Summary

הערכת הסיכון האגרוכימי למלכות דבורת הדבש המויזות

Published: March 03, 2021
doi:

Summary

פרוטוקול זה פותח כדי לשפר את ההבנה כיצד אגרוכימיקלים משפיעים על דבורת הדבש (Apis mellifera) רבייה על ידי יצירת שיטות לחשוף מלכות דבורי דבש ומטפלים העובדים שלהם אגרוכימיקלים בפיקוח, הגדרה מעבדה וניטור קפדני של התגובות הרלוונטיות שלהם.

Abstract

אסטרטגיות הערכת סיכונים נוכחיות עבור דבורי דבש מסתמכות במידה רבה על בדיקות מעבדה שבוצעו על דבורים בוגרות או לא בוגרות, אך שיטות אלה עשויות שלא ללכוד במדויק את ההשפעות של חשיפה אגרוכימית על מלכות דבורי דבש. כמפיקה היחידה של ביצים מופרות בתוך מושבת דבורי דבש, המלכה היא ללא ספק החברה החשובה ביותר ביחידת מושבה מתפקדת. לכן, הבנת האופן שבו אגרוכימיקלים משפיעים על בריאות המלכה ועל הפרודוקטיביות צריכה להיחשב להיבט קריטי של הערכת סיכוני הדברה. כאן, מוצגת שיטה מותאמת לחשוף מלכות דבורי דבש ומטפלים מלכת עובדים ללחצים אגרוכימיים המנוהלים באמצעות דיאטה עובד, ואחריו מעקב אחר ייצור ביצים במעבדה והערכת אקסלוסיה ראשונה באמצעות כלוב מיוחד, המכונה כלוב ניטור המלכה. כדי להמחיש את השימוש המיועד של השיטה, תוצאות של ניסוי שבו דיילות מלכת העובדים קיבלו דיאטה המכילה מינונים sublethal של imidacloprid והשפעות על מלכות היו במעקב.

Introduction

בשל הביקוש העולמי הגובר למוצרים חקלאיים, שיטות חקלאיות מודרניות דורשות לעתים קרובות שימוש באגרוכימיקלים כדי לשלוט במזיקים רבים הידועים כמפחיתים או פוגעים בתפוקות היבול1. בו זמנית, המגדלים של גידולי פירות, ירקות ואגוזים רבים מסתמכים על שירותי ההאבקה המסופקים על ידי מושבות דבורי דבש מסחריות כדי להבטיח יבול בשפעתשואה 2. פרקטיקות אלה עלולות לגרום למאביקים, כולל דבורי דבש (Apis mellifera), להיחשף לרמות מזיקות של שאריות חומרי הדברה3. יחד עם זאת, הנוכחות הנרחבת של מכת קרדית טיהור Varroa טפילי במושבות דבורי דבש לעתים קרובות דורשים דבוראים לטפל בכוורות שלהם עם miticides, אשר עשוי גם להשפיע לרעה על הבריאות ואריכות ימים של המושבה4,5,6. כדי להפחית ולצמצם השפעות מזיקות של מוצרים אגרוכימיים, יש צורך להעריך באופן מלא את בטיחותם לדבורי הדבש לפני יישומן, כך שניתן יהיה לבצע המלצות לשימוש בהם כדי להגן על חרקים מועילים.

נכון לעכשיו, הסוכנות להגנת הסביבה (EPA) מסתמכת על אסטרטגיית הערכת סיכונים שכבתית לחשיפה לחומרי הדברה בדבורי דבש, הכוללת בדיקות מעבדה על דבורים בוגרות ולפעמים זחלי דבורי דבש7. אם בדיקות מעבדה ברמה נמוכה יותר אינן מצליחות להקל על החששות לרעילות, מומלץ לבצע בדיקות שדה ברמה גבוהה יותר ובדיקות שדה למחצה. בעוד שבדיקות מעבדה אלה מספקות תובנה חשובה על ההשפעות הפוטנציאליות של אגרוכימיקלים על אריכות ימים של עובדים, הם לא בהכרח מנבאים את השפעותיהם על מלכות, אשר שונים באופן משמעותי מעובדים ביולוגית8 והתנהגותית9. יתר על כן, ישנן השפעות פוטנציאליות רבות של אגרוכימיקלים על חרקים מעבר לתמותה, אשר יכול להיות השלכות ניכרות על חרקים חברתיים הנתמכים על התנהגויות מתואמות לתפקד כיחידה מושבה10,11.

למרות התמותה היא ההשפעה הנפוצה ביותר של חומרי הדברה אגרוכימיים12, מוצרים אלה יכולים להיות מגוון רחב של השפעות הן על פרוקי רגליים היעד ולא היעד כולל התנהגות שונה13,14,15,16, דוחה או משיכה17,18,19, שינויים בדפוסי האכלה20,21,22 ועלייה או ירידה ב-fecundity20,21,22,23,24,25. עבור חרקים חברתיים, השפעות אלה יכולות לשבש באופן שיטתי אינטראקציות המושבה פונקציות11. מתוך פונקציות אלה, רבייה, אשר מסתמכת בכבדות על מלכה מטילת ביצה אחת נתמך על ידי שאר יחידת המושבה9, עשוי להיות פגיע במיוחד מוטרד עקב חשיפה לחומרי הדברה.

מחקרים שבוצעו על מלכות לא בוגרות הראו כי חשיפה התפתחותית לחומרי מיתיקה יכולה להשפיע על התנהגות המלכה הבוגרת, פיזיולוגיה, הישרדות26,27. באופן דומה, מחקרים באמצעות מושבות בגודל מלא או מופחת הראו כי אגרוכימיקלים יכולים להשפיע על מלכות דבורי דבש בוגרות על ידי הפחתת הצלחת ההזדווגות28, הפחתת oviposition29, והפחתת הכדאיות של הביצים המיוצרות25,30,31. בעבר היה קשה לצפות בתופעות אלה ללא שימוש במושבות שלמות, בעיקר בשל היעדר שיטות מעבדה זמינות. עם זאת, שיטה לחקור oviposition המלכה תחת תנאי מעבדה מבוקרים היטב באמצעות כלובי ניטור המלכה (QMC)32 הותאמה לאחרונה כדי לבחון את ההשפעות של אגרוכימיה על פוריות המלכה33. כאן, טכניקות אלה מתוארות בפירוט יחד עם שיטות נוספות כדי למדוד ולעקוב אחר צריכת דיאטה עובד QMCs.

שיטות אלה הן יתרון יותר מאשר ניסויים הדורשים מושבות בגודל מלא כי הם מאפשרים ניהול של מינונים מדויקים של אגרוכימיקלים למספר מופחת מאוד של עובדים ביחס לעשרות אלפים בדרך כלל נוכח בתוך מושבה34, אשר לאחר מכן לספק את המלכה. טכניקת חשיפה זו משקפת את החשיפה יד שנייה כי מלכות יחוו בתרחישים בעולם האמיתי, כי בתוך מושבה, מלכות לא להאכיל את עצמם להסתמך על עובדים כדי לספק להם דיאטה9. באופן דומה, מלכות בדרך כלל לא לעזוב את הכוורת אלא במהלך רבייה המושבה (נחיל) עבור טיסות הזדווגות35. ניתן לרכוש מלכות דבורי דבש מויזות ממגדלי מלכות מסחריים ולשלוח אותם למשך הלילה. בדרך כלל, מגדלי מלכה למכור מלכות ישירות לאחר אישור כי הם התחילו להטיל ביצים, אשר נלקח כאינדיקציה של הזדווגות מוצלחת. אם יש צורך במידע מדויק יותר על גיל המלכה או על קשר, החוקרים עשויים להתייעץ עם מגדל המלכה לפני ביצוע הזמנה.

QMCs מאפשרים תצפית וכימות מדויקים של מלכת דבורי הדבש oviposition ושיעורי בקיעה ביצה32,33, מניב נתונים יקרי ערך הקשורים להשפעות של חשיפה אגרוכימית על פוריות המלכה. התוצאות הייצוגיות המוצגות כאן מתארות ניסוי לכימות oviposition, צריכת דיאטה, ואת הכדאיות העובר ב QMCs תחת חשיפה כרונית לריכוזים רלוונטיים לשדה של חומרי הדברה neurotoxicant מערכתי imidacloprid36. לאחר החלת, imidacloprid translocates לשתולרקמות 37, ושאריות התגלו אבקה וצוף של צמחים מואבקים דבורים רבים38,39,40. חשיפה imidacloprid יכול להיות מגוון רחב של השפעות מזיקות על דבורי דבש כולל לקוי מזון ביצועים16, תפקוד מערכת החיסון לקוי41, וירידה בשיעורי הרחבת המושבה והישרדות42,43. כאן, imidacloprid נבחר לשימוש כחומר בדיקה כי ניסויי שדה הראו כי זה יכול להשפיע על מלכת דבורי הדבש oviposition29

Protocol

1. הרכבת QMC להרכיב QMCs מחלקים (איור 1A) עם צלחת מטיל ביצה אחת (ELP) מוכנס כפי שמוצג באיור 1B. אין להוסיף צינורות הזנה עד לאחר שהעובדים נוספו לכלוב. לכסות באופן זמני את 4 חורי ההזנה עם סרט כיתה מעבדה. הכנס את המלכה לא כוללת ואת דלת חדר ההאכלה מעל תא ההאכלה כד?…

Representative Results

ייצור הביצים היה פיקוח QMCs התאספו ומתוחזקים כמתואר לעיל עם תצפיות יומיות של ייצור ביצים ו 15 כלובים לכל קבוצת טיפול. מלכות חדשות של בעיקר מלאי קרניולאן נרכשו ונשלחו בן לילה ממגדל מלכה, ועובדי דבורי דבש התקבלו מ -3 מושבות שנשמרו על פי שיטות מסחריות סטנדרטיות במתקן המחקר דבורים באוניברסיטת איל…

Discussion

הפוריות של חרקים בודדים נקבות, כמו גם מלכות במושבות חרקים אוסוציאליות יכול להיות מושפע על ידי גורמי לחץ abiotic כגון אגרוכימיה25,28,29,30,33. בדבורי הדבש, ההשפעות של אגרוכימיקלים על מלכות עשויות להיות עקיפות, …

Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

תודה לד”ר איימי קאש-אחמד, נתנאל ג’יי ביץ’ ואליסון ל. סנקי על עזרתם בביצוע העבודה. אזכור שמות מסחריים או מוצרים מסחריים בפרסום זה נועד אך ורק לצורך מסירת מידע ספציפי ואינו מרמז על המלצה או תמיכה על ידי משרד החקלאות האמריקאי. משרד החקלאות האמריקאי הוא ספק ומעסיק שוויון הזדמנויות. מחקר זה נתמך על ידי מענק מסוכנות פרויקטי המחקר המתקדמים של ההגנה # HR0011-16-2-0019 לג’ין א. רובינסון וחוימיין זאו, פרויקט USDA 2030-21000-001-00-D, ואת חוויית מחקר הפלסטיות הפנוטיפית לסטודנטים במכללה הקהילתית באוניברסיטת אילינוי באורבנה שמפיין.

Materials

Fluon BioQuip, Rancho Dominguez, CA 2871A
Honey bee queens Olivarez Honey Bees, Orland, CA
Imidacloprid Sigma-Aldritch, St. Louis, MO 37894
MegaBee Powder MegaBee, San Dieago, CA
Microcentrifuge tubes 2 mL ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 02-682-004
Needles 20 gauge W. W. Grainger, Lake Forest, IL 5FVK4
Potassium Sulfate Sigma-Aldritch, St. Louis, MO P0772
Queen Monitoring Cages University of Illinois Urbana-Champaign Patent application number: 20190350175
Sucrose Sigma-Aldritch, St. Louis, MO S8501
Universal Microplate Lids ThermoFisher Scientific, Waltham, MA 5500

Referenzen

  1. Hedlund, J., Longo, S. B., York, R. Agriculture, pesticide use, and economic development: A global examination (1990-2014). Rural Sociology. 85 (2), 519-544 (2020).
  2. Calderone, N. W. Insect pollinated crops, insect pollinators and US agriculture: Trend analysis of aggregate data for the period 1992-2009. PLOS ONE. 7 (5), 37235 (2012).
  3. Johnson, R. M., Ellis, M. D., Mullin, C. A., Frazier, M. Pesticides and honey bee toxicity – USA. Apidologie. 41 (3), 312-331 (2010).
  4. Walsh, E. M., Sweet, S., Knap, A., Ing, N., Rangel, J. Queen honey bee (Apis mellifera) pheromone and reproductive behavior are affected by pesticide exposure during development. Behavioral Ecology and Sociobiology. 74 (3), 33 (2020).
  5. Zhu, W., Schmehl, D. R., Mullin, C. A., Frazier, J. L. Four Common Pesticides, Their Mixtures and a Formulation Solvent in the Hive Environment Have High Oral Toxicity to Honey Bee Larvae. PLoS ONE. 9 (1), 77547 (2014).
  6. Fisher, A., Rangel, J. Exposure to pesticides during development negatively affects honey bee (Apis mellifera) drone sperm viability. PLoS ONE. 13 (12), 0208630 (2018).
  7. How we assess risks to pollinators. US EPA Available from: https://www.epa.gov/pollinator-protection/how-we-assess-risk-polliators (2013)
  8. Snodgrass, R. E. . Anatomy of the honey bee. , (1956).
  9. Allen, M. D. The honeybee queen and her attendants. Animal Behaviour. 8 (3), 201-208 (1960).
  10. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The superorganism: The beauty, elegance, and strangeness of insect societies. , (2009).
  11. Berenbaum, M. R., Liao, L. -. H. Honey bees and environmental stress: Toxicologic pathology of a superorganism. Toxicologic Pathology. 47 (8), 1076-1081 (2019).
  12. Yu, S. J. . The toxicology and biochemistry of insecticides. , (2014).
  13. Ciarlo, T. J., Mullin, C. A., Frazier, J. L., Schmehl, D. R. Learning impairment in honey bees caused by agricultural spray adjuvants. PloS One. 7 (7), 40848 (2012).
  14. Fourrier, J., et al. Larval exposure to the juvenile hormone analog pyriproxyfen disrupts acceptance of and social behavior performance in adult honeybees. PLoS ONE. 10 (7), (2015).
  15. Morfin, N., Goodwin, P. H., Correa-Benitez, A., Guzman-Novoa, E. Sublethal exposure to clothianidin during the larval stage causes long-term impairment of hygienic and foraging behaviours of honey bees. Apidologie. 50 (5), 595-605 (2019).
  16. Colin, T., Meikle, W. G., Wu, X., Barron, A. B. Traces of a neonicotinoid induce precocious foraging and reduce foraging performance in honey bees. Environmental Science & Technology. 53 (14), 8252-8261 (2019).
  17. Liao, L. H., Wu, W. Y., Berenbaum, M. R. Behavioral responses of honey bees (Apis mellifera) to natural and synthetic xenobiotics in food. Scientific Reports. 7 (1), 1-8 (2017).
  18. Kessler, S. C., et al. Bees prefer foods containing neonicotinoid pesticides. Nature. 521 (7550), 74-76 (2015).
  19. Metcalf, R. L., Luckmann, W. H. . Introduction to Insect Pest Management. , (1994).
  20. Duncan, J. Post-treatment effects of sublethal doses of dieldrin on the mosquito Aedes aegypti L. Annals of Applied Biology. 52 (1), 1-6 (1963).
  21. Haynes, K. F. Sublethal effects of neurotoxic insecticides on insect behavior. Annual Review of Entomology. 33 (1), 149-168 (1988).
  22. James, D. G., Price, T. S. Fecundity in twospotted spider mite (Acari: Tetranychidae) is increased by direct and systemic exposure to imidacloprid. Journal of Economic Entomology. 95 (4), 729-732 (2002).
  23. Hodjat, S. H. Effects of sublethal doses of insecticides and of diet and crowding on Dysdercus fasciatus Sign. (Hem., Pyrrhocoridae). Bulletin of Entomological Research. 60 (3), 367-378 (1971).
  24. Feng, W. B., Bong, L. J., Dai, S. M., Neoh, K. B. Effect of imidacloprid exposure on life history traits in the agricultural generalist predator Paederus beetle: Lack of fitness cost but strong hormetic effect and skewed sex ratio. Ecotoxicology and Environmental Safety. 174, 390-400 (2019).
  25. Milchreit, K., Ruhnke, H., Wegener, J., Bienefeld, K. Effects of an insect growth regulator and a solvent on honeybee (Apis mellifera L.) brood development and queen viability. Ecotoxicology. 25 (3), 530-537 (2016).
  26. Haarmann, T., Spivak, M., Weaver, D., Weaver, B., Glenn, T. Effects of fluvalinate and coumaphos on queen honey bees (Hymenoptera: Apidae) in two commercial queen rearing operations. Journal of Economic Entomology. 95 (1), 28-35 (2002).
  27. Pettis, J. S., Collins, A. M., Wilbanks, R., Feldlaufer, M. F. Effects of coumaphos on queen rearing in the honey bee, Apis mellifera. Apidologie. 35 (6), 605-610 (2004).
  28. Thompson, H. M., Wilkins, S., Battersby, A. H., Waite, R. J., Wilkinson, D. The effects of four insect growth-regulating (IGR) insecticides on honeybee (Apis mellifera L.) colony development, queen rearing and drone sperm production. Ecotoxicology. 14 (7), 757-769 (2005).
  29. Wu-Smart, J., Spivak, M. Sub-lethal effects of dietary neonicotinoid insecticide exposure on honey bee queen fecundity and colony development. Scientific Reports. 6 (1), 1-11 (2016).
  30. Chen, Y. W., Wu, P. S., Yang, E. C., Nai, Y. S., Huang, Z. Y. The impact of pyriproxyfen on the development of honey bee (Apis mellifera L.) colony in field. Journal of Asia-Pacific Entomology. 19 (3), 589-594 (2016).
  31. Fine, J. D., Mullin, C. A., Frazier, M. T., Reynolds, R. D. Field residues and effects of the insect growth regulator novaluron and its major co-formulant n-methyl-2-pyrrolidone on honey bee reproduction and development. Journal of Economic Entomology. 110 (5), 1993-2001 (2017).
  32. Fine, J. D., et al. Quantifying the effects of pollen nutrition on honey bee queen egg laying with a new laboratory system. PLoS ONE. 13 (9), 0203444 (2018).
  33. Fine, J. D. Evaluation and comparison of the effects of three insect growth regulators on honey bee queen oviposition and egg eclosion. Ecotoxicology and Environmental Safety. 205, 111142 (2020).
  34. The Colony and Its Organization. MAAREC – Mid Atlantic Apiculture Research & Extension Consortium Available from: https://agdev.anr.udel.edu/maarec/honey-bee-biology/the-colony-and-its-organization/ (2020)
  35. Winston, M. L. . The biology of the honey bee. , (1991).
  36. Mullins, J. W. Pest control with enhanced environmental safety. Imidacloprid. 524, 183-198 (1993).
  37. Sur, R., Stork, A. Uptake, translocation and metabolism of imidacloprid in plants. Bulletin of Insectology. 56 (1), 35-40 (2003).
  38. Dively, G. P., Kamel, A. Insecticide residues in pollen and nectar of a cucurbit crop and their potential exposure to pollinators. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 60 (18), 4449-4456 (2012).
  39. Goulson, D. Review: An overview of the environmental risks posed by neonicotinoid insecticides. Journal of Applied Ecology. , 977-987 (2014).
  40. Krischik, V., Rogers, M., Gupta, G., Varshney, A. Soil-applied imidacloprid translocates to ornamental flowers and reduces survival of adult Coleomegilla maculata, Harmonia axyridis, and Hippodamia convergens lady beetles, and larval Danaus plexippus and Vanessa cardui butterflies. PLoS ONE. 10 (3), (2015).
  41. Prisco, G. D., et al. Neonicotinoid clothianidin adversely affects insect immunity and promotes replication of a viral pathogen in honey bees. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (46), 18466-18471 (2013).
  42. Dively, G. P., Embrey, M. S., Kamel, A., Hawthorne, D. J., Pettis, J. S. Assessment of chronic sublethal effects of imidacloprid on honey bee colony health. PLoS ONE. 10 (3), 01118748 (2015).
  43. Sandrock, C., Tanadini, M., Tanadini, L. G., Fauser-Misslin, A., Potts, S. G., Neumann, P. Impact of chronic neonicotinoid exposure on honeybee colony performance and queen supersedure. PLoS ONE. 9 (8), 103592 (2014).
  44. Brodschneider, R., Riessberger-Gallé, U., Crailsheim, K. Flight performance of artificially reared honeybees (Apis mellifera). Apidologie. 40 (4), 441-449 (2009).
  45. Harrison, J. M. Caste-specific changes in honeybee flight capacity. Physiological Zoology. 59 (2), 175-187 (1986).
  46. Mackensen, O. Effect of carbon dioxide on initial oviposition of artificially inseminated and virgin queen bees. Journal of Economic Entomology. 40 (3), 344-349 (1947).
  47. OECD. . OECD Test No. 245: Honey bee (Apis Mellifera L.), chronic oral toxicity test (10-Day Feeding), OECD guidelines for the testing of chemicals, section 2. , (2017).
  48. . ECOTOX Home Available from: https://cfpub.epa.gov/ecotox/ (2020)
  49. Collins, A. M. Variation in time of egg hatch by the honey bee, Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). Annals of the Entomological Society of America. 97 (1), 140-146 (2004).
  50. Santomauro, G., Engels, W. Sexing of newly hatched live larvae of the honey bee, Apis mellifera, allows the recognition of diploid drones. Apidologie. 33 (3), 283-288 (2002).
  51. Tang, W., Hu, Z., Muallem, H., Gulley, M. L. Quality assurance of RNA expression profiling in clinical laboratories. The Journal of Molecular Diagnostics JMD. 14 (1), 1-11 (2012).
  52. Henry, M., et al. Reconciling laboratory and field assessments of neonicotinoid toxicity to honeybees. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 282 (1819), (2015).
  53. Singaravelan, N., Nee’man, G., Inbar, M., Izhaki, I. Feeding responses of free-flying honeybees to secondary compounds mimicking floral nectars. Journal of Chemical Ecology. 31 (12), 2791-2804 (2005).
  54. Brown, L. A., Ihara, M., Buckingham, S. D., Matsuda, K., Sattelle, D. B. Neonicotinoid insecticides display partial and super agonist actions on native insect nicotinic acetylcholine receptors. Journal of Neurochemistry. 99 (2), 608-615 (2006).
  55. Dupuis, J. P., Gauthier, M., Raymond-Delpech, V. Expression patterns of nicotinic subunits α2, α7, α8, and β1 affect the kinetics and pharmacology of ACh-induced currents in adult bee olfactory neuropiles. Journal of Neurophysiology. 106 (4), 1604-1613 (2011).
  56. Crailsheim, K., et al. Pollen consumption and utilization in worker honeybees (Apis mellifera carnica): Dependence on individual age and function. Journal of Insect Physiology. 38 (6), 409-419 (1992).
  57. . The Merck Index Online – chemicals, drugs and biologicals Available from: https://www.rsc.org/merck-index (2020)
  58. Trostanetsky, A., Kostyukovsky, M. Note: Transovarial activity of the chitin synthesis inhibitor novaluron on egg hatch and subsequent development of larvae of Tribolium castaneum. Phytoparasitica. 36 (1), 38-41 (2008).
  59. Medina, P., Smagghe, G., Budia, F., del Estal, P., Tirry, L., Viñuela, E. Significance of penetration, excretion, and transovarial uptake to toxicity of three insect growth regulators in predatory lacewing adults. Archives of Insect Biochemistry and Physiology. 51 (2), 91-101 (2002).
  60. Kim, S. H. S., Wise, J. C., Gökçe, A., Whalon, M. E. Novaluron causes reduced egg hatch after treating adult codling moths, Cydia pomenella: Support for transovarial transfer. Journal of Insect Science. 11, (2011).
  61. Joseph, S. V. Transovarial effects of insect growth regulators on Stephanitis pyrioides (Hemiptera: Tingidae). Pest Management Science. 75 (8), 2182-2187 (2019).
  62. Tasei, J. N. Effects of insect growth regulators on honey bees and non-Apis bees. A review. Apidologie. 32 (6), 527-545 (2001).
  63. Haydak, M. H. Honey Bee Nutrition. Annual Review of Entomology. 15 (1), 143-156 (1970).
  64. Böhme, F., Bischoff, G., Zebitz, C. P. W., Rosenkranz, P., Wallner, K. From field to food-will pesticide-contaminated pollen diet lead to a contamination of royal jelly. Apidologie. 49 (1), 112-119 (2018).
check_url/de/62316?article_type=t

Play Video

Diesen Artikel zitieren
Fine, J. D., Torres, K. M., Martin, J., Robinson, G. E. Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens. J. Vis. Exp. (169), e62316, doi:10.3791/62316 (2021).

View Video