層がある。ねーutrophilsは、チューブの下部にあります。
- 上清を取り除き、ラックに対してチューブをタップして、細胞ペレットを壊し、風邪の10ミリリットル（4℃）、PBS（注）追加することで、細胞を再懸濁する。ピペッティングにより細胞を再懸濁し、これがあまりにもあるのでダウンはお勧めしませんが細胞にダメージを与える。
- 4℃で5分間、290×gで50ミリリットルコニカル遠心チューブと遠心分離機に細胞懸濁液を移す
- 前と同じように細胞ペレットを破ると冷たい（4℃）赤血球を溶解するために低張液（0.2％のNaCl、1％BSA、20mMのHEPES、pH = 7.4）中の10 mlを加える。正確に1分間手で優しくチューブを回して混ぜる。
- 冷（4℃）高張液（1.6％のNaCl、1％BSA、20mMのHEPES、pH = 7.4）に、ミックス、血球計算盤（通常> 95％はPMNである）を用いて細胞をカウント10mlを追加します。
注：細胞をカウントしながら氷上で細胞懸濁液をチューブに保管してください。 - 以前と同じように遠心分離し、10℃PMNを再懸濁寒さの中7細胞/ ml（4℃）をPBS。氷上で保存する。
注：好中球が4で約6〜8時間、℃で生存可能で機能的なままである。
2。 PMNのアクティブ化
- 1.5mlのエッペンドルフチューブにPMNの懸濁液100μl（1×10 7細胞/ ml）を入れてください。
注：サンプルチューブが少なくとも重複で行われるべきです。いつものネガティブコントロールのみのみ一次抗体、二次抗体を含むべきである。 - 10μg/ mlで対応する抗インテグリンまたは抗Fc受容体モノクローナル抗体（mAb）を追加し、氷上で15分間インキュベートする。
- 1 mlの冷（4℃）、PBS、遠心機で1743×gで（4,500 rpm）で遠心分離し、上清を吸引する。を追加することにより、PMNを洗う
- ラックに対してチューブの底をタップすることで、細胞ペレットを壊し、1ミリリットルの冷PBSを追加し、2回以上前のステップのように洗ってください。
注：これらは結合していない抗体を除去洗う。 - 同じで再懸濁し、PMN（内暖かいのitial）体積（37℃）Fの60μg/ mlの（ab '）2ヤギ抗マウスIgGを含むPBS。
注：二次抗マウスIgG抗体は、最初の抗受容体抗体に結合し、受容体の架橋を引き起こすでしょう。 - 興味のある核因子に応じて1〜20分、37℃でインキュベートする。 NF-κBは通常15分間、通常はエルク-1で5分間。
注：37℃で細胞をインキュベート4では行われません°C誘導する受容体架橋、℃ - 1ミリリットルの冷PBSを加え、遠心機で1743×gで3分間遠心する。
- 上清を除去
- dry-ice/ethanol浴ですぐにPMNを凍結し、10分間そこに保管してください。
3。核の単離および固定
- 100μlの冷（4℃）低張緩衝液（10mMのHEPES、10mMのKCl、1.5mMのMgCl 2、再懸濁し、凍結PMNペレットと 1mMのたて付加DL-ジチオスレイトール[DTT];でpH = 7.9）。それが1つdry-ice/ethanol浴1からチューブを取り出して、そして低張緩衝液を加える前にチューブの底をきれいに拭くことをお勧めします。
- 氷の上に置き、トリパンブルーによる核懸濁液のアリコートを染色することによって核の整合性をチェックします。核は円形と青に見える。無傷PMNは、ステンド取得しないと、細胞の破片は、不規則な形状の青色粒子として表示されます。
注：核懸濁液は、多くの無傷細胞やゴミが含まれている場合、それは準備を破棄し、別のサンプルを使用して手順を繰り返すことをお勧めします。 - 寒い部屋の中で10分間遠心機で775×gで（3,000 rpm）で核を遠心分離します。非常に壊れやすく、余分であるこの時点で核ケアはサンプルは低温に保ち、過度の力で遠心分離していない場合は注意が必要です。
- 非常に注意深くピペッティングにより上清を除去します。
- 核を修正するために、PBS中の冷たい4％パラホルムアルデヒドを100μlを加える。
注：ペレットは非常に緩んでいるDバッファを追加することで核を再懸濁するのに十分です。上下にピペッティングとは避けるべきである。 - 氷上で20分間インキュベートします。
- Immunolabelフローサイトメトリーのための核または4で最大24時間のためにそれらを保つ℃に
4。フローサイトメトリー分析のための核免疫標識
- 1分間遠心機で1743×gで（4,500 rpm）で核を遠心し、非常に穏やかにピペッティングにより上清を除去します。
- 風邪を100μl（4℃）0.1％トリトンX-100、PBS中の4％パラホルムアルデヒド核を透過性にするために追加します。 10分間氷上でインキュベートする。
- 遠心機で1743×gで透過処理した核を遠心分離し、上清を注意深く除去します。この時点で核ペレットがチューブの底にうまく接続しないでください。これは、ペレットが緩ん得れば再度遠心操作することをお勧めします。
- 非特異的結合部位をブロックし、氷上で20分間インキュベートし、PBS中の冷4％ウシ胎児血清（FBS）500μlに再懸核。遠心遠心機で3分間1743 xgで核と慎重に上清を除去する。
- 4パーセントFBSおよび興味のある核因子に対するmAbの2.5μg/ mlを含有する冷100μlのPBSに再懸濁し核。氷上で20分間インキュベートします。
注：通常のネガティブコントロールのみ抗核因子抗体が含まれ、FITC標識二次抗体のみ必要があります。 - 4パーセントFBSおよび3分間1743 xgで遠心分離して冷PBS500μlで2回洗浄する。
- 、非常に慎重に4パーセントFBSおよび対応するFITC標識二次抗体10μg/ mlを含有する冷100μlのPBSに再懸濁した核を上清を除去し、氷上で20分間インキュベートします。
- 前のステップのように4％FBSを冷PBS500μlで二回核を洗ってください。
- PBS中で冷4％パラホルムアルデヒド400μlの中の核を再懸濁します。
注：核は、サンプルが汚染することなく、数日間保存できるようにパラホルムアルデヒドに配置されている血清の存在下で発生する可能性のある問題。 - 4℃の暗所では、フローサイトメトリーやストアによって直ちに分析℃で3日間までのC。
5。フローサイトメトリー分析
- または同様の装置、フローサイトメーターなどFACスキャン（フランクリンレイクス、ニュージャージー州Becton Dickinson社製）で免疫標識核を分析します。
- 196でログスケールでSSC、およびドットプロットのゲート核、10-1でログスケールでFSC：に取得設定を調整します。
- サンプルあたり1万核を獲得。
- 400℃で対数スケールに設定FL-1チャネル（506 nm）を介して、FITC-染色された核の蛍光分析。
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Representative Results
ここに記載の精製方法は、通常は95％（ 図1A）を超える純度を有する非刺激好中球（PMN）を提供しています。隔離されたPMNはその後、特定のモノクローナル抗体で架橋する特定の受容体によって刺激することができる。我々は、Fc受容体とインテグリン（ 図1B）を介してPMNを刺激してきた。一度刺激、PMNを溶解し、核を高収率で分離されています。核は、そのような特異的な抗体との核因子κB（NF-κB）、（ 図1B）などの特定の核因子に対して免疫標識されています。
核は簡単にドットプロット（ 図2A）とフローサイトメーターにそのままPMNの異なる集団として認識させることができます。休んPMNにおけるNF-κBの基底レベルは細胞核（ 図2B）で発見されます。架橋β1インテグリンによる刺激時には、NF-κBは核とこのincremへ移行している核のNF-κBでENTは、蛍光（ 図2B）の増加として検出されています。蛍光（ 図2C）の増加によって示されるように、同様に、架橋によるPMNの刺激β2インテグリンはまた、NF-κB活性化を誘導した。 β2インテグリンより、フィブロネクチン、誘導された強力なNF-κB活性化などの細胞外マトリックスタンパク質を結合するβ1インテグリンが、他の細胞に接着分子に結合するという事実によって証明されるように、この方法の感度は、核因子レベルの小さな変化の検出を可能に（ 図2Bおよび2Cを比較）。
また、この方法は成功しPMNのFc受容体刺激後の単離核におけるNF-κB15とエルク-1 16核内因子を検出するために使用されています。この方法は簡単で、経済的であり、したがって、それは簡単に他の種類の細胞に核要因を分析するように変更できます。
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図1。血、細胞の刺激、核の単離、および単離核で核内因子の免疫標識から好中球（PMN）の精製の 概略図。）ヘパリン処理した血液は、赤血球を凝集させるデキストランと混合される。赤血球の堆積した後、白血球血小板血漿は赤血球の上にあります。この白血球に富む血漿を別のチューブに移してのFicoll-Paqueの上に積層されている。遠心分離した後、単核細胞（MNC）の層は、プラズマとのFicoll-Paqueの相間で発見されています。 PMNは、チューブの底で発見されています。B）は孤立PMNが架橋特異的なモノクローナル抗体を用いた細胞膜受容体（mAb）を（オレンジ）、二次抗体（濃緑色によって刺激される）。核因子κB（NF-κB）は、核内に、その阻害剤IκBと転位から離れる。核はその後、分離した透過処理し、NF-κBまたは特異的mAb（黄）、FITC標識二次抗体（ライトグリーン）を使用して別の核因子に対する免疫標識されています。固定された核は、フローサイトメトリー（FACS）によって分析される。 拡大図を表示するにはここをクリック 。
図2好中球（PMN）におけるNF-κB活性化の分析が。）無傷のPMN（左パネル）または単離核（右のパネル）は、フローサイトメトリードットプロットグラフ内の2つの別個の集団として表示されます。細胞や核がが独立して分析することができます無傷の細胞はR1（赤色）、および単離核のR2（青）が、別のゲートを作成します。PMNから単離されたBとC）の核は（緑破線）の前に、NF-κB（p50サブユニット）の免疫標識、またはセルの後にしたまたは特異的なモノクローナル抗体IB4（赤線）とβ2インテグリン（C）に特異的なモノクローナル抗体TS2/16（青線）と架橋β1インテグリン（B）によって活性化した。灰色の領域だけではFITC標識二次抗体から基底蛍光である。
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Discussion
ここに記載の精製方法は、短時間で95％（顕微鏡観察により評価）、より高い純度を持つ非刺激好中球の分離（PMN）が可能になります。後者は完全に溶解されていない場合、時には好中球は、赤血球によって汚染することができます。赤血球及びPMNを簡単にフローサイトメトリーによって異なる細胞集団として区別することができるので、これは通常、技術に影響を与えません。隔離されたPMNはその後、特定のモノクローナル抗体で架橋する特定の受容体によって刺激することができる。実際には、PMNは、薬理学的手段によって、または様々な基材または他の細胞への接着によって刺激することができる。ここで紹介する方法は、細胞は実質的に関連する生物学的刺激によって活性化された後、PMN核における核内因子の変化につながるシグナル伝達経路の解析に使用できます。
PMNが刺激されると、この論文に記載された方法は、迅速かつefficiが可能免疫蛍光法およびフローサイトメトリー分析によるNF-κBのこれらの核中の核のと検出のための耳鼻咽喉科浄化、。特定の受容体のPMNの刺激後、細胞質におけるNF-κBは、その阻害剤IκBから解放された後、核（ 図1B）にtraslocated。したがって、NF-κB活性化のレベルは、核内でNF-κBの存在量によって決定されます。この方法は核内でNF-κBの量を検出し、測定することができますので、簡単にこの核因子の活性を決定することができます。この方法は、同様にそれらの活性化は、核レベルの変化にリンクされている他の核内因子の活性化を検出することができます。それはのためにそうであるように、または因子の分子構造のようなリン酸化などの変化、核内因子の変更をアクティブにすると、それはNF-κBのためにそうであるように、核内因子の存在量の変化に起因することができますエルク-1。このメソッドは、cを検出するために用いることができる特定の抗体が提供されている任意の分子の核レベルの25 ∿ 30年。
この方法は、簡単かつ迅速な方法で純粋な核の集団が得られます。細胞は、細胞がはじけ、無傷核を残し低張緩衝液中で凍結し、溶解させる。無傷PMNまたは単離核は、通常フローサイトメトリードットプロットグラフ内の2つの別個の集団として表示されます。細胞や核が無傷の細胞、および単離核に別のゲートを作成することにより、独立して分析することができます。無傷の細胞のサンプルではゲートは、ほとんどの細胞が表示される領域の周りに作成されています。同様に、核試料とゲートが最も核が表示される領域の周りに作成されています。通常、これらの2つのゲートはドットプロットグラフのさまざまな場所にあります。時には、これらのゲートの外に検出された粒子は、通常、細胞や核の残骸であり、それらは分析から除外されています。細胞および核の門が重なっている場合、それは通常、核の準備がCLEはないことを意味。この核の準備の分析は信頼できません、そして、それは焼きたてのバッファで手順を繰り返すことをお勧めします。
方法はヒトPMNで動作するように開発されましたが、それはまた、正常白血球の起源15の様々な細胞株に適用されています。方法は簡単に様々な種類の細胞から核を単離するために適合させることができます。効率的なフローサイトメトリー分析のために十分な核を得るために、1×10 6個の細胞を最小限に抑えて、次の手順を開始することが重要です。核の小さな数字の末尾が得られれば、それは日常的に3×10 6個の細胞を持つメソッドを開始することをお勧めします。
溶解工程の間、凍結細胞を解凍することは許されない。電池の劣化に起因する低収率でこの結果。したがって、それは細胞を溶解するためにdry-ice/ethanol浴から一度チューブを取ることが推奨される。また、低張溶解を追加する前に、チューブの外側をきれいに拭いておくことが重要ですバッファ。これが行われない場合、バッファは時々非効率的な細胞溶解を与え、無傷の細胞に汚染されている核の準備で、その結果、チューブ内でフリーズします。それでも、これはほとんどの場合、無傷の細胞や核がフローサイトメトリーによって分離することができることを考えると深刻な問題ではありません。
それらが修正される前に、核は非常に壊れやすいので、氷の中にそれらを維持することにより、4℃ですべての緩衝液が冷たいておくことが重要です。上清を除去したときに遠心分離した後、核ペレットがチューブの底に時々緩んでいるので、細心の注意を払う必要があります。これは、より良い真空吸引と比べてマイクロピペットを用いて行われる。機会に、チューブを再び遠心分離することができますが、この損害賠償は核ので推奨遠心力は過大であってはならない。
方法は、検出されたNF-κBのp50サブユニット（ 図2）に特異的な抗体を用いて活性化、およびALSこの核因子のp65サブユニット15を O。また、ERKおよびエルク-1の受容体によって開始核活性化の定量化にも成功し、これらの分子に対して対応する特異的な抗体を用いて、この方法で16を介して達成された。また、この方法の感度は、インテグリンの異なるタイプ（ 図2）によりPMNの差刺激によるNF-κBの核レベルの小さな変化を検出することが許され、また、Fc受容体によって開始シグナル伝達経路の薬理学的阻害16に起因する。良い特異抗体と効率的な蛍光標識二次抗体との組み合わせは素晴らしい感度を提供し、原子核内部の関心の核因子の量のわずかな変化を検出することができます。これは、異なった刺激条件前後の核因子のレベルの定量的な比較を可能にします。また、この方法では、単離されたNUで検出することができますCLEI、良好な特異的な抗体が利用可能である、それに対して実質的に任意の分子。さらに、免疫標識部分が直接加えて感性を向上させるfluorochomeで標識された抗体を用いて簡略化することができます。多くの異なったfluorochomesが使用できるため、最後に、この方法は、大きな柔軟性を提供します。したがって、この方法は、核内のタンパク質レベルの変化を伴って、多くの異なるシグナル伝達の研究に適用することができます。
結論として、本稿で述べた手法の幅広い適用性と感度は、種々の細胞型の核内のタンパク質レベルの変更を伴うシグナル伝達研究のための、シンプルで経済的なオプションとして、それを配置します。
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Disclosures
著者らは、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。
Acknowledgments
著者は彼女の技術支援のためのナンシーモーラに感謝したいと思います。
この作品は、ConsejoナシオナルデCiencia yをTecnologia、メキシコからの研究助成金48573-Mおよび168098でかつ助成IN212308とIN205311-2 Direccionから一般デAsuntosデルパーソナルAcademico、国立大学自治デ·メキシコ、メキシコによって賄われていた。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| REAGENTS | |||
| Heparin | PiSA (Mexico) | ||
| Dextran T500 | Pharmacosmos A/S (Holbaek, Denmark) | T1-Dextran T500 | |
| Ficoll-Paque | Pharmacia | 17-0320-01 | |
| Sodium chloride | Sigma | S7653 | |
| Sodium phosphate monobasic | Sigma | S9638 | |
| Sodium phosphate dibasic | Sigma | S9390 | |
| Bovine serum albumin (BSA) | Sigma | A2153 | Cohn Fraction V |
| HEPES | Sigma | H3375 | |
| Potassium chloride | Sigma | P9541 | |
| Magnesium chloride anhydrous | Sigma | M8266 | |
| DL-dithiothreitol (DTT) | Sigma | D9163 | |
| Trypan Blue (0.4 % solution) | Sigma | T8154 | |
| Paraformaldehyde | Sigma | P6148 | |
| Triton X-100 | Sigma | X100 | |
| Fetal bovine serum (FBS) | GIBCO | 10437-028 | |
| Monoclonal antibody IV.3 | Medarex (Annandale, NJ) | 025-1 | Human-specific anti-FcRII (CD32) |
| Monoclonal antibody 3G8 | Medarex (Annandale, NJ) | 028-2 | Human-specific anti-FcRIII (CD16) |
| Monoclonal antibody TS2/16 | Dana Farber Cancer Research Institute (Boston, MA) | Donated by Dr. Martin Hemler | Human-specific anti-β1 integrin (CD29) |
| Monoclonal antibody IB4 | University of California, San Francisco | Donated by Dr. Eric J. Brown | Human-specific anti-β2 integrin (CD18) |
| F(ab')2 goat anti-mouse IgG | Cappel (Aurora, OH) | 55468 | |
| FITC-conjugated F(ab')2 goat anti-mouse IgG | Cappel (Aurora, OH) | 55522 | |
| FITC-conjugated F(ab')2 goat anti-rabbit IgG | Cappel (Aurora, OH) | 55665 | |
| Anti-NF-κB p50 | Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA) | sc-114 | Rabbit polyclonal antibody |
| Anti-NF-κB p65 | Santa Cruz Biotechnology (Santa Cruz, CA) | sc-109 | Rabbit polyclonal antibody |
| EQUIPMENT | |||
| 15-ml centrifuge tube | Corning | 430791 | |
| 50-ml centrifuge tube | Corning | 430291 | |
| Centrifuge, Sorvall Tabletop | Dupont Instruments | RT 6000D | |
| pH-meter | Corning | 340 | |
| Pipetman pipette P-20 | Gilson | F123600 | |
| Pipetman pipette P-200 | Gilson | F123601 | |
| Pipetman pipette P-1000 | Gilson | F123602 | |
| Hemocytometer | Fisher Scientific | 0267110 | |
| Microscope | Nikon | Eclipse E600 | |
| Inverted microscope | Nikon | TMS | |
| Water Bath Incubator | Fisher Scientific | 2IS-M | |
| Microcentrifuge | Eppendorf | 5414C | |
| Microcentrifuge | Eppendorf | 5418 | |
| Flow Cytometer | Becton Dickinson (Franklin Lakes, NJ) | FACScalibur | |
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