JoVE Journal > Biology
Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Ergebnisse
Discussion
Offenlegungen
Acknowledgements
Materials
Referenzen
Automatische Übersetzung
Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.
Biologie

تقييم المخاطر الكيميائية الزراعية لملكات نحل العسل المتزاوج

Published: March 03, 2021
doi:
10.3791/62316
, , ,
1Invasive Species and Pollinator Health Research Unit,USDA-ARS, 2Carl R. Woese Institute for Genomic Biology,University of Illinois at Urbana-Champaign, 3Neuroscience Program,University of Illinois at Urbana-Champaign, 4Department of Entomology,University of Illinois at Urbana-Champaign

Summary

تم تطوير هذا البروتوكول لتعزيز فهم كيفية تأثير المواد الكيميائية الزراعية على نحل العسل(Apis mellifera)الاستنساخ من خلال إنشاء طرق لتعريف ملكات نحل العسل والقائمين على رعايتهم العاملين بالمواد الكيميائية الزراعية في بيئة مختبرية خاضعة للرقابة ومراقبة استجاباتهم ذات الصلة بعناية.

Abstract

تعتمد استراتيجيات تقييم المخاطر الحالية لنحل العسل بشكل كبير على الاختبارات المخبرية التي أجريت على النحل العامل البالغ أو غير الناضج ، ولكن هذه الأساليب قد لا تلتقط بدقة آثار التعرض الكيميائي الزراعي على ملكات نحل العسل. باعتبارها المنتج الوحيد للبويضات المخصبة داخل مستعمرة نحل العسل ، يمكن القول إن الملكة هي أهم عضو واحد في وحدة مستعمرة تعمل. ولذلك، ينبغي اعتبار فهم كيفية تأثير المواد الكيميائية الزراعية على صحة الملكة وإنتاجيتها جانبا حاسما من جوانب تقييم مخاطر مبيدات الآفات. هنا ، يتم تقديم طريقة مكيفة لفضح ملكات نحل العسل والحاضرات الملكة العاملات إلى الضغوطات الكيميائية الزراعية التي تدار من خلال نظام غذائي للعمال ، تليها تتبع إنتاج البيض في المختبر وتقييم أول انهيار نجمي باستخدام قفص متخصص ، يشار إليه باسم قفص مراقبة الملكة. ولتوضيح الاستخدام المقصود للطريقة، تم رصد نتائج تجربة تم فيها تغذية مرافقات الملكة العاملات بنظام غذائي يحتوي على جرعات دون مميتة من إيميداكلوبريد وتم رصد الآثار على الملكات.

Introduction

وبسبب الطلب العالمي المتزايد على المنتجات الزراعية، تتطلب الممارسات الزراعية الحديثة في كثير من الأحيان استخدام المواد الكيميائية الزراعية لمكافحة العديد من الآفات المعروفة بخفض أو إلحاق الضرر بمحاصيلالمحصول 1. وفي الوقت نفسه، يعتمد مزارعو العديد من محاصيل الفواكه والخضروات والجوز على خدمات التلقيح التي تقدمها مستعمرات نحل العسل التجارية لضمان وفرة غلة المحاصيل2. قد تؤدي هذه الممارسات إلى تعرض الملقحات ، بما في ذلك نحل العسل(Apis mellifera)، لمستويات ضارة من بقايا المبيداتالحشرية 3. في الوقت نفسه ، فإن الوجود الواسع الانتشار لتفشي عث Varroa المدمر الطفيلي في مستعمرات نحل العسل يتطلب في كثير من الأحيان مربي النحل لعلاج خلايا النحل بمبيدات الميتيسيدس ، والتي قد تمارس أيضا آثارا سلبية على صحة وطول عمر المستعمرة4و5و6. للحد من الآثار الضارة للمنتجات الكيميائية الزراعية والتخفيف من حدتها ، من الضروري تقييم سلامتها بشكل كامل لنحل العسل قبل تنفيذها حتى يمكن تقديم توصيات لاستخدامها لحماية الحشرات المفيدة.

وتعتمد وكالة حماية البيئة حاليا على استراتيجية تقييم المخاطر المتدرجة للتعرض لمبيدات النحل العسلية، والتي تنطوي على اختبارات مخبرية على النحل البالغ وأحيانا يرقات نحل العسل7. وإذا فشلت الاختبارات المختبرية من المستوى الأدنى في التخفيف من المخاوف من السمية، فقد يوصى بإجراء اختبارات ميدانية وشبه ميدانية من المستوى الأعلى. في حين أن هذه الاختبارات المخبرية توفر نظرة قيمة على الآثار المحتملة للكيماويات الزراعية على طول عمر العامل ، إلا أنها ليست بالضرورة تنبؤية بآثارها على الملكات ، والتي تختلف بشكل كبير عن العمال بيولوجيا8 و9سلوكيا. وعلاوة على ذلك ، هناك العديد من الآثار المحتملة للكيماويات الزراعية على الحشرات بعد الوفيات ، والتي يمكن أن يكون لها عواقب كبيرة على الحشرات الاجتماعية التي تعتمد على السلوكيات المنسقة لتعمل كوحدة مستعمرة10،11.

على الرغم من أن معدل الوفيات هو التأثير الأكثر شيوعا من المبيدات الكيميائية الزراعية12، يمكن أن يكون لهذه المنتجات مجموعة واسعة من الآثار على كل من المفصليات المستهدفة وغير المستهدفة بما في ذلك السلوك المعدل13،14،15،16، الصد أو الانجذاب17،18،19، التغيرات في أنماط التغذية20،21،22 ، وزيد أو انخفض البراز20،21،22،23،24،25. بالنسبة للحشرات الاجتماعية ، يمكن لهذه الآثار أن تعطل بشكل منهجي تفاعلات المستعمرة ووظائفها11. ومن بين هذه الوظائف، قد يكون التكاثر، الذي يعتمد بشكل كبير على ملكة واحدة تضع البيض تدعمه بقية وحدة المستعمرة9،عرضة بشكل خاص للاضطرابات بسبب التعرض لمبيدات الآفات.

وقد أظهرت الدراسات التي أجريت على الملكات غير ناضجة أن التعرض التنموي لمبيدات الميتيسيدات يمكن أن تؤثر على سلوك الملكة الكبار، وعلم وظائف الأعضاء، والبقاء على قيد الحياة26،27. وبالمثل، أظهرت الدراسات باستخدام مستعمرات كاملة أو مخفضة الحجم أن المواد الكيميائية الزراعية يمكن أن تؤثر على ملكات نحل العسل الكبار عن طريق تقليل نجاح التزاوج28، وتقليل oviposition29، وتقليل صلاحية البيضالمنتجة 25،30،31. وقد كان من الصعب في السابق ملاحظة هذه الظواهر دون استخدام مستعمرات كاملة، ويرجع ذلك إلى حد كبير إلى عدم وجود أساليب مختبرية متاحة. ومع ذلك ، تم مؤخرا طريقة لدراسة الملكة oviposition تحت ظروف مختبرية تخضع لرقابة مشددة باستخدام أقفاص مراقبة الملكة (QMC)32 تكييفها لدراسة آثار المواد الكيميائية الزراعية على البراز الملكة33. هنا، يتم وصف هذه التقنيات بالتفصيل جنبا إلى جنب مع أساليب إضافية لقياس وتتبع استهلاك النظام الغذائي للعمال في QMCs.

هذه الأساليب هي أكثر فائدة من التجارب التي تتطلب مستعمرات كاملة الحجم لأنها تسمح لإدارة جرعات دقيقة من المواد الكيميائية الزراعية لعدد أقل بكثير من العمال بالنسبة لعشرات الآلاف الموجودة عادة داخل مستعمرة34، والتي ثم توفير الملكة. تعكس تقنية التعرض هذه التعرض غير المباشر الذي ستختبره الملكات في سيناريوهات العالم الحقيقي لأن الملكات داخل المستعمرة لا يطعمن أنفسهن ويعتمدن على العمال لتوفير النظام الغذائي9لهم. وبالمثل، الملكات لا تترك عادة الخلية إلا أثناء استنساخ مستعمرة (يحتشدون) لرحلات التزاوج35. يمكن شراء ملكات نحل العسل المتزاوج من مربي الملكة التجارية وشحنها بين عشية وضحاها. عادة، مربي الملكة بيع الملكات مباشرة بعد التأكد من أنها بدأت في وضع البيض، والذي يؤخذ كمؤشر على التزاوج الناجح. إذا كانت هناك حاجة إلى معلومات أكثر دقة عن عمر الملكة أو الصلة، قد يتشاور الباحثون مع مربي الملكة قبل وضع أمر.

تسمح مراكز إدارة الجودة بالمراقبة الدقيقة والتحديد الكمي لملكة نحل العسل ومعدلات فقس البيض32،33، مما ينتج عنه بيانات قيمة تتعلق بآثار التعرض الكيميائي الزراعي على براز الملكة. تصف النتائج التمثيلية المعروضة هنا تجربة تحدد كميا الثبات واستهلاك النظام الغذائي وقابلية الجنين للحياة في مراكز إدارة الجودة تحت التعرض المزمن للتركيزات الميدانية ذات الصلة بمبيد الآفات النيونيكوتينويد النينيكوتيني الجهازي imidacloprid36. وبمجرد تطبيقها، imidacloprid translocates لزرع الأنسجة37،وقد تم الكشف عن بقايا حبوب اللقاح والرحيق من العديد من النباتات الملقحات النحل38،39،40. التعرض لimidacloprid يمكن أن يكون لها مجموعة واسعة من الآثار الضارة على نحل العسل بما في ذلك ضعف أداء الأعلاف16, ضعف وظيفة المناعة41, وانخفاض معدلات التوسع مستعمرة والبقاء على قيد الحياة42,43. هنا، تم اختيار إيميداكلوبريد للاستخدام كمادة اختبار لأن التجارب الميدانية أظهرت أنه يمكن أن تؤثر على ملكة نحل العسل oviposition29

Protocol

1. تجميع مركز قطر الطبي تجميع QMCs من أجزاء(الشكل 1A)مع لوحة واحدة زرع البيض (ELP) إدراجها كما هو مبين في الشكل 1B. لا تقم بإضافة أنابيب التغذية إلا بعد إضافة العمال إلى القفص. تغطية مؤقتا 4 ثقوب التغذية مع الشريط الصف المختبري. أدخل استبعاد الملكة وباب غر?…

Representative Results

تم رصد إنتاج البيض في مراكز إدارة الجودة التي تم تجميعها وصيانتها على النحو المبين أعلاه مع ملاحظات يومية مرة واحدة لإنتاج البيض و 15 قفصا لكل مجموعة علاج. تم شراء الملكات المتزاوجات حديثا من مخزون Carniolan في المقام الأول وشحنها بين عشية وضحاها من مربي الملكة ، وتم الحصول على عمال نحل العسل من…

Discussion

يمكن أن تتأثر برازية الحشرات الانفرادية الأنثوية وكذلك الملكات في مستعمرات الحشرات eusocial بالضغوط اللاأحيائية مثل المواد الكيميائية الزراعية25و28و29و30و33. في نحل العسل ، قد تكون آثار المواد الكيميائية ?…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

شكرا للدكتورة إيمي كاش أحمد، وناثانايل ج. بيتش، وأليسون ل. سانكي على مساعدتهم في تنفيذ هذا العمل. ذكر الأسماء التجارية أو المنتجات التجارية في هذا المنشور هو فقط لغرض تقديم معلومات محددة ولا يعني توصية أو تأييد من قبل وزارة الزراعة الأمريكية. وزارة الزراعة هي مزود تكافؤ الفرص وصاحب العمل. تم دعم هذا البحث بمنحة من وكالة مشاريع البحوث المتقدمة الدفاعية # HR0011-16-2-0019 لجين روبنسون وهويمين تشاو ، ومشروع وزارة الزراعة الأمريكية 2030-21000-001-00-D ، وتجربة أبحاث اللدونة فينوتيبيك لطلاب كلية المجتمع في جامعة إلينوي في أوربانا شامبين.

Materials

Fluon BioQuip, Rancho Dominguez, CA 2871A
Honey bee queens Olivarez Honey Bees, Orland, CA
Imidacloprid Sigma-Aldritch, St. Louis, MO 37894
MegaBee Powder MegaBee, San Dieago, CA
Microcentrifuge tubes 2 mL ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 02-682-004
Needles 20 gauge W. W. Grainger, Lake Forest, IL 5FVK4
Potassium Sulfate Sigma-Aldritch, St. Louis, MO P0772
Queen Monitoring Cages University of Illinois Urbana-Champaign Patent application number: 20190350175
Sucrose Sigma-Aldritch, St. Louis, MO S8501
Universal Microplate Lids ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 5500
DOWNLOAD MATERIALS LIST

Referenzen

  1. Hedlund, J., Longo, S. B., York, R. Agriculture, pesticide use, and economic development: A global examination (1990-2014). Rural Sociology. 85 (2), 519-544 (2020).
  2. Calderone, N. W. Insect pollinated crops, insect pollinators and US agriculture: Trend analysis of aggregate data for the period 1992-2009. PLOS ONE. 7 (5), 37235 (2012).
  3. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity – USA. Apidologie. 41 (3), 312-331 (2010).
  4. Walsh, E. M., Sweet, S., Knap, A., Ing, N., Rangel, J. Queen honey bee (Apis mellifera) pheromone and reproductive behavior are affected by pesticide exposure during development. Behavioral Ecology and Sociobiology. 74 (3), 33 (2020).
  5. Zhu, W., Schmehl, D. R., Mullin, C. A., Frazier, J. L. Four Common Pesticides, Their Mixtures and a Formulation Solvent in the Hive Environment Have High Oral Toxicity to Honey Bee Larvae. PLoS ONE. 9 (1), 77547 (2014).
  6. Fisher, A., Rangel, J. Exposure to pesticides during development negatively affects honey bee (Apis mellifera) drone sperm viability. PLoS ONE. 13 (12), 0208630 (2018).
  7. How we assess risks to pollinators. US EPA Available from: https://www.epa.gov/pollinator-protection/how-we-assess-risk-polliators (2013)
  8. Snodgrass, R. E. . Anatomy of the honey bee. , (1956).
  9. Allen, M. D. The honeybee queen and her attendants. Animal Behaviour. 8 (3), 201-208 (1960).
  10. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The superorganism: The beauty, elegance, and strangeness of insect societies. , (2009).
  11. Berenbaum, M. R., Liao, L. -. H. Honey bees and environmental stress: Toxicologic pathology of a superorganism. Toxicologic Pathology. 47 (8), 1076-1081 (2019).
  12. Yu, S. J. . The toxicology and biochemistry of insecticides. , (2014).
  13. Ciarlo, T. J., Mullin, C. A., Frazier, J. L., Schmehl, D. R. Learning impairment in honey bees caused by agricultural spray adjuvants. PloS One. 7 (7), 40848 (2012).
  14. Fourrier, J., et al. Larval exposure to the juvenile hormone analog pyriproxyfen disrupts acceptance of and social behavior performance in adult honeybees. PLoS ONE. 10 (7), (2015).
  15. Morfin, N., Goodwin, P. H., Correa-Benitez, A., Guzman-Novoa, E. Sublethal exposure to clothianidin during the larval stage causes long-term impairment of hygienic and foraging behaviours of honey bees. Apidologie. 50 (5), 595-605 (2019).
  16. Colin, T., Meikle, W. G., Wu, X., Barron, A. B. Traces of a neonicotinoid induce precocious foraging and reduce foraging performance in honey bees. Environmental Science & Technology. 53 (14), 8252-8261 (2019).
  17. Liao, L. H., Wu, W. Y., Berenbaum, M. R. Behavioral responses of honey bees (Apis mellifera) to natural and synthetic xenobiotics in food. Scientific Reports. 7 (1), 1-8 (2017).
  18. Kessler, S. C., et al. Bees prefer foods containing neonicotinoid pesticides. Nature. 521 (7550), 74-76 (2015).
  19. Metcalf, R. L., Luckmann, W. H. . Introduction to Insect Pest Management. , (1994).
  20. Duncan, J. Post-treatment effects of sublethal doses of dieldrin on the mosquito Aedes aegypti L. Annals of Applied Biology. 52 (1), 1-6 (1963).
  21. Haynes, K. F. Sublethal effects of neurotoxic insecticides on insect behavior. Annual Review of Entomology. 33 (1), 149-168 (1988).
  22. James, D. G., Price, T. S. Fecundity in twospotted spider mite (Acari: Tetranychidae) is increased by direct and systemic exposure to imidacloprid. Journal of Economic Entomology. 95 (4), 729-732 (2002).
  23. Hodjat, S. H. Effects of sublethal doses of insecticides and of diet and crowding on Dysdercus fasciatus Sign. (Hem., Pyrrhocoridae). Bulletin of Entomological Research. 60 (3), 367-378 (1971).
  24. Feng, W. B., Bong, L. J., Dai, S. M., Neoh, K. B. Effect of imidacloprid exposure on life history traits in the agricultural generalist predator Paederus beetle: Lack of fitness cost but strong hormetic effect and skewed sex ratio. Ecotoxicology and Environmental Safety. 174, 390-400 (2019).
  25. Milchreit, K., Ruhnke, H., Wegener, J., Bienefeld, K. Effects of an insect growth regulator and a solvent on honeybee (Apis mellifera L.) brood development and queen viability. Ecotoxicology. 25 (3), 530-537 (2016).
  26. Haarmann, T., Spivak, M., Weaver, D., Weaver, B., Glenn, T. Effects of fluvalinate and coumaphos on queen honey bees (Hymenoptera: Apidae) in two commercial queen rearing operations. Journal of Economic Entomology. 95 (1), 28-35 (2002).
  27. Pettis, J. S., Collins, A. M., Wilbanks, R., Feldlaufer, M. F. Effects of coumaphos on queen rearing in the honey bee, Apis mellifera. Apidologie. 35 (6), 605-610 (2004).
  28. Thompson, H. M., Wilkins, S., Battersby, A. H., Waite, R. J., Wilkinson, D. The effects of four insect growth-regulating (IGR) insecticides on honeybee (Apis mellifera L.) colony development, queen rearing and drone sperm production. Ecotoxicology. 14 (7), 757-769 (2005).
  29. Wu-Smart, J., Spivak, M. Sub-lethal effects of dietary neonicotinoid insecticide exposure on honey bee queen fecundity and colony development. Scientific Reports. 6 (1), 1-11 (2016).
  30. Chen, Y. W., Wu, P. S., Yang, E. C., Nai, Y. S., Huang, Z. Y. The impact of pyriproxyfen on the development of honey bee (Apis mellifera L.) colony in field. Journal of Asia-Pacific Entomology. 19 (3), 589-594 (2016).
  31. Fine, J. D., Mullin, C. A., Frazier, M. T., Reynolds, R. D. Field residues and effects of the insect growth regulator novaluron and its major co-formulant n-methyl-2-pyrrolidone on honey bee reproduction and development. Journal of Economic Entomology. 110 (5), 1993-2001 (2017).
  32. Fine, J. D., et al. Quantifying the effects of pollen nutrition on honey bee queen egg laying with a new laboratory system. PLoS ONE. 13 (9), 0203444 (2018).
  33. Fine, J. D. Evaluation and comparison of the effects of three insect growth regulators on honey bee queen oviposition and egg eclosion. Ecotoxicology and Environmental Safety. 205, 111142 (2020).
  34. The Colony and Its Organization. MAAREC – Mid Atlantic Apiculture Research & Extension Consortium Available from: https://agdev.anr.udel.edu/maarec/honey-bee-biology/the-colony-and-its-organization/ (2020)
  35. Winston, M. L. . The biology of the honey bee. , (1991).
  36. Mullins, J. W. Pest control with enhanced environmental safety. Imidacloprid. 524, 183-198 (1993).
  37. Sur, R., Stork, A. Uptake, translocation and metabolism of imidacloprid in plants. Bulletin of Insectology. 56 (1), 35-40 (2003).
  38. Dively, G. P., Kamel, A. Insecticide residues in pollen and nectar of a cucurbit crop and their potential exposure to pollinators. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 60 (18), 4449-4456 (2012).
  39. Goulson, D. Review: An overview of the environmental risks posed by neonicotinoid insecticides. Journal of Applied Ecology. , 977-987 (2014).
  40. Krischik, V., Rogers, M., Gupta, G., Varshney, A. Soil-applied imidacloprid translocates to ornamental flowers and reduces survival of adult Coleomegilla maculata, Harmonia axyridis, and Hippodamia convergens lady beetles, and larval Danaus plexippus and Vanessa cardui butterflies. PLoS ONE. 10 (3), (2015).
  41. Prisco, G. D., et al. Neonicotinoid clothianidin adversely affects insect immunity and promotes replication of a viral pathogen in honey bees. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (46), 18466-18471 (2013).
  42. Dively, G. P., Embrey, M. S., Kamel, A., Hawthorne, D. J., Pettis, J. S. Assessment of chronic sublethal effects of imidacloprid on honey bee colony health. PLoS ONE. 10 (3), 01118748 (2015).
  43. Sandrock, C., Tanadini, M., Tanadini, L. G., Fauser-Misslin, A., Potts, S. G., Neumann, P. Impact of chronic neonicotinoid exposure on honeybee colony performance and queen supersedure. PLoS ONE. 9 (8), 103592 (2014).
  44. Brodschneider, R., Riessberger-Gallé, U., Crailsheim, K. Flight performance of artificially reared honeybees (Apis mellifera). Apidologie. 40 (4), 441-449 (2009).
  45. Harrison, J. M. Caste-specific changes in honeybee flight capacity. Physiological Zoology. 59 (2), 175-187 (1986).
  46. Mackensen, O. Effect of carbon dioxide on initial oviposition of artificially inseminated and virgin queen bees. Journal of Economic Entomology. 40 (3), 344-349 (1947).
  47. OECD. . OECD Test No. 245: Honey bee (Apis Mellifera L.), chronic oral toxicity test (10-Day Feeding), OECD guidelines for the testing of chemicals, section 2. , (2017).
  48. . ECOTOX Home Available from: https://cfpub.epa.gov/ecotox/ (2020)
  49. Collins, A. M. Variation in time of egg hatch by the honey bee, Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). Annals of the Entomological Society of America. 97 (1), 140-146 (2004).
  50. Santomauro, G., Engels, W. Sexing of newly hatched live larvae of the honey bee, Apis mellifera, allows the recognition of diploid drones. Apidologie. 33 (3), 283-288 (2002).
  51. Tang, W., Hu, Z., Muallem, H., Gulley, M. L. Quality assurance of RNA expression profiling in clinical laboratories. The Journal of Molecular Diagnostics JMD. 14 (1), 1-11 (2012).
  52. Henry, M., et al. Reconciling laboratory and field assessments of neonicotinoid toxicity to honeybees. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 282 (1819), (2015).
  53. Singaravelan, N., Nee’man, G., Inbar, M., Izhaki, I. Feeding responses of free-flying honeybees to secondary compounds mimicking floral nectars. Journal of Chemical Ecology. 31 (12), 2791-2804 (2005).
  54. Brown, L. A., Ihara, M., Buckingham, S. D., Matsuda, K., Sattelle, D. B. Neonicotinoid insecticides display partial and super agonist actions on native insect nicotinic acetylcholine receptors. Journal of Neurochemistry. 99 (2), 608-615 (2006).
  55. Dupuis, J. P., Gauthier, M., Raymond-Delpech, V. Expression patterns of nicotinic subunits α2, α7, α8, and β1 affect the kinetics and pharmacology of ACh-induced currents in adult bee olfactory neuropiles. Journal of Neurophysiology. 106 (4), 1604-1613 (2011).
  56. Crailsheim, K., et al. Pollen consumption and utilization in worker honeybees (Apis mellifera carnica): Dependence on individual age and function. Journal of Insect Physiology. 38 (6), 409-419 (1992).
  57. . The Merck Index Online – chemicals, drugs and biologicals Available from: https://www.rsc.org/merck-index (2020)
  58. Trostanetsky, A., Kostyukovsky, M. Note: Transovarial activity of the chitin synthesis inhibitor novaluron on egg hatch and subsequent development of larvae of Tribolium castaneum. Phytoparasitica. 36 (1), 38-41 (2008).
  59. Medina, P., Smagghe, G., Budia, F., del Estal, P., Tirry, L., Viñuela, E. Significance of penetration, excretion, and transovarial uptake to toxicity of three insect growth regulators in predatory lacewing adults. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 51 (2), 91-101 (2002).
  60. Kim, S. H. S., Wise, J. C., Gökçe, A., Whalon, M. E. Novaluron causes reduced egg hatch after treating adult codling moths, Cydia pomenella: Support for transovarial transfer. Journal of Insect Science. 11, (2011).
  61. Joseph, S. V. Transovarial effects of insect growth regulators on Stephanitis pyrioides (Hemiptera: Tingidae). Pest Management Science. 75 (8), 2182-2187 (2019).
  62. Tasei, J. N. Effects of insect growth regulators on honey bees and non-Apis bees. A review. Apidologie. 32 (6), 527-545 (2001).
  63. Haydak, M. H. Honey Bee Nutrition. Annual Review of Entomology. 15 (1), 143-156 (1970).
  64. Böhme, F., Bischoff, G., Zebitz, C. P. W., Rosenkranz, P., Wallner, K. From field to food-will pesticide-contaminated pollen diet lead to a contamination of royal jelly. Apidologie. 49 (1), 112-119 (2018).

Tags

Keywords: Agrochemical RiskHoneybee QueensQueen Monitoring CagesWorker BeesQueen ExposureQueen Egg-layingCarbon DioxideControlled ConditionsInvasive Species And Pollinator Health Research Unit
check_url/de/62316?article_type=t

Play Video
PDF
DOI
DOWNLOAD MATERIALS LIST
Diesen Artikel zitieren
Fine, J. D., Torres, K. M., Martin, J., Robinson, G. E. Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens. J. Vis. Exp. (169), e62316, doi:10.3791/62316 (2021).
Zitat herunterladen
Nachdrucke und Berechtigungen

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below

CAPTCHA Image
Play CAPTCHA Audio
Refresh Image