Summary

Fabricación de la matriz extracelular de la lengua y reconstitución de células escamosas de lengua In Vitro

Published: June 20, 2018
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Summary

Aquí se muestra un método para la preparación de la matriz extracelular de la lengua (TEM) con descelularización eficiente. La temperatura puede utilizarse como andamios funcionales para la reconstrucción de un modelo de carcinoma de células escamosas (TSCC) lengua bajo condiciones de cultivo estático o agitada.

Abstract

Con el fin de construir un modelo eficaz y realista para lengua squamous cell carcinoma (TSCC) en vitro, los métodos fueron creados para producir decellularized lengua matriz extracelular (TEM) que proporciona funciones andamios para la construcción de TSCC. TEM proporciona un nicho en vitro para el crecimiento celular, diferenciación y migración celular. Las microestructuras de nativo matriz extracelular (ECM) y composiciones bioquímicas retenidos en la matriz de decellularized proporcionan nichos de tejidos específicos para el anclaje de las células. La fabricación de TEM puede ser realizada por digestión de desoxirribonucleasa (DNasa) acompañada de una seria de tratamiento orgánico o inorgánico. Este protocolo es fácil de operar y asegura alta eficiencia para la descelularización. El TEM demostró cytocompatibility favorable para las células TSCC bajo condiciones de cultivo estático o agitada, que permite la construcción del modelo TSCC. Un biorreactor hecho a sí mismo también fue utilizado para la persistente condición agitada para el cultivo celular. TSCC reconstruido usando TEM demostraron las características y propiedades que se asemejan a la histopatología clínica de TSCC, sugiriendo el potencial en investigación TSCC.

Introduction

La lengua tiene varias funciones importantes, tales como deglución, articulación y degustación. Así, el deterioro de la función de la lengua tiene gran impacto en la calidad de vida de pacientes1. La neoplasia más frecuente en la cavidad bucal es lengüeta carcinoma de célula squamous (TSCC), que generalmente ocurre en personas que beben alcohol o fuman tabaco2.

En los últimos años, se ha logrado poco progreso en la investigación fundamental de TSCC. La falta de investigación eficiente en vitro modelos restos para ser uno de los mayores problemas. Por lo tanto, la matriz extracelular (ECM) resulta para ser una solución potencial. Desde ECM es una estructura de red compleja compuesta por componentes de la matriz altamente organizados, materiales del andamio con un ECM-como la estructura y composición sería competentes para la investigación del cáncer. ECM decellularized perfectamente puede proporcionar el nicho de las células desde el mismo origen en vitro, que resulta para ser la más importante ventaja de ECM.

ECM puede conservarse con componentes celulares de los tejidos a través de la descelularización mediante detergentes y enzimas. Varios componentes de la ECM, incluyendo colágeno, fibronectina y laminina en la matriz de decellularized proporcionan un microambiente natural-tejido-como de células cultivadas, promover la supervivencia, proliferación y diferenciación de las células3. Además, la inmunogenicidad para el trasplante se puede reducir a un mínimo con la ausencia de componentes celulares en ECM.

Hasta ahora, métodos de fabricación para ECM decellularized se han ensayado en diferentes tejidos y órganos, como corazón4,5,6,7, hígado8,9,10 ,11, pulmón12,13,14,15,16,17y18,de riñón19 , 20. sin embargo, se ha encontrado ninguna investigación relevante en trabajos similares en la lengua al mejor de nuestro conocimiento.

En este estudio, matriz extracelular de la lengua decellularized (TEM) se fabricó eficientemente y barato por una serie de tratamiento físico, químico y enzimático. Entonces la temperatura solía recapitular TSCC en vitro, mostrando una simulación adecuada para el desarrollo y comportamiento TSCC. TEM tiene buena biocompatibilidad, así como la capacidad de guiar a las células hacia el nicho de tejidos específicos, que indica que TEM puede tener gran potencial en TSCC investigación3. El protocolo que se muestra a continuación proporciona una opción para investigadores estudiando en patogenesia o terapias clínicas de TSCC.

Protocol

Animal todo el trabajo fue realizado de acuerdo con la ley de bienestar animal, las pautas y aprobado por institucional Animal cuidado y uso, Universidad de Yat-sensor del sol. 1. preparación de TEM Ejecutar ratones por dislocación cervical y retire las lenguas utilizando pinzas y tijeras quirúrgicas estériles. Sumerja las lenguas en etanol al 75% durante 3 minutos, luego poner cada lengua en 1,5 mL tubo Eppendorf (EP) con 1 mL de fosfato estéril de 10 mM de solución …

Representative Results

Este protocolo para la preparación de TEM resulta para ser eficiente y apropiado. El TEM demostró descelularización perfecto en comparación con los tejidos de la lengua materna. La eficacia de la descelularización fue confirmada por hematoxilina-eosina (HE) tinción (figura 1A-B). LO resultados de tinción desaparición completa reveladora de tinción nuclear en TEM (figura 1B). Por otra par…

Discussion

Un protocolo bien establecido para la fabricación de ECM decellularized debe conservar la composición nativa de ECM al eliminar componentes celulares en los tejidos casi totalmente21. A pesar de los protocolos actualmente divulgado de la descelularización que requieren de la perfusión a través de la vasculatura para quitar materiales celulares por transporte convectivo, agitación mecánica fue adoptada aquí, conocido como un método sencillo y barato tradicional22 <s…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores reconocen el apoyo de becas de investigación de la Fundación Nacional de Ciencias naturales de China (31371390), el programa del proyecto de desarrollo estatal de alta tecnología (2014AA020702) y el programa de Guangdong ciencia y tecnología (2016B030231001).

Materials

C57-BL/6J mice Sun Yat-sen University Laboratory Animal Center
Ethanol Guangzhou Chemical Reagent Factory HB15-GR-2.5L
Sodium chloride Sangon Biotech A501218
Potassium chloride Sangon Biotech A100395
Dibasic Sodium Phosphate Guangzhou Chemical Reagent Factory BE14-GR-500G
Potassium Phosphate Monobasic  Sangon Biotech A501211
1.5 mL EP tube Axygen MCT-150-A
Ultra-low temperature freezer  Thermo Fisher Scientific
3.5 cm cell culture dish Thermo Fisher Scientific 153066
6 cm cell culture dish Greiner 628160
Triton X-100 Sigma-Aldrich V900502
Calcium chloride Sigma-Aldrich 746495
Magnesium chloride Sigma-Aldrich 449164
DNase Sigma-Aldrich D5025
Magnesium sulphate Sangon Biotech A601988
Glucose Sigma-Aldrich 158968
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
Ampicillin Sigma-Aldrich A9393
Kanamycin Sigma-Aldrich PHR1487
Surgical suture Shanghai Jinhuan
250 mL wide-mouth bottle SHUNIU 1407
Magnetic stirrer AS ONE 1-4602-32
CO2 incubator SHEL LAB SCO5A
10 mL syringe Hunan Pingan
50 mL centrifuge tube Greiner 227270
Cal27 cell Chinese Academy of Science, Shanghai Cell Bank Tongue squamous cell carcinoma cell line
U2OS cell Chinese Academy of Science, Shanghai Cell Bank Human osteosarcoma cell line
DMEM/F12 Sigma-Aldrich D0547
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P5280
Hepes free acid BBI A600264
FBS Hyclone SH30084.03
4 °C fridge Haier
Water purifier ELGA
Hemocytometer BLAU 717805

Referenzen

  1. Elfring, T., Boliek, C. A., Winget, M., Paulsen, C., Seikaly, H., Rieger, J. M. The relationship between lingual and hypoglossal nerve function and quality of life in head and neck cancer. J. Oral Rehabil. 41, 133-140 (2014).
  2. Patel, S. C., et al. Increasing incidence of oral tongue squamous cell carcinoma in young white women, Age 18 to 44 Years. J. Clin. Oncol. 29, 1488-1494 (2011).
  3. Zhao, L., Huang, L., Yu, S., Zheng, J., Wang, H., Zhang, Y. Decellularized tongue tissue as an in vitro. model for studying tongue cancer and tongue regeneration. Acta Biomaterialia. 58, 122-135 (2017).
  4. Ng, S. L., Narayanan, K., Gao, S., Wan, A. C. Lineage restricted progenitors for the repopulation of decellularized heart. Biomaterials. 32, 7571-7580 (2011).
  5. Ott, H. C., et al. Perfusion-decellularized matrix: using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nat. Med. 14, 213-221 (2008).
  6. Remlinger, N. T., Wearden, P. D., Gilbert, T. W. Procedure for decellularization of porcine heart by retrograde coronary perfusion. J. Vis. Exp. (6), e50059 (2012).
  7. Wainwright, J. M., et al. Preparation of cardiac extracellular matrix from an intact porcine heart. Tissue Eng. Part C-ME. 16, 525-532 (2010).
  8. Baptista, P. M., Siddiqui, M. M., Lozier, G., Rodriguez, S. R., Atala, A., Soker, S. The use of whole organ decellularization for the generation of a vascularized liver organoid. Hepatology. 53, 604-617 (2011).
  9. Shupe, T., Williams, M., Brown, A., Willenberg, B., Petersen, B. E. Method for the decellularization of intact rat liver. Organogenesis. 6, 134-136 (2010).
  10. Soto-Gutierrez, A., et al. A whole-organ regenerative medicine approach for liver replacement. Tissue Eng. Part C-ME. 17, 677-686 (2011).
  11. Uygun, B. E., et al. Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix. Nat. Med. 16, 814-820 (2010).
  12. Bonvillain, R. W., et al. A nonhuman primate model of lung regeneration: detergent-mediated decellularization and initial in vitro recellularization with mesenchymal stem cells. Tissue Eng. Pt A. 18, 2437-2452 (2012).
  13. Daly, A. B., et al. Initial binding and recellularization of decellularized mouse lung scaffolds with bone marrow-derived mesenchymal stromal cells. Tissue Eng. Pt A. 18, 1-16 (2012).
  14. Ott, H. C., et al. Regeneration and orthotopic transplantation of a bioartificial lung. Nat. Med. 16, 927-933 (2010).
  15. Petersen, T. H., et al. Tissue-engineered lungs for in vivo implantation. Science. 329, 538-541 (2010).
  16. Price, A. P., England, K. A., Matson, A. M., Blazar, B. R., Panoskaltsis-Mortari, A. Development of a decellularized lung bioreactor system for bioengineering the lung: the matrix reloaded. Tissue Eng. Pt A. 16, 2581-2591 (2010).
  17. Wallis, J. M., et al. Comparative assessment of detergent-based protocols for mouse lung de-cellularization and re-cellularization. Tissue Eng. Part C-ME. 18, 420-432 (2012).
  18. Ross, E. A., et al. Embryonic stem cells proliferate and differentiate when seeded into kidney scaffolds. J. Am. Soc. Nephrol. 20, 2338-2347 (2009).
  19. Song, J. J., Guyette, J. P., Gilpin, S., Gonzalez, G., Vacanti, J. P., Ott, H. C. Regeneration and experimental orthotopic transplantation of a bioengineered kidney. Nat. Med. 19, 646-651 (2013).
  20. Sullivan, D. C., et al. Decellularization methods of porcine kidneys for whole organ engineering using a high-throughput system. Biomaterials. 33, 7756-7764 (2012).
  21. Soto-Gutierrez, A., Wertheim, J. A., Ott, H. C., Gilbert, T. W. Perspectives on whole-organ assembly: moving toward transplantation on demand. J. Clin. Invest. 122, 3817-3823 (2012).
  22. Song, J. J., Ott, H. C. Organ engineering based on decellularized matrix scaffolds. Trends Mol. Med. 17, 424-432 (2011).
  23. Badylak, S. F., Taylor, D., Uygun, K. Whole-organ tissue engineering: decellularization and recellularization of three-dimensional matrix scaffolds. Annu. Rev. Biomed. Eng. 13, 27-53 (2011).
  24. Shamis, Y., et al. Organ-specific scaffolds for in vitro expansion, differentiation, and organization of primary lung cells. Tissue Eng. Part C-ME. 17, 861-870 (2011).
  25. Nakayama, K. H., Batchelder, C. A., Lee, C. I., Tarantal, A. F. Decellularized rhesus monkey kidney as a three-dimensional scaffold for renal tissue engineering. Tissue Eng. Pt A. 16, 2207-2216 (2010).
  26. Cortiella, J., et al. Influence of acellular natural lung matrix on murine embryonic stem cell differentiation and tissue formation. Tissue Eng. Pt A. 16, 2565-2580 (2010).
check_url/de/57235?article_type=t

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Diesen Artikel zitieren
Yao, Y., Lin, W., Zhang, Y. Fabrication of Tongue Extracellular Matrix and Reconstitution of Tongue Squamous Cell Carcinoma In Vitro. J. Vis. Exp. (136), e57235, doi:10.3791/57235 (2018).

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