Method Article

La clonación y producción a gran escala de alta capacidad vectores adenovirales en base al tipo de adenovirus humano 5

DOI:

10.3791/52894

January 28th, 2016

In This Article

Summary

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Se presenta un protocolo para la generación de vectores adenovirales de alta capacidad que carecen de todas las secuencias codificantes virales. La clonación de los transgenes contenidos en el genoma del vector se basa en endonucleasas homing. La amplificación del virus en células productoras cultivadas como células adherentes y en suspensión se basa en un virus auxiliar que proporciona genes virales en trans.

Abstract

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Los vectores adenovirales de alta capacidad (HCAdV) desprovistos de todas las secuencias codificantes virales representan uno de los vectores de entrega de genes más avanzados debido a su alta capacidad de empaquetamiento (hasta 35 kb), baja inmunogenicidad y baja toxicidad. Sin embargo, para muchos laboratorios, el uso de HCAdV se ve obstaculizado por el complicado procedimiento para la construcción del genoma del vector y la producción del virus. Aquí, se describe un protocolo detallado para la clonación y producción eficiente de HCAdV basado en el plásmido pAdFTC que contiene el genoma de HCAdV. La construcción de los genomas de HCAdV se basa en un sistema de vectores de clonación que utiliza endonucleasas homing (I-CeuI y PI-SceI). Cualquier gen de interés de hasta 14 kb puede ser subclonado en el vector lanzadera pHM5, que contiene un sitio de clonación múltiple flanqueado por I-CeuI y PI-SceI. Después de la liberación mediada por I-CeuI y PI-SceI del transgén del vector lanzadera, el transgén se puede insertar en el vector de clonación de HCAdV pAdFTC. Debido al gran tamaño del plásmido pAdFTC y a los largos sitios de reconocimiento de las enzimas utilizadas asociadas con una fuerte unión al ADN, es necesario un manejo cuidadoso de los fragmentos de clonación. Para la producción de virus, el genoma HCAdV es liberado por NotI digest y transfectado en una línea celular productora basada en HEK293 que expresa de manera estable la recombinasa Cre. Para proporcionar todos los genes adenovirales para la amplificación de adenovirus, se requiere la coinfección con un virus auxiliar que contenga una señal de empaquetamiento flanqueada por sitios loxP. La preamplificación del vector se realiza en células productoras cultivadas en superficies y la amplificación a gran escala del vector se lleva a cabo en matraces giratorios con células productoras cultivadas en suspensión. Para la purificación del virus, se realizan dos pasos de ultracentrifugación basados en gradientes de cloruro de cesio seguidos de diálisis. Aquí se presentan consejos, trucos y atajos desarrollados en los últimos años trabajando con este sistema vectorial HCAdV.

Introduction

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Para aplicaciones terapéuticas de genes es de gran importancia para evitar efectos secundarios citotóxicos e inmunogénicas causadas por la expresión de proteínas virales, el propio transgén o por las proteínas virales entrantes. Los vectores de adenovirus (ADV) se utilizan ampliamente para introducir ADN extraño en una amplia variedad de células para investigar el impacto de la expresión transgénica 1,2. La versión más avanzada de AdV está representado por los vectores de adenovirus de alta capacidad (HCAdV) que carecen de todas las secuencias de codificación virales 3,4 y ofreciendo con ello una capacidad de envasado de hasta 35 kb combinados c....

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Protocol

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1. Construcción del recombinante HCAdV Genomas basado en el plásmido pAdFTC

Nota: Todos los plásmidos se han descrito anteriormente 11,12 y están disponibles a petición. El procedimiento de clonación se muestra esquemáticamente en la Figura 1.

  1. Clonar un gen de interés (GOI) incluidos el promotor y señal de poliadenilación (pA) en la lanzadera de plásmido pHM5, usando una estrategia de clonación de elección, para generar pHM5-GOI.
    NOTA: Como pAdFTC es un plásmido relativamente grande, se recomienda protocolos de preparación de plásmido clásicos para evitar sheering del ADN plas....

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Results

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Se muestran ejemplos Aquí representativos para la clonación, amplificación y purificación de preparaciones HCAdV. Una visión general de la estrategia de clonación (Figura 1) y ejemplos representativos para la clonación y la liberación del genoma HCAdV por enzimas de restricción digerir son proporcionados (Figura 2). Un patrón de restricción típica después de la liberación del casete GOI-expresión de pHM5 por PI Sce I y I-Ceu I digerir y.......

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Discussion

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El protocolo que aquí se presenta permite la purificación de los vectores basados ​​en adenovirus HCAdV tipo humano 5 basado en procedimientos descritos previamente 4,12. El genoma HCAdV dentro del plásmido pAdFTC está desprovisto de todos los genes de adenovirus y sólo lleva a los 5 'y 3'-RTI y la señal de empaquetamiento. En esta estrategia, el HV AdNG163R-2 4 proporciona todos los genes necesarios para la producción de virus eficiente en trans. Esto ofrece una capacidad de envas.......

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Disclosures

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Los autores declaran que no tienen intereses financieros en competencia.

Acknowledgements

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Este trabajo fue apoyado por la subvención EH 192/5-1 (A.E.), el proyecto Transposmart (A.E.) de la UE (E-rare-2), la UWH Forschungsförderung (E.S. y W.Z.) y el programa de doctorado de la Universidad Witten/Herdecke (P.B.). J.L. recibió el apoyo de una beca del Consejo Chino de Becas y T.B. y M.G de la fundación Else Kröner-Fresenius (EKFS).

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
I-CeuINew England BiolabsR0699Sdigestión de restricción
PI-SceINew England BiolabsR0696Sdigestión de restricción
T4 LigasaNew Engand BiolabsM0202Sligadura
SwaINew England BiolabsR0604Srestricción
NotINew England BiolabsR0189Srestricción, comgestión
Fosfatasa alcalina intestinal (CIP)de ternerosNew England BiolabsM0290Sdesfosforilación de plásmidos digeridos
Higromicina BPAN BiotechP02-015selección de CRE que expresa 116 células
DMEMPAN BiotechP04-03590     Medio de cultivo celular Hek293T
Medio esencial mínimo (MEM) EaglePAN BiotechP04-08500116 medio de cultivo celular   
Dulbecco' s solución salina tampón de fosfato (DPBS)PAN BiotechP04-36500lavado de células, resuspensión de células
Frasco de almacenamiento de 250 mlSigmaCLS430281-24EAinfección de 116 células cultivadas en suspensión
500 ml centrífuga PP TubesigaSigmaCLS431123-36EAsedimentación de células de cultivo
en suspensión matraz SpinnerBellco1965-61030crecimiento de 116 células en suspensión
Ultra Clear Tubos de ultracentrífugaBeckmann Coulter344059centrifugación en gradiente de densidad
UltracentrífugaBeckmann Coultercentrifugación en gradiente
de densidad SW-41Beckmann Coultercentrifugación en gradiente de densidad
Spectrum Laboratories Spectrapor membranaVWR132129tubos de diálisis
casetes de diálisis listos para usar Thermo66383diálisis
de un disparo DH10B electrocompetente E. coliinvitrogenC4040-52transformación de reacciones de ligadura
PureYield Plasmid Midiprep SystemPromegaA2495midiprep
peqGOLD Tissue DNA Mini Kit Peqlab12-3396-02aislamiento de ADN genómico
SuperFect Transfect Reactivo de transfecciónQiagen 301305de 116 células
opti MEM (10% FBS)Gibco31985-062transfección de 116 células
iQ SYBR Green SupermixBioRad  170-8882q-PCR
CFX 96 C1000 táctil Máquina BioradqPCR
Fenol / Cloroformo / Alcohol isoamílico  Carl RothA156.1purificación de ADN
Cloruro de cesioCarl Roth8627.1centrifugación en gradiente
densidad acetato de sodio 99%Carl Roth6773.2precipitación de ADN
LB medio Carl RothX968.3medio de crecimiento bacteriano
etanol   99.8% puroCarl Roth9065.5  Precipitación y lavado del ADN
SDS 99.5%Carl Roth2326.2tampón de lisis 
EDTACarl Roth8043.2tampón de lisis 
Tris-HCl 99%Carl Roth9090.3tampón de diálisis/ lisis 
tampón glicerol 99.5%Carl Roth3783.1tampón de diálisis
MgCl2 98.5%Carl RothKK36.2tampón de diálisis
NaCl CarlRoth3957.1opcional tampón de diálisis
KH2PO4Carl Roth3904.2opcional tampón de diálisis
sacarosaCarl Roth9286.1opcional tampón de diálisis
Na2HPO4x2H2OCarl Roth4984.2Tampón de diálisis opcional
Tubos de 1,5 mlSarstedt72.730.005Almacenamiento de preparados víricos a -80 °C; C
, de

References

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  1. Benihoud, K., Yeh, P., Perricaudet, M. Adenovirus vectors for gene delivery. Curr Opin Biotechnol. 10 (5), 440-447 (1999).
  2. Crystal, R. G. Adenovirus: the first effective in vivo gene delivery vector. Hum Gene Ther. 25 (1), 3-11 (2014).
  3. Parks, R. J., et al.

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High Capacity Adenoviral VectorsAdenovirus Type 5Plasmid pAdFTCHoming EndonucleasesHEK293 Producer CellsHelper Virus Co infectionSpinner Flask AmplificationCesium Chloride PurificationUltracentrifugationDialysis Buffer Exchange

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