Summary

Beoordeling van agrochemisch risico voor gepaarde honingbijenkoninginnen

Published: March 03, 2021
doi:

Summary

Dit protocol is ontwikkeld om het begrip te vergroten van hoe agrochemicaliën de reproductie van honingbijen(Apis mellifera)beïnvloeden door methoden vast te stellen om honingbijenkoninginnen en hun werkverzorgers bloot te stellen aan agrochemicaliën in een gecontroleerde, laboratoriumomgeving en zorgvuldig hun relevante reacties te volgen.

Abstract

De huidige risicobeoordelingsstrategieën voor honingbijen zijn sterk afhankelijk van laboratoriumtests die worden uitgevoerd op volwassen of onvolwassen werkbijen, maar deze methoden kunnen de effecten van agrochemische blootstelling op honingbijenkoninginnen mogelijk niet nauwkeurig vastleggen. Als de enige producent van bevruchte eieren in een honingbijenkolonie, is de koningin misschien wel het belangrijkste afzonderlijke lid van een functionerende kolonie-eenheid. Daarom moet het begrijpen van hoe agrochemicaliën de gezondheid en productiviteit van koninginnen beïnvloeden, worden beschouwd als een cruciaal aspect van de risicobeoordeling van pesticiden. Hier wordt een aangepaste methode gepresenteerd om honingbijenkoninginnen en werkkoninginnen te blootstellen aan agrochemische stressoren toegediend via een werksterdieet, gevolgd door het volgen van de eiproductie in het laboratorium en het beoordelen van de eerste instar eclosie met behulp van een gespecialiseerde kooi, aangeduid als een Queen Monitoring Cage. Om het beoogde gebruik van de methode te illustreren, worden de resultaten beschreven van een experiment waarbij werksterverzorgers een dieet kregen met subletale doses imidacloprid en effecten op koninginnen werden gecontroleerd.

Introduction

Vanwege de toegenomen wereldwijde vraag naar landbouwproducten vereisen moderne landbouwpraktijken vaak het gebruik van agrochemicaliën om tal van plagen te bestrijden waarvan bekend is dat ze de gewasopbrengsten verminderen of schaden1. Tegelijkertijd vertrouwen de telers van veel fruit-, groente- en notengewassen op de bestuivingsdiensten van commerciële honingbijenkolonies om overvloedige gewasopbrengsten te garanderen2. Deze praktijken kunnen ertoe leiden dat bestuivers, waaronder honingbijen (Apis mellifera), worden blootgesteld aan schadelijke niveaus van residuen van bestrijdingsmiddelen3. Tegelijkertijd vereist de wijdverspreide aanwezigheid van parasitaire Varroa destructor-mijtbesmettingen in honingbijenkolonies vaak dat imkers hun bijenkorven behandelen met miticiden, wat ook negatieve effecten kan hebben op de gezondheid en levensduur van de kolonie4,5 ,6. Om schadelijke effecten van agrochemische producten te verminderen en te beperken, is het noodzakelijk om hun veiligheid voor honingbijen volledig te evalueren voordat ze worden geïmplementeerd, zodat aanbevelingen voor het gebruik ervan kunnen worden gedaan om nuttige insecten te beschermen.

Momenteel vertrouwt het Environmental Protection Agency (EPA) op een gelaagde risicobeoordelingsstrategie voor blootstelling aan honingbijenbestrijdingsmiddelen, die laboratoriumtests op volwassen bijen en soms honingbijlarven omvat7. Indien laboratoriumtests van een lager niveau de bezorgdheid over toxiciteit niet wegnemen, kunnen veld- en semi-veldtests van een hoger niveau worden aanbevolen. Hoewel deze laboratoriumtests waardevol inzicht bieden in de mogelijke effecten van agrochemicaliën op de levensduur van werknemers, zijn ze niet noodzakelijkerwijs voorspellend voor hun effecten op koninginnen, die biologisch aanzienlijk verschillen van werknemers8 en gedragsmatig9. Bovendien zijn er tal van potentiële effecten van agrochemicaliën op insecten voorbij de mortaliteit, die aanzienlijke gevolgen kunnen hebben voor sociale insecten die afhankelijk zijn van gecoördineerd gedrag om te functioneren als een kolonie-eenheid10,11.

Hoewel sterfte het meest overwogen effect is van agrochemische pesticiden12, kunnen deze producten een breed scala aan effecten hebben op zowel doel- als niet-doel geleedpotigen, waaronder veranderd gedrag13,14,15,16,afstoting of aantrekkingskracht17,18,19,veranderingen in voedingspatronen20,21,22 , en verhoogde of verminderde vruchtbaarheid20,21,22,23,24,25. Voor sociale insecten kunnen deze effecten systemisch kolonie-interacties en -functies verstoren11. Van deze functies kan reproductie, die sterk afhankelijk is van een enkele eierleggende koningin ondersteund door de rest van de kolonie-eenheid9, bijzonder kwetsbaar zijn voor verstoring als gevolg van blootstelling aan pesticiden.

Studies uitgevoerd op onvolwassen koninginnen hebben aangetoond dat ontwikkelingsblootstelling aan miticiden het gedrag, de fysiologie en de overleving van volwassen koninginnen kan beïnvloeden26,27. Evenzo hebben studies met volledige of kleinere kolonies aangetoond dat agrochemicaliën volwassen honingbijenkoninginnen kunnen beïnvloeden door het paringssucces28te verminderen, de ovipositie29te verminderen en de levensvatbaarheid van de geproduceerde eieren te verminderen25,30,31. Deze verschijnselen waren voorheen moeilijk waar te nemen zonder het gebruik van hele kolonies, grotendeels te wijten aan een gebrek aan beschikbare laboratoriummethoden. Een methode om de ovipositie van koninginnen onder streng gecontroleerde laboratoriumomstandigheden te bestuderen met behulp van Queen Monitoring Cages (QMC)32 is onlangs echter aangepast om de effecten van agrochemicaliën op de vruchtbaarheid van koninginnen te onderzoeken33. Hier worden deze technieken in detail beschreven, samen met aanvullende methoden om de consumptie van het dieet van werknemers in MFC’s te meten en te volgen.

Deze methoden zijn voordeliger dan experimenten die kolonies van volledige grootte vereisen, omdat ze de toediening van precieze doses agrochemicaliën mogelijk maken aan een sterk verminderd aantal werknemers in vergelijking met de tienduizenden die meestal aanwezig zijn in een kolonie34, die vervolgens de koningin leveren. Deze belichtingstechniek weerspiegelt de tweedehands blootstelling die koninginnen in reële scenario’s zouden ervaren, omdat koninginnen binnen een kolonie zichzelf niet voeden en vertrouwen op werknemers om hen van dieet te voorzien9. Evenzo verlaten koninginnen over het algemeen de korf niet, behalve tijdens koloniereproductie (zwermen) voor paringsvluchten35. Gedekte honingbijenkoninginnen kunnen worden gekocht bij commerciële koninginnenfokkers en ‘s nachts worden verzonden. Meestal verkopen koninginnenfokkers koninginnen direct nadat ze hebben bevestigd dat ze zijn begonnen met het leggen van eieren, wat wordt beschouwd als een indicatie van succesvolle paring. Als meer precieze informatie over de leeftijd of verwantschap van de koningin nodig is, kunnen onderzoekers de koninginnenfokker raadplegen voordat ze een bestelling plaatsen.

MFC’s maken nauwkeurige observatie en kwantificering van de ovipositie van honingbijenkoninginnen en het uitkomen van eieren32,33mogelijk, wat waardevolle gegevens oplevert met betrekking tot de effecten van agrochemische blootstelling op de vruchtbaarheid van koninginnen. De representatieve resultaten die hier worden gepresenteerd, beschrijven een experiment dat de ovipositie, dieetconsumptie en embryo-levensvatbaarheid in MGM’s kwantificeert bij chronische blootstelling aan veldrelevante concentraties van het systemische neurotoxische neonicotinoïde pesticide imidacloprid36. Eenmaal aangebracht, verplaatst imidacloprid zich naarplantenweefsels 37, en residuen zijn gedetecteerd het stuifmeel en nectar van talrijke bijen bestoven planten38,39,40. Blootstelling aan imidacloprid kan een breed scala aan schadelijke effecten hebben op honingbijen, waaronder verminderde foerageerprestaties16,verminderde immuunfunctie41en verminderde kolonie-uitbreiding en overleving42,43. Hier werd imidacloprid geselecteerd voor gebruik als teststof omdat veldexperimenten hebben aangetoond dat het de ovipositie van honingbijenkoningin29 kan beïnvloeden

Protocol

1. QMC assemblage Monteer MGM’s uit onderdelen(figuur 1A)met een enkele eierlegplaat (ELP) ingevoegd zoals weergegeven in figuur 1B. Voeg geen voedingsbuizen toe totdat de werknemers aan de kooi zijn toegevoegd. Bedek de 4 feedergaten tijdelijk met tape van laboratoriumkwaliteit. Plaats de koninginnenuitsluiter en de deur van de voerkamer boven de voederkamer om te voorkomen dat de koningin de voederkamer binnengaat en contact maakt met het b…

Representative Results

De productie van eieren werd gemonitord in MGM’s die werden geassembleerd en onderhouden zoals hierboven beschreven met eenmaal daagse observaties van de eiproductie en 15 kooien per behandelingsgroep. Nieuw gedekte koninginnen van voornamelijk Carniolan-aandelen werden ‘s nachts gekocht en verzonden van een koninginnenkweker, en honingbijwerkers werden verkregen uit 3 kolonies die werden onderhouden volgens standaard commerciële methoden in The Bee Research Facility aan de Universiteit van Illinois Urbana-Champaign. Hi…

Discussion

De vruchtbaarheid van vrouwelijke solitaire insecten en koninginnen in eusociale insectenkolonies kan worden beïnvloed door abiotische stressoren zoals agrochemicaliën25,28,29,30,33. Bij honingbijen kunnen de effecten van agrochemicaliën op koninginnen indirect zijn, omdat ze kunnen optreden via veranderingen in hun verzorging en voeding door werkbijen. Onz…

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dank aan Dr. Amy Cash-Ahmed, Nathanael J. Beach en Alison L. Sankey voor hun hulp bij het uitvoeren van dit werk. Vermelding van handelsnamen of commerciële producten in deze publicatie is uitsluitend bedoeld om specifieke informatie te verstrekken en impliceert geen aanbeveling of goedkeuring door het Amerikaanse ministerie van Landbouw. USDA is een aanbieder van gelijke kansen en werkgever. Dit onderzoek werd ondersteund door een subsidie van het Defense Advanced Research Projects Agency # HR0011-16-2-0019 aan Gene E. Robinson en Huimin Zhao, USDA-project 2030-21000-001-00-D, en de Fenotypische Plasticiteitsonderzoekservaring voor Community College-studenten aan de Universiteit van Illinois in Urbana Champaign.

Materials

Fluon BioQuip, Rancho Dominguez, CA 2871A
Honey bee queens Olivarez Honey Bees, Orland, CA
Imidacloprid Sigma-Aldritch, St. Louis, MO 37894
MegaBee Powder MegaBee, San Dieago, CA
Microcentrifuge tubes 2 mL ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 02-682-004
Needles 20 gauge W. W. Grainger, Lake Forest, IL 5FVK4
Potassium Sulfate Sigma-Aldritch, St. Louis, MO P0772
Queen Monitoring Cages University of Illinois Urbana-Champaign Patent application number: 20190350175
Sucrose Sigma-Aldritch, St. Louis, MO S8501
Universal Microplate Lids ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 5500

Referenzen

  1. Hedlund, J., Longo, S. B., York, R. Agriculture, pesticide use, and economic development: A global examination (1990-2014). Rural Sociology. 85 (2), 519-544 (2020).
  2. Calderone, N. W. Insect pollinated crops, insect pollinators and US agriculture: Trend analysis of aggregate data for the period 1992-2009. PLOS ONE. 7 (5), 37235 (2012).
  3. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity – USA. Apidologie. 41 (3), 312-331 (2010).
  4. Walsh, E. M., Sweet, S., Knap, A., Ing, N., Rangel, J. Queen honey bee (Apis mellifera) pheromone and reproductive behavior are affected by pesticide exposure during development. Behavioral Ecology and Sociobiology. 74 (3), 33 (2020).
  5. Zhu, W., Schmehl, D. R., Mullin, C. A., Frazier, J. L. Four Common Pesticides, Their Mixtures and a Formulation Solvent in the Hive Environment Have High Oral Toxicity to Honey Bee Larvae. PLoS ONE. 9 (1), 77547 (2014).
  6. Fisher, A., Rangel, J. Exposure to pesticides during development negatively affects honey bee (Apis mellifera) drone sperm viability. PLoS ONE. 13 (12), 0208630 (2018).
  7. How we assess risks to pollinators. US EPA Available from: https://www.epa.gov/pollinator-protection/how-we-assess-risk-polliators (2013)
  8. Snodgrass, R. E. . Anatomy of the honey bee. , (1956).
  9. Allen, M. D. The honeybee queen and her attendants. Animal Behaviour. 8 (3), 201-208 (1960).
  10. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The superorganism: The beauty, elegance, and strangeness of insect societies. , (2009).
  11. Berenbaum, M. R., Liao, L. -. H. Honey bees and environmental stress: Toxicologic pathology of a superorganism. Toxicologic Pathology. 47 (8), 1076-1081 (2019).
  12. Yu, S. J. . The toxicology and biochemistry of insecticides. , (2014).
  13. Ciarlo, T. J., Mullin, C. A., Frazier, J. L., Schmehl, D. R. Learning impairment in honey bees caused by agricultural spray adjuvants. PloS One. 7 (7), 40848 (2012).
  14. Fourrier, J., et al. Larval exposure to the juvenile hormone analog pyriproxyfen disrupts acceptance of and social behavior performance in adult honeybees. PLoS ONE. 10 (7), (2015).
  15. Morfin, N., Goodwin, P. H., Correa-Benitez, A., Guzman-Novoa, E. Sublethal exposure to clothianidin during the larval stage causes long-term impairment of hygienic and foraging behaviours of honey bees. Apidologie. 50 (5), 595-605 (2019).
  16. Colin, T., Meikle, W. G., Wu, X., Barron, A. B. Traces of a neonicotinoid induce precocious foraging and reduce foraging performance in honey bees. Environmental Science & Technology. 53 (14), 8252-8261 (2019).
  17. Liao, L. H., Wu, W. Y., Berenbaum, M. R. Behavioral responses of honey bees (Apis mellifera) to natural and synthetic xenobiotics in food. Scientific Reports. 7 (1), 1-8 (2017).
  18. Kessler, S. C., et al. Bees prefer foods containing neonicotinoid pesticides. Nature. 521 (7550), 74-76 (2015).
  19. Metcalf, R. L., Luckmann, W. H. . Introduction to Insect Pest Management. , (1994).
  20. Duncan, J. Post-treatment effects of sublethal doses of dieldrin on the mosquito Aedes aegypti L. Annals of Applied Biology. 52 (1), 1-6 (1963).
  21. Haynes, K. F. Sublethal effects of neurotoxic insecticides on insect behavior. Annual Review of Entomology. 33 (1), 149-168 (1988).
  22. James, D. G., Price, T. S. Fecundity in twospotted spider mite (Acari: Tetranychidae) is increased by direct and systemic exposure to imidacloprid. Journal of Economic Entomology. 95 (4), 729-732 (2002).
  23. Hodjat, S. H. Effects of sublethal doses of insecticides and of diet and crowding on Dysdercus fasciatus Sign. (Hem., Pyrrhocoridae). Bulletin of Entomological Research. 60 (3), 367-378 (1971).
  24. Feng, W. B., Bong, L. J., Dai, S. M., Neoh, K. B. Effect of imidacloprid exposure on life history traits in the agricultural generalist predator Paederus beetle: Lack of fitness cost but strong hormetic effect and skewed sex ratio. Ecotoxicology and Environmental Safety. 174, 390-400 (2019).
  25. Milchreit, K., Ruhnke, H., Wegener, J., Bienefeld, K. Effects of an insect growth regulator and a solvent on honeybee (Apis mellifera L.) brood development and queen viability. Ecotoxicology. 25 (3), 530-537 (2016).
  26. Haarmann, T., Spivak, M., Weaver, D., Weaver, B., Glenn, T. Effects of fluvalinate and coumaphos on queen honey bees (Hymenoptera: Apidae) in two commercial queen rearing operations. Journal of Economic Entomology. 95 (1), 28-35 (2002).
  27. Pettis, J. S., Collins, A. M., Wilbanks, R., Feldlaufer, M. F. Effects of coumaphos on queen rearing in the honey bee, Apis mellifera. Apidologie. 35 (6), 605-610 (2004).
  28. Thompson, H. M., Wilkins, S., Battersby, A. H., Waite, R. J., Wilkinson, D. The effects of four insect growth-regulating (IGR) insecticides on honeybee (Apis mellifera L.) colony development, queen rearing and drone sperm production. Ecotoxicology. 14 (7), 757-769 (2005).
  29. Wu-Smart, J., Spivak, M. Sub-lethal effects of dietary neonicotinoid insecticide exposure on honey bee queen fecundity and colony development. Scientific Reports. 6 (1), 1-11 (2016).
  30. Chen, Y. W., Wu, P. S., Yang, E. C., Nai, Y. S., Huang, Z. Y. The impact of pyriproxyfen on the development of honey bee (Apis mellifera L.) colony in field. Journal of Asia-Pacific Entomology. 19 (3), 589-594 (2016).
  31. Fine, J. D., Mullin, C. A., Frazier, M. T., Reynolds, R. D. Field residues and effects of the insect growth regulator novaluron and its major co-formulant n-methyl-2-pyrrolidone on honey bee reproduction and development. Journal of Economic Entomology. 110 (5), 1993-2001 (2017).
  32. Fine, J. D., et al. Quantifying the effects of pollen nutrition on honey bee queen egg laying with a new laboratory system. PLoS ONE. 13 (9), 0203444 (2018).
  33. Fine, J. D. Evaluation and comparison of the effects of three insect growth regulators on honey bee queen oviposition and egg eclosion. Ecotoxicology and Environmental Safety. 205, 111142 (2020).
  34. The Colony and Its Organization. MAAREC – Mid Atlantic Apiculture Research & Extension Consortium Available from: https://agdev.anr.udel.edu/maarec/honey-bee-biology/the-colony-and-its-organization/ (2020)
  35. Winston, M. L. . The biology of the honey bee. , (1991).
  36. Mullins, J. W. Pest control with enhanced environmental safety. Imidacloprid. 524, 183-198 (1993).
  37. Sur, R., Stork, A. Uptake, translocation and metabolism of imidacloprid in plants. Bulletin of Insectology. 56 (1), 35-40 (2003).
  38. Dively, G. P., Kamel, A. Insecticide residues in pollen and nectar of a cucurbit crop and their potential exposure to pollinators. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 60 (18), 4449-4456 (2012).
  39. Goulson, D. Review: An overview of the environmental risks posed by neonicotinoid insecticides. Journal of Applied Ecology. , 977-987 (2014).
  40. Krischik, V., Rogers, M., Gupta, G., Varshney, A. Soil-applied imidacloprid translocates to ornamental flowers and reduces survival of adult Coleomegilla maculata, Harmonia axyridis, and Hippodamia convergens lady beetles, and larval Danaus plexippus and Vanessa cardui butterflies. PLoS ONE. 10 (3), (2015).
  41. Prisco, G. D., et al. Neonicotinoid clothianidin adversely affects insect immunity and promotes replication of a viral pathogen in honey bees. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (46), 18466-18471 (2013).
  42. Dively, G. P., Embrey, M. S., Kamel, A., Hawthorne, D. J., Pettis, J. S. Assessment of chronic sublethal effects of imidacloprid on honey bee colony health. PLoS ONE. 10 (3), 01118748 (2015).
  43. Sandrock, C., Tanadini, M., Tanadini, L. G., Fauser-Misslin, A., Potts, S. G., Neumann, P. Impact of chronic neonicotinoid exposure on honeybee colony performance and queen supersedure. PLoS ONE. 9 (8), 103592 (2014).
  44. Brodschneider, R., Riessberger-Gallé, U., Crailsheim, K. Flight performance of artificially reared honeybees (Apis mellifera). Apidologie. 40 (4), 441-449 (2009).
  45. Harrison, J. M. Caste-specific changes in honeybee flight capacity. Physiological Zoology. 59 (2), 175-187 (1986).
  46. Mackensen, O. Effect of carbon dioxide on initial oviposition of artificially inseminated and virgin queen bees. Journal of Economic Entomology. 40 (3), 344-349 (1947).
  47. OECD. . OECD Test No. 245: Honey bee (Apis Mellifera L.), chronic oral toxicity test (10-Day Feeding), OECD guidelines for the testing of chemicals, section 2. , (2017).
  48. . ECOTOX Home Available from: https://cfpub.epa.gov/ecotox/ (2020)
  49. Collins, A. M. Variation in time of egg hatch by the honey bee, Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). Annals of the Entomological Society of America. 97 (1), 140-146 (2004).
  50. Santomauro, G., Engels, W. Sexing of newly hatched live larvae of the honey bee, Apis mellifera, allows the recognition of diploid drones. Apidologie. 33 (3), 283-288 (2002).
  51. Tang, W., Hu, Z., Muallem, H., Gulley, M. L. Quality assurance of RNA expression profiling in clinical laboratories. The Journal of Molecular Diagnostics JMD. 14 (1), 1-11 (2012).
  52. Henry, M., et al. Reconciling laboratory and field assessments of neonicotinoid toxicity to honeybees. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 282 (1819), (2015).
  53. Singaravelan, N., Nee’man, G., Inbar, M., Izhaki, I. Feeding responses of free-flying honeybees to secondary compounds mimicking floral nectars. Journal of Chemical Ecology. 31 (12), 2791-2804 (2005).
  54. Brown, L. A., Ihara, M., Buckingham, S. D., Matsuda, K., Sattelle, D. B. Neonicotinoid insecticides display partial and super agonist actions on native insect nicotinic acetylcholine receptors. Journal of Neurochemistry. 99 (2), 608-615 (2006).
  55. Dupuis, J. P., Gauthier, M., Raymond-Delpech, V. Expression patterns of nicotinic subunits α2, α7, α8, and β1 affect the kinetics and pharmacology of ACh-induced currents in adult bee olfactory neuropiles. Journal of Neurophysiology. 106 (4), 1604-1613 (2011).
  56. Crailsheim, K., et al. Pollen consumption and utilization in worker honeybees (Apis mellifera carnica): Dependence on individual age and function. Journal of Insect Physiology. 38 (6), 409-419 (1992).
  57. . The Merck Index Online – chemicals, drugs and biologicals Available from: https://www.rsc.org/merck-index (2020)
  58. Trostanetsky, A., Kostyukovsky, M. Note: Transovarial activity of the chitin synthesis inhibitor novaluron on egg hatch and subsequent development of larvae of Tribolium castaneum. Phytoparasitica. 36 (1), 38-41 (2008).
  59. Medina, P., Smagghe, G., Budia, F., del Estal, P., Tirry, L., Viñuela, E. Significance of penetration, excretion, and transovarial uptake to toxicity of three insect growth regulators in predatory lacewing adults. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 51 (2), 91-101 (2002).
  60. Kim, S. H. S., Wise, J. C., Gökçe, A., Whalon, M. E. Novaluron causes reduced egg hatch after treating adult codling moths, Cydia pomenella: Support for transovarial transfer. Journal of Insect Science. 11, (2011).
  61. Joseph, S. V. Transovarial effects of insect growth regulators on Stephanitis pyrioides (Hemiptera: Tingidae). Pest Management Science. 75 (8), 2182-2187 (2019).
  62. Tasei, J. N. Effects of insect growth regulators on honey bees and non-Apis bees. A review. Apidologie. 32 (6), 527-545 (2001).
  63. Haydak, M. H. Honey Bee Nutrition. Annual Review of Entomology. 15 (1), 143-156 (1970).
  64. Böhme, F., Bischoff, G., Zebitz, C. P. W., Rosenkranz, P., Wallner, K. From field to food-will pesticide-contaminated pollen diet lead to a contamination of royal jelly. Apidologie. 49 (1), 112-119 (2018).
check_url/de/62316?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Fine, J. D., Torres, K. M., Martin, J., Robinson, G. E. Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens. J. Vis. Exp. (169), e62316, doi:10.3791/62316 (2021).

View Video