Summary

Florojenik RNA Aptamers için In Vitro ve Hücresel Turn-on Kinetiğinin Belirlenmesi

Published: August 09, 2022
doi:

Summary

Protokol, florojenik RNA aptamers Ispanak2 ve Brokolinin kinetiğini belirlemek için iki yöntem sunar. İlk yöntem, florojenik aptamer kinetiğinin in vitro olarak bir plaka okuyucu ile nasıl ölçüleceğini açıklarken, ikinci yöntem hücrelerdeki florojenik aptamer kinetiğinin akış sitometrisi ile ölçülmesini detaylandırır.

Abstract

Florojenik RNA aptamerleri, RNA’ları etiketlemek ve görselleştirmek, gen ekspresyonu hakkında rapor vermek ve metabolitlerin ve sinyal moleküllerinin seviyelerini tespit eden floresan biyosensörleri aktive etmek için canlı hücrelere uygulanmıştır. Bu sistemlerin her birindeki dinamik değişiklikleri incelemek için, gerçek zamanlı ölçümlerin elde edilmesi arzu edilir, ancak ölçümlerin doğruluğu, florojenik reaksiyonun kinetiğinin örnekleme frekansından daha hızlı olmasına bağlıdır. Burada, sırasıyla bir numune enjektörü ve bir akış sitometresi ile donatılmış bir plaka okuyucu kullanarak florojenik RNA aptamers için in vitro ve hücresel açma kinetiğini belirleme yöntemlerini açıklıyoruz. Ispanak2 ve Brokoli aptamerlerinin floresan aktivasyonu için in vitro kinetiğin iki fazlı ilişki reaksiyonları olarak modellenebileceğini ve sırasıyla 0.56 s-1 ve 0.35 s-1’lik farklı hızlı faz hızı sabitlerine sahip olduğunu gösteriyoruz. Ek olarak, Escherichia coli’deki Ispanak2’nin floresan aktivasyonu için hücresel kinetiğin, Gram-negatif bakterilere boya difüzyonu ile daha da sınırlı olduğunu, dakika zaman ölçeğinde doğru örnekleme sıklığını sağlamak için hala yeterince hızlı olduğunu gösteriyoruz. Floresan aktivasyon kinetiğini analiz etmek için kullanılan bu yöntemler, geliştirilen diğer florojenik RNA aptamerlerine uygulanabilir.

Introduction

Florojenik reaksiyonlar, floresan sinyali üreten kimyasal reaksiyonlardır. Florojenik RNA aptamerler tipik olarak floresan kuantum verimini arttırmak için küçük bir molekül boyasını bağlayarak bu işlevi yerine getirir (Şekil 1A)1. Farklı florojenik RNA aptamer sistemleri geliştirilmiştir ve spesifik RNA aptamer dizilerinden ve buna karşılık gelen boya ligandlarından oluşur1. Florojenik RNA aptamerleri, mRNA’ların ve kodlamayan RNA’ların canlı hücre görüntülemesini sağlayan floresan etiketler olarak RNA transkriptlerine eklenmiştir 2,3,4. Ayrıca, raporlama fonksiyonu RNA seviyesi5,6 olması dışında, yeşil floresan proteininin (GFP) muhabir olarak kullanılmasına benzer şekilde, gen ekspresyonunun floresan raporlayıcıları olarak promotör dizilerinden sonra yerleştirilmişlerdir. Son olarak, florojenik RNA aptamerleri, belirli bir küçük moleküle yanıt olarak florojenik reaksiyonu tetiklemek için tasarlanmış RNA bazlı floresan biyosensörlere dahil edilmiştir. RNA bazlı floresan biyosensörler, çeşitli floresan olmayan metabolitlerin ve sinyal molekülleri 7,8,9,10,11’in canlı hücre görüntülemesi için geliştirilmiştir.

RNA lokalizasyonu, gen ekspresyonu ve küçük molekül sinyallerindeki dinamik değişiklikleri görselleştirmek için florojenik RNA aptamerlerinin geliştirilmesine artan ilgi vardır. Bu uygulamaların her biri için, gerçek zamanlı ölçümlerin elde edilmesi arzu edilir, ancak ölçümlerin doğruluğu, florojenik reaksiyonun kinetiğinin örnekleme frekansından daha hızlı olmasına bağlıdır. Burada, florojenik RNA aptamers Ispanak2 12 ve Brokoli13 için in vitro kinetiği bir örnek enjektör ile donatılmış bir plaka okuyucu kullanarak belirlemek ve bir akış sitometresi kullanarak Escherichia coli’de eksprese edilen Ispanak2 için hücresel açılma kinetiğini belirlemek için yöntemler açıklanmaktadır. Bu iki RNA aptamer seçildi çünkü RNA lokalizasyonu 2,3,4’ü incelemek için uygulandılar, muhabirler 5,6 ve biyosensörler 7,8,9,10,11’de kullanıldılar ve karşılık gelen boya ligandları (DFHBI veya DFHBI-1T) ticari olarak temin edilebilir. Literatürde belirlenen in vitro özelliklerinin bir özeti, protokol gelişimini (örneğin, kullanılan dalga boyları ve boya konsantrasyonları) bildiren Tablo 1 4,13,14’te verilmiştir. Bu sonuçlar, RNA aptamerlerinden etkilenen florojenik reaksiyonların hızlı olduğunu ve istenen hücre biyolojik uygulamaları için doğru ölçümleri engellememesi gerektiğini göstermektedir.

Protocol

1. In vitro kinetik deneyi DNA şablonlarının PCR ile hazırlanmasıPCR reaksiyonlarını ayarlayın: PCR reaksiyonlarını hazırlamak için, aşağıdaki reaktifleri ince duvarlı bir PCR tüpünde birleştirin:33 μL çift damıtılmış su (ddH2O)Yüksek doğrulukta DNA polimeraz için 10 μL 5x tamponHer biri 2 mM’lik 5 μL deoksiribonükleozid trifosfat (dNTP)0,5 μL 40 μM ileri astar0,5 μL 40 μM ters astarDNA şablonunun 0,5 μL (1…

Representative Results

In vitro kinetikSentetik oligonükleotidler olarak satın alınan DNA şablonlarının ve primerlerinin dizileri Tablo 2’de, reaktif tarifleri ise Ek Dosya 1’de gösterilmiştir. PCR amplifikasyonu, sonraki in vitro transkripsiyon (IVT) reaksiyonu için gerekli olan T7 promotörü ile DNA şablonunun miktarını artırmak için kullanılır. Ek olarak, PCR amplifikasyonu aynı reaksiyonda iki amaç için kullanılabilir: primer uzan…

Discussion

In vitro kinetik deneyi için, aynı genel protokol, hem ligand bağlayıcı hem de florofor bağlayıcı alan8 içeren RNA tabanlı bir floresan biyosensörün in vitro kinetiğini ölçmek için değiştirilebilir. Bu durumda, RNA, ligand yanıt kinetiği elde etmek için ligand enjekte edildikten sonra ölçümlerden önce florofor ile inkübe edilmelidir. Replikalar arasında yüksek değişkenlik gözlenirse, her numunenin ölçümden önce 96 delikli plakada aynı süre bo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma MCH’YE aşağıdaki hibelerle desteklenmiştir: NSF-BSF 1815508 ve NIH R01 GM124589. MRM, eğitim hibesi NIH T32 GM122740 tarafından kısmen desteklenmiştir.

Materials

Agarose Thermo Fischer Scientific BP160500
Agarose gel electrophoresis equipment Thermo Fischer Scientific B1A-BP
Alpha D-(+)-lactose monohydrate Thermo Fischer Scientific 18-600-440
Amber 1.5 mL microcentrifuge tubes Thermo Fischer Scientific 22431021
Ammonium persulfate (APS) Sigma-Aldrich A3678
Ammonium sulfate ((NH4)2SO4) Sigma-Aldrich A4418
Attune NxT Flow cytometer Thermo Fischer Scientific A24861
Attune 1x Focusing Fluid Thermo Fischer Scientific A24904
Attune Shutdown Solution Thermo Fischer Scientific A24975
Attune Performance Tracking Beads Thermo Fischer Scientific 4449754
Attune Wash Solution Thermo Fischer Scientific  J24974
Boric acid Sigma-Aldrich B6768
Bromophenol blue Sigma-Aldrich B0126
Carbenicillin disodium salt Sigma-Aldrich C3416
Chlorine Bleach Amazon B07J6FJR8D
Corning Costar 96-well plate Daigger Scientific EF86610A
Culture Tubes, 12 mm x 75 mm, 5 mL with attached dual position cap Globe Scientific 05-402-31
DFHBI Sigma-Aldrich SML1627
DFHBI-1T Sigma-Aldrich SML2697
D-Glucose (anhydrous) Acros Organics AC410955000
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D8418
Dithiothreitol (DTT) Sigma-Aldrich DTT-RO
DNA loading dye New England Biolabs B7025S
DNA LoBind Tubes (2.0 mL) Eppendorf 22431048
dNTPs: dATP, dCTP, dGTP, dTTP New England Biolabs N0446S
EDTA, pH 8.0 Gibco, Life Technologies AM9260G
Ethanol (EtOH) Sigma-Aldrich E7023
Filter-tip micropipettor tips Thermo Fischer Scientific AM12635, AM12648, AM12655, AM12665
FlowJo Software BD Biosciences N/A FlowJo v10 Software
Fluorescent plate reader with heating control VWR 10014-924
Gel electrophoresis power supply Thermo Fischer Scientific EC3000XL2
Glycerol Sigma-Aldrich G5516
Glycogen AM95010 Thermo Fischer Scientific AM95010
GraphPad Prism Dotmatics N/A Analysis software from Academic Group License 
Heat block  Thomas Scientific 1159Z11
HEPES Sigma-Aldrich H-4034
Inorganic pyrophosphatase Sigma-Aldrich I1643-500UN
Low Molecular Weight DNA Ladder New England Biolabs N3233L Supplied with free vial of Gel Loading Dye, Purple (6x), no SDS (NEB #B7025).
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2) Sigma-Aldrich M2670
Magnesium sulfate (MgSO4) Fisher Scientific MFCD00011110
Microcentrifuge tubes (1.5 mL) Eppendorf 22363204
Microcentrifuge with temperature control Marshall Scientific EP-5415R
Micropipettors Gilson FA10001M, FA10003M, FA10005M, FA10006M
Micropipettor tips Sigma-Aldrich Z369004, AXYT200CR, AXYT1000CR
Millipore water filter with BioPak unit Sigma-Aldrich CDUFBI001, ZRQSVR3WW
Narrow micropipettor pipette tips DOT Scientific RN005R-LRS
PBS, 10x Thermo Fischer Scientific BP39920
PCR clean-up kit Qiagen 28181
PCR primers and templates Integrated DNA technologies
PCR thermocycler for thin-walled PCR tubes Bio-Rad 1851148
PCR thermocycler for 0.5 mL tubes Techne 5PRIME/C
pET31b-T7-Spinach2 Plasmid Addgene Plasmid #79783
Phusion High-Fidelity DNA polymerase  New England Biolabs M0530L Purchase of Phusion High-Fideldity Enzyme is supplied with 5x Phusion HF Buffer, 5x Phusion GC Buffer, and MgCl2 and DMSO solutions.
Polyacrylamide gel electrophoresis gel comb, C.B.S. Scientific C.B.S. Scientific VGC-1508
Polyacrylamide gel electrophoresis equipment C.B.S. Scientific ASG-250
Potassium chloride (KCl) Sigma-Aldrich P9333
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5655
Razor blades Genesee Scientific 38-101
rNTPs: ATP, CTP, GTP, UTP New England Biolabs N0450L
SDS Sigma-Aldrich L3771
Short wave UV light source Thermo Fischer Scientific 11758221
Sodium carbonate (Na2CO3) Sigma-Aldrich S7795
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich S7653
Sodium hydroxide (NaOH) Sigma-Aldrich S8045
Sodium phosphate dibasic, anhydrous Thermo Fischer Scientific S375-500
SoftMax Pro Molecular Devices N/A SoftMax Pro 6.5.1 (platereader software) obtained through Academic Group License
Sterile filter units Thermo Fischer Scientific 09-741-88
Sucrose Sigma-Aldrich S0389
SYBR Safe DNA gel stain Thermo Fischer Scientific S33102
TAE buffer for agarose gel electrophoresis Thermo Fischer Scientific AM9869
Tetramethylethylenediamine (TEMED) Sigma-Aldrich T9281
Tris base Sigma-Aldrich TRIS-RO
Tryptone (granulated) Thermo Fischer Scientific M0251S
T7 RNA polymerase New England Biolabs M0251S
Urea-PAGE Gel system  National Diagnostics EC-833
UV fluorescent TLC plate Sigma-Aldrich 1.05789.0001
UV/Vis spectrophotometer Thermo Fischer Scientific ND-8000-GL
Vortex mixer Thermo Fischer Scientific 2215415
Xylene cyanol Sigma-Aldrich X4126
Yeast Extract (Granulated) Thermo Fischer Scientific BP9727-2

References

  1. Su, Y., Hammond, M. C. RNA-based fluorescent biosensors for live cell imaging of small molecules and RNAs. Current Opinion in Biotechnology. 63, 157-166 (2020).
  2. Zhang, J., et al. Tandem spinach array for mRNA Imaging in living bacterial cells. Scientific Reports. 5, 17295 (2015).
  3. Wang, Z., et al. In spatial complementation of aptamer-mediated recognition enables live-cell imaging of native RNA transcripts in real time. Angewandte Chemie. 57 (4), 972-976 (2018).
  4. Strack, R. L., Disney, M. D., Jaffrey, S. R. A superfolding Spinach2 reveals the dynamic nature of trinucleotide repeat-containing RNA. Nature Methods. 10 (12), 1219-1224 (2013).
  5. Thavarajah, W., et al. Point-of-use detection of environmental fluoride via a cell-free riboswitch-based biosensor. ACS Synthetic Biology. 9 (1), 10-18 (2020).
  6. You, M., Litke, J. L., Jaffrey, S. R. Imaging metabolite dynamics in living cells using a Spinach-based riboswitch. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (21), 2756-2765 (2015).
  7. Kellenberger, C. A., Wilson, S. C., Sales-Lee, J., Hammond, M. C. RNA-based fluorescent biosensors for live cell imaging of second messengers cyclic di-GMP and cyclic AMP-GMP. Journal of the American Chemical Society. 135 (13), 4906-4909 (2013).
  8. Manna, S., Truong, J., Hammond, M. C. Guanidine biosensors enable comparison of cellular turn-on kinetics of riboswitch-based biosensor and reporter. ACS Synthetic Biology. 10 (3), 566-578 (2021).
  9. Bose, D., Su, Y., Marcus, A., Raulet, D. H., Hammond, M. C. An RNA-based fluorescent biosensor for high-throughput analysis of the cGAS-cGAMP-STING pathway. Cell Chemical Biology. 23 (12), 1539-1549 (2016).
  10. Wang, X. C., Wilson, S. C., Hammond, M. C. Next-generation RNA-based fluorescent biosensors enable anaerobic detection of cyclic di-GMP. Nucleic Acids Research. 44 (17), 139 (2016).
  11. Paige, J. S., Thinh, N. -. D., Wenjiao, S., Jaffrey, S. R. Fluorescence imaging of cellular metabolites with RNA. Science. 335 (6073), 1194 (2012).
  12. Paige, J. S., Wu, K. Y., Jaffrey, S. R. RNA mimics of green fluorescent protein. Science. 333 (6042), 642-646 (2011).
  13. Filonov, G. S., Moon, J. D., Svensen, N., Jaffrey, S. R. Broccoli: Rapid selection of an RNA mimic of green fluorescent protein by fluorescence-based selection and directed evolution. Journal of the American Chemical Society. 136 (46), 16299-16308 (2014).
  14. Song, W., Strack, R. L., Svensen, N., Jaffrey, S. R. Plug-and-play fluorophores extend the spectral properties of spinach. Journal of the American Chemical Society. 136 (4), 1198-1201 (2014).
  15. Sambrook, J., Fritsch, E., Maniatis, T. . Molecular Cloning: A Laboratory Manual. , (1989).
  16. Basch, H., Gadebusch, H. H. In vitro antimicrobial activity of dimethylsulfoxide. Applied Microbiology. 16 (12), 1953-1954 (1968).
  17. Kallansrud, G., Ward, B. A comparison of measured and calculated single- and double-stranded oligodeoxynucleotide extinction coefficients. Analytical Biochemistry. 236 (1), 134-138 (1996).
  18. Wilson, S. C., Cohen, D. T., Wang, X. C., Hammond, M. C. A neutral pH thermal hydrolysis method for quantification of structured RNAs. RNA. 20 (7), 1153-1160 (2014).
  19. Szatmári, D., et al. Intracellular ion concentrations and cation-dependent remodelling of bacterial MreB assemblies. Scientific Reports. 10, 12002 (2020).
  20. Boulos, L., Prévost, M., Barbeau, B., Coallier, J., Desjardins, R. LIVE/DEAD® BacLightTM: Application of a new rapid staining method for direct enumeration of viable and total bacteria in drinking water. Journal of Microbiological Methods. 37 (1), 77-86 (1999).
  21. Huang, H., et al. A G-quadruplex-containing RNA activates fluorescence in a GFP-like fluorophore. Nature Chemical Biology. 10 (8), 686-691 (2014).
  22. Jeng, S. C. Y., Chan, H. H. Y., Booy, E. P., McKenna, S. A., Unrau, P. J. Fluorophore ligand binding and complex stabilization of the RNA Mango and RNA Spinach aptamers. RNA. 22 (12), 1884-1892 (2016).
  23. Han, K. Y., Leslie, B. J., Fei, J., Zhang, J., Ha, T. Understanding the photophysics of the Spinach-DFHBI RNA aptamer-fluorogen complex to improve live-cell RNA imaging. Journal of the American Chemical Society. 135 (50), 19033-19038 (2013).
  24. Wang, P., et al. Photochemical properties of Spinach and its use in selective imaging. Chemical Science. 4 (7), 2865-2873 (2013).
  25. Dao, N. T., et al. Photophysics of DFHBI bound to RNA aptamer Baby Spinach. Scientific Reports. 11, 7356 (2021).

Play Video

Cite This Article
Mumbleau, M. M., Meyer, M. R., Hammond, M. C. Determination of In Vitro and Cellular Turn-on Kinetics for Fluorogenic RNA Aptamers. J. Vis. Exp. (186), e64367, doi:10.3791/64367 (2022).

View Video