Summary

Suínos como um módulo de treinamento para reconstrução Microvascular, cabeça e pescoço

Published: September 29, 2018
doi:

Summary

Aqui nós apresentamos um protocolo para o uso da aba de perforator porco artéria epigástrica superior como um módulo de aprendizado para reconstrução microvascular, cabeça e pescoço.

Abstract

Modelos vivos que se assemelham a condições cirúrgicas dos seres humanos são necessários para treinamento grátis-flap colheita e anastomose. Modelos animais para fins de treinamento estão disponíveis há anos em muitos campos cirúrgicos. Usamos a fêmea (porque eles são fáceis de manusear para o procedimento) Yorkshire porcos para a reconstrução de cabeça e pescoço pela colheita perforator a artéria epigástrica inferior profunda ou a aba de perforator artéria epigástrica superior. O site de anastomose (defeito de pele do pescoço ou defeito da parede traqueal) foi preparado através da dissecação da artéria carótida comum e da veia jugular interna, na qual 3,5 × ampliação lupa foi usada para anastomose como nós usamos em casos humanos na vida real. Este procedimento demonstra um novo método de treinamento usando um modelo de aprendizagem confiável e fornece uma anatomia detalhada em um cenário ao vivo. Enfocamos o tempo de isquemia, colheita, anastomose de vasos e projetar a tampa para caber o local do defeito. Este modelo melhora a manipulação do tecido e com o uso de instrumentos adequados pode ser repetido muitas vezes para que o cirurgião está plenamente confiante antes de iniciar a cirurgia em humanos.

Introduction

Reconstrução após a cirurgia para as doenças malignas de cabeça e pescoço é um procedimento difícil, associado com morbidade significativa. Reconstrução de aba livre microvascular foi estabelecida bem como a abordagem padrão para a reconstrução de mais de 20 anos,1,2,3. Transferência grátis-flap desempenha um papel significativo na melhoria da gestão de cabeça e pescoço em pacientes com câncer e em lesões pós-traumáticos, assim, empurrando os limites de uma excisão cirúrgica da doença, além de técnicas anteriores, resultando em maior paciente qualidade de vida e sobrevivência mais taxas1,2,3. Os vários retalhos para reconstrução incluem rotacionais, enxerto e livre de retalhos.

Expandiu-se o papel de retalhos livres na reconstrução cabeça e pescoço. É a aba mais difíceis de trabalhar, exigindo manipulação hábil e delicada. Falha de flap é um evento catastrófico, com significativa morbidade4,5. Assim, o tempo de treinamento considerável é necessário para desenvolver a precisão necessária para o sucesso de resultados cirúrgicos3,4,5,6,7,8, 9. A curva de aprendizagem associada com uma cirurgia tão pode influenciar o resultado para os pacientes e afetam o tratamento de gestão3,4,5,6,7, 8,9. Para reduzir o tempo de treinamento e curva de aprendizado para novos cirurgiões, um modelo de formação, é necessário que imita a biologia humana e fornece condições de campo cirúrgico semelhante8.

O objetivo deste estudo é mostrar a visibilidade dos suínos como um módulo de boa formação para a reconstrução cabeça e pescoço microvascular, assemelhando-se o caso humano com habilidades melhoradas na forma ativa.

Este estudo investigou a utilização de um modelo de suínos para novos colegas de treinamento na cabeça e pescoço microvascular reconstrução para transferência grátis-flap proporcionar um baixo custo e menos estressante complementam ao treinamento de campo clínico com confiantemente semelhantes recursos para procedimentos de aba livre. Porcos têm sido utilizados por muitos estudos e como ensino modelos para várias reconstruções cirúrgicas, por exemplo, a reconstrução da mama; 5 no entanto, os porcos nunca foram usados para reconstrução cabeça e pescoço, exceto em nosso estudo de reconstrução traqueal devido a estenose traqueal10.

A ideia foi iniciada após Frederic Bodin7, que descrevem o flap semelhante para reconstrução da mama. A principal vantagem para o estudo sobre o outro módulo de treinamento microvascular é o módulo livening ativo com um resultado real imediato do processo.

Protocol

Este estudo foi encaminhado e aprovado pelo departamento de laboratório Animal recursos, Yonsei Biomedical Research Institute, Yonsei University College of Medicine, credenciado pela Associação de avaliação e acreditação do cuidado de Animal de laboratório Internacional. Este estudo seguiu as orientações para o cuidado e o uso de animais de laboratório do Instituto de laboratório Animal recursos Comissão no Conselho Nacional de pesquisa de Ciências da vida. Todos os suínos foram aclimatados para uma semana…

Representative Results

Realizamos o procedimento em seis porcos: reconstrução de defeito de pele cervical em dois porcos, reconstrução traqueal em dois porcos e retalho livre para testar o dispositivo de anastomose vascular em dois porcos. Os porcos foram monitorados por 3 meses e não havia nenhum sinal clínico de déficit neurológico. O tempo médio para isquemia foi 50 min (gama, 35-80 min); o tempo diminuíram o procedimento foi repetido. A …

Discussion

Defeitos e Morbidade significativa podem ocorrer na cabeça e pescoço pacientes malignidade durante tratamento cirúrgico. Transferência de tecido livre microvascular tornou-se essencial para a reconstrução na maioria dos casos. A viabilidade do retalho é um problema crítico, que exige estabilidade, precisa de manipulação do pedículo, sensação tátil, capacidade visuo e excelente fluxo operacional do cirurgião8. Para desenvolver essas habilidades, é preciso prática extensiva com um t…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi financiado e apoiado pelo programa de pesquisa de ciência básica através da nacional Research Foundation de Coreia (NRF) financiado pelo Ministério da ciência, TIC e futuro planejamento (2015R1C1A1A01051907). Este trabalho também foi apoiado pelo programa de pesquisa de ciência básica através da nacional Research Foundation de Coreia (NRF) financiado pelo Ministério da ciência, TIC & futuro planejamento (NRF-2016M3A9E9941746).

Materials

Pigs XP Bio, Seoul, South Korea
Surgical Hair Removal shaver 3M
22 gage catheter B.BRAUN
syring with needle size 18 Jung Rim Medical
Intramuscular alfaxan Careside 10ml/VAL
Intramuscularxylazine Bayer
Intramuscular azaperone Sigma-aldrich 34223
Intramuscular atropine Daewon 0.5mg/A
Intramuscular cefazolin Yuhan 1g
intravenous Ketorolac Hana Pharm 30mg
Swine ansthesia mask DRE 1392
endotracheal cuff tube 6.5 mm SMITH medical 100/150/065
ansthesia Machine Dräger PRIMUS IE
2% lidocaine topical solution Taejoon
vet ointment Pfizer terramycinMisc
eye cover patch Innomed S-universal010S
betadine solution 1%. Korea Pharma
gauze 4*4 First Medical 22*30CM 320S
blade No. 23 Paragon 23
lahey retractor V.Mueller SU3960
kelly tissue scissors SOLCO 05-1990
blade No. 11 Paragon 11
surgical marking pen Aspen Surgical Regular #2750
allis V.Mueller SU4055
tie suture Covidein non-needle
3.5× surgical loupe zeiss eyemag smart
double clamp without frame V.Mueller CH7155
microscissors AESCULAP FD038R
Ringer's lactate Daehan 500ml/1bag
amoxicillin–clavulanate Ilsung 0.6g/V
Meloxicam Samil 7.5mg
propofol Dong Kook 120mg/V
intravenous KCl solution Daehan 20ml/50P
mosquito curved SOLCO 013-0111
mosquito straight SOLCO 05-1050
ethilone 10-0 suture ethicone 10/0W1756
Vicryl 3-0. ethicone 3/0W9890
buprenorphine Hanlim 0.3mg

Referencias

  1. Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review. Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).
  2. Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review. Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).
  3. Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps. British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).
  4. Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training. The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).
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Citar este artículo
Alessa, M. A., Kwak, S. H., Lee, Y. W., Kang, M., Sung, H., Ahn, S. H., Choi, E. C., Kim, W. S. Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction. J. Vis. Exp. (139), e58104, doi:10.3791/58104 (2018).

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