Summary

חזירי כמו מודול אימון עבור שחזור Microvascular הראש והצוואר

Published: September 29, 2018
doi:

Summary

כאן אנו מציגים פרוטוקול עבור השימוש הכריכה מנקב עורק הצפק סופריור חזיר כמו מודול למידה עבור שחזור microvascular הראש והצוואר.

Abstract

מודלים חיים המזכירים תנאי כירורגי של בני אדם יש צורך הדרכה-פלאפ קציר, השקה. מודלים בעלי חיים למטרות אימונים כבר זמין במשך שנים בתחומים רבים כירורגי. השתמשנו הנקבה (כי הם קלים לשימוש עבור ההליך) יורקשייר חזירים את שיקומה הראש והצוואר בבציר מנקב את העורק הצפק עמוק נחות או הכנף מנקב עורק הצפק מעולה. האתר השקה (בצוואר מום או פגם קיר בקנה הנשימה) הוכנה באמצעות ניתוח של עורק תרדמני, הפנימי, ווריד הצוואר, אשר × 3.5 זכוכית מגדלת ההגדלה שימשה השקה כפי שאנו משתמשים במקרים אנושי בחיים האמיתיים. הליך זה מדגים שיטת אימון חדשה באמצעות מודל של למידה אמין ומספק אנטומיה מפורטת בתרחיש בשידור חי. אנחנו התמקדנו זמן איסכמיה, קציר, כלי ההשקה, ועיצוב הכנף כדי להתאים את האתר פגם. מודל זה משפר את הטיפול ברקמה, עם שימוש בכלים נכונה יכולה להיות פעמים רבות כך המנתח הוא בטוח לחלוטין לפני תחילת הניתוח על בני אדם.

Introduction

שיקום לאחר ניתוח למחלות ממאירות הראש והצוואר הוא הליך קשה הקשורים עם תחלואה משמעותית. שיקום-פלאפ microvascular הוכח גם כמו הגישה תקן לבנייה מחדש של מעל 20 שנה1,2,3. -פלאפ העברה ממלאת תפקיד משמעותי בשיפור ניהול הראש והצוואר בחולי סרטן, פציעות פוסט-טראומטי ובכך לדחוף את הגבולות של כריתה כירורגית של המחלה מעבר טכניקות הקודם, וכתוצאה מכך החולה גדולה יותר איכות חיים והישרדות עוד שיעורי1,2,3. המשק השונים עבור שחזור כוללות המסתובבת להשתיל, ללא כנפיים.

התפקיד של מדפים חינם בשחזור ראש וצוואר התרחב. זה הכריכה הקשה ביותר לעבוד עם, הדורשים טיפול רגיש ומיומן. דש כשל הוא אירוע קטסטרופלי, עם תחלואה משמעותית4,5. לפיכך, שעבר הסמכה זמן נדרש כדי לפתח את הדיוק הכרחי עבור תוצאות ניתוח מוצלח3,4,5,6,7,8, 9. עקומת למידה תלולה המשויך ניתוח כזה יכול להשפיע על התוצאות עבור חולים ומשפיעים על טיפול וניהול3,4,5,6,7, 8,9. כדי להפחית את זמן ההכשרה עקומת למידה עבור כירורגים חדשים, מודל אימון יש צורך מחקה הביולוגיה האנושית ומספק דומה לתחום הכירורגי תנאים8.

מטרתו של מחקר זה היא להציג את התצוגה של Porcine כמו מודול אימון טוב עבור הראש והצוואר שחזור microvascular הדומה המקרה האנושי עם שיפור מיומנויות בצורה פעילה.

מחקר זה חקר השימוש של מודל חזירי עבור אימון עמיתים חדשים בבניה הראש והצוואר microvascular להעברה-פלאפ לספק חסכונית ופחות מלחיץ שמשלימה באימון קליניים שדה עם אמינה דומה תכונות להליכי-פלאפ. חזירים שימשו למחקרים רבים וכן מלמד מודלים שחזורים כירורגיים שונים, למשל, שחזור שד; 5 . אולם, חזירים מעולם לא שימשו שחזור הראש והצוואר מלבד במחקר שלנו עבור שחזור בקנה הנשימה עקב היצרות בקנה הנשימה10.

הרעיון היה החלה לאחר פרדריק בודין7, אשר מתארים את דש דומה עבור שחזור שד. היתרון העיקרי לצורך המחקר על המודול השני של ההכשרה microvascular הוא המודול livening פעיל עם תוצאה מיידית אמיתי של ההליך.

Protocol

מחקר זה היה מודרך ואושרו על-ידי המחלקה של מעבדה חיה משאבים, Yonsei ביו מכון המחקר, Yonsei הספר לרפואה של אוניברסיטת, מוכרת על ידי האגודה הערכת ולדאוג הסמכה של מעבדה חיה הבינלאומי. מחקר זה בעקבות ההנחיות טיפול, שימוש של חיות מעבדה של המכון של מעבדה חיה משאבים הנציבות על המועצה הלאומית למחקר מדעי הח…

Representative Results

ביצענו את ההליך על ששת החזירים: שחזור העור הצווארי פגם על שני חזירים, שחזור והכו אותי על שני חזירים, ועל דש חינם לבדוק התקן השקה וסקולרית שני חזירים. החזירים היו במעקב במשך 3 חודשים ולא היה שום סימן נוירולוגי קליני. זמן ממוצע של איסכמיה היה 5…

Discussion

תחלואה משמעותית, פגמים יכול להתרחש בתוך הראש, צוואר ממאירות המטופלים במהלך ניהול כירורגי. העברת רקמות חינם microvascular הפך חיוני עבור שחזור ברוב המקרים. הכדאיות של הכנף הוא נושא קריטי, הדורשים יציבות, מדויק טיפול של pedicle, תחושות מישוש, יכולת visuospatial, זרימה סוכן מצוין המנתח8. לפתח מיו?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו הייתה במימון, נתמך על-ידי התוכנית מחקר מדעי בסיסי דרך לאומי מחקר קרן של קוריאה (ב- NRF) במימון של משרד המדע, ICT ותכנון העתיד (2015R1C1A1A01051907). עבודה זו נתמכה גם על-ידי התוכנית מחקר מדעי בסיסי דרך לאומי מחקר קרן של קוריאה (ב- NRF) במימון של משרד המדע, ICT ותכנון העתיד (ה-NRF-2016M3A9E9941746).

Materials

Pigs XP Bio, Seoul, South Korea
Surgical Hair Removal shaver 3M
22 gage catheter B.BRAUN
syring with needle size 18 Jung Rim Medical
Intramuscular alfaxan Careside 10ml/VAL
Intramuscularxylazine Bayer
Intramuscular azaperone Sigma-aldrich 34223
Intramuscular atropine Daewon 0.5mg/A
Intramuscular cefazolin Yuhan 1g
intravenous Ketorolac Hana Pharm 30mg
Swine ansthesia mask DRE 1392
endotracheal cuff tube 6.5 mm SMITH medical 100/150/065
ansthesia Machine Dräger PRIMUS IE
2% lidocaine topical solution Taejoon
vet ointment Pfizer terramycinMisc
eye cover patch Innomed S-universal010S
betadine solution 1%. Korea Pharma
gauze 4*4 First Medical 22*30CM 320S
blade No. 23 Paragon 23
lahey retractor V.Mueller SU3960
kelly tissue scissors SOLCO 05-1990
blade No. 11 Paragon 11
surgical marking pen Aspen Surgical Regular #2750
allis V.Mueller SU4055
tie suture Covidein non-needle
3.5× surgical loupe zeiss eyemag smart
double clamp without frame V.Mueller CH7155
microscissors AESCULAP FD038R
Ringer's lactate Daehan 500ml/1bag
amoxicillin–clavulanate Ilsung 0.6g/V
Meloxicam Samil 7.5mg
propofol Dong Kook 120mg/V
intravenous KCl solution Daehan 20ml/50P
mosquito curved SOLCO 013-0111
mosquito straight SOLCO 05-1050
ethilone 10-0 suture ethicone 10/0W1756
Vicryl 3-0. ethicone 3/0W9890
buprenorphine Hanlim 0.3mg

Referencias

  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
  5. Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. Porcine model for free-flap breast reconstruction training. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).
  6. Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).
  7. Carey, J. N., et al. Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers. Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).
  8. Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting. Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).
  9. Matsumura, N. A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card. Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).
  10. Kim, W. S., et al. Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application. Scientific Reports. 7 (1), 10022 (2017).
check_url/es/58104?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Alessa, M. A., Kwak, S. H., Lee, Y. W., Kang, M., Sung, H., Ahn, S. H., Choi, E. C., Kim, W. S. Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction. J. Vis. Exp. (139), e58104, doi:10.3791/58104 (2018).

View Video