Summary

הכנת חלבון הפקת תאים סינתטיים באמצעות שולפת תא חינם בקטריאלי, ליפוזומים והעברת אמולסיה

Published: April 27, 2020
doi:

Summary

פרוטוקול זה מתאר את השיטה, חומרים, ציוד ושלבים עבור הכנת מלמטה למעלה של RNA וחלבון הפקת תאים סינתטיים. התא הפנימי מימית של התאים הסינתטיים הכיל S30 ליפוסט חיידקי כדורית בתוך bilayer ליפיד (כלומר, ליפוזומים יציבים), באמצעות העברת תחליב המים בשמן שיטה.

Abstract

גישת ההרכבה מלמטה-למעלה לבניית תאים סינתטיים היא כלי יעיל לבידוד ולחקירת תהליכים סלולאריים בסביבה תא מחקה. יתר על כן, הפיתוח של מערכות ביטויים ללא תא הפגינו את היכולת ליצור מחדש את ייצור החלבון, שעתוק ותהליכי תרגום (DNA → RNA ← חלבון) באופן מבוקר, רתימת ביולוגיה סינתטית. כאן אנו מתארים פרוטוקול להכנת מערכת ביטוי ללא תא, כולל הייצור של ליפוסט בקטריאלי חזק ו encapsulating זה ליפוסט בתוך כולסטרול עשיר מבוסס השומנים ענק unilamellar שלפוחיות (GUVs) (כלומר, ליפוזומים יציבים), כדי ליצור תאים סינתטיים. הפרוטוקול מתאר את השיטות להכנת הרכיבים של התאים הסינתטיים, כולל ייצור ליטים חיידקיים פעילים, ואחריו הכנה מפורטת של שלב אחר שלב של התאים הסינתטיים המבוססים על שיטת העברת אמולסיה בשמן מים. אלה מקלים על ייצור מיליוני תאים סינתטיים באופן פשוט ובמחיר נוח עם רב-תכליתיות גבוהה להפקת סוגים שונים של חלבונים. התאים הסינתטיים המתקבלים ניתן להשתמש כדי לחקור את הייצור של חלבון/RNA ופעילות בסביבה מבודדת, האבולוציה מכוונת, וגם כפלטפורמת משלוח סמים מבוקרת לייצור על פי דרישה של חלבונים טיפוליים בתוך הגוף.

Introduction

תאים סינתטיים הם חלקיקים כמו תא מלאכותי, מחקה פונקציות אחת או מרובות של תא חי, כגון היכולת לחלק, אינטראקציה ממברנה טופס, ולסנתז חלבונים על בסיס קוד גנטי1,2,3. תאים סינתטיים התוחמים את התאים ללא חלבון סינתזה (CFPS) מערכות בעלי מודולריות גבוהים בשל יכולתם לייצר חלבונים שונים רצפי RNA לאחר שינויים בתבנית ה-DNA. הצגת חלופה אטרקטיבית לגישות הנוכחיות של ייצור החלבון, מערכות cfps מבוססות על תאי ליפוסט, רכיבים מטוהרים או רכיבים סינתטיים וכוללים את כל מכונות התמלול והתרגום הדרושות לסינתזה חלבונים כגון ריבוזומים, RNA פולימראז, חומצות אמינו ומקורות אנרגיה (למשל, 3-פוספוליגליט ואדלין טריפוספט)4,5,6,7,8,9. האנקפסולציה של מערכת CFPS בתוך שלפוחיות השומנים מאפשר ייצור פשוט ויעיל של חלבונים ללא תלות תא חי10. יתר על כן, פלטפורמה זו מאפשרת סינתזה של פפטידים שעלולים לבזות בתוך תאים טבעיים, ייצור של חלבונים רעילים לתאים חיים, ולשנות חלבונים עם חומצות אמינו לא טבעיות11,12. תאים סינתטיים שימשו כמודל למטרות מחקר החוקרים את רכיבי התא המינימלי הנדרש כדי לאפשר את החיים הסלולריים מנקודת מבט אבולוציונית1,13. תאים סינתטיים גם שימשו כדי לבנות וליישם מעגל גנטי וכמודלים עבור אבולוציה מכוונת14,15,16. מחקרים אחרים התמקדו ביכולת של תאים סינתטיים לחקות את הפעילות הביולוגית של תאים טבעיים, במטרה להחליף תאים טבעיים פגומים, כגון תאים ביתא בחולים עם סוכרת17. יתר על כן, היכולת של אלה CFPS encapsulating תאים סינתטיים כדי לייצר מגוון של חלבונים טיפוליים ממחיש את הפוטנציאל שלה להיות שולבו לשימוש קליני18.

כאן אנו מתארים מלמטה-up פרוטוקול בקנה מידה (איור 1) לייצור של רנ א ו חלבון להפקת תאים סינתטיים מבוסס על מערכת cfps מקומסת ב vesicle השומנים. זה מראה את השימוש הפוטנציאלי של פלטפורמות תאים סינתטיים כמו מערכות משלוח התרופה הרומן לייצור באתר של תרופה לחלבון טיפולית ב vivo19. מחקרים קודמים חקרו את האופטימיזציה של התגובה cfps ואת תהליכי ההכנה של התא ליפוסט4,8,20. יתר על כן, טכניקות מספר הוחלו עבור ליפוכי תא בגודל הכנה, כגון microflu, מבוססי פולימר שיטות ייצוב מבוסס droplet21,22,23, אשר גם שונים ליפוזומים ‘ הרכב השומנים24,25,26. בפרוטוקול המוצג, תאים סינתטיים מיוצרים באמצעות שיטת העברת אמולסיה בשמן מים ותהליך עטיפת האנקפסולציה מבוצע בטמפרטורות נמוכות (< 4 ° c)5,10,24,27,28. תנאים אלה מתון נמצאו חיוביות עבור שמירה על היושרה הביו תפקודית של המכונות המולקולריות, כלומר ריבוזומים וחלבונים27,29,30. הרכב השומנים של החלקיקים מורכב הן של כולסטרול והן 1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-לגליקו-3-פוספולולין (POPC). הראשון נמצא בכל ממברנות התא של היונקים, והוא חיוני עבור יציבות, קשיחות וחדירות הפחתת הקרום, ואת האחרון מחקה ממגלית פוספוליפיד הרכב11,13. תמלול ותרגום מכונות מולקולריות של הסלולר מופקים BL21 (DE3) es, מאמץ קולי (E. coli) זן, אשר הופך עם pAR1219 פלמביטוי יתר T7 RNA פולימראז כדי להגדיל את העוצמה cfps וסינתזה חלבון. מערכת זו שימש כדי לייצר חלבונים אבחון וטיפולי, עם משקולות מולקולרים של עד 66 kda ב מבחנה ב vivo19,31. הפרוטוקול הבא מספק שיטה פשוטה ואפקטיבית לייצור מערכת התאים הסינתטית, שיכולה לענות על מגוון רחב של שאלות עקרוניות הקשורות לסינתזה החלבונים בטבע ויכולה לשמש גם ליישומים של משלוחי סמים.

Protocol

הערה: האיור המלא של פרוטוקול הייצור של התאים הסינתטיים מוצג באיור 1. על פי צורכי המשתמש, ביטוי החלבון (סעיף 3.2) והיווצרות תאים סינתטיים (סעיף 4) חלקים מהפרוטוקול יכול להתבצע גם באופן עצמאי (עם כמה עיבודים). 1. הכנת S30-T7 ליפוסט פס הצלחת ה -E. coli BL21 (DE3) חיידקי…

Representative Results

אנו מציגים פרוטוקול להכנת תאים סינתטיים על-ידי encapsulating S30-T7 CFPS מערכת מבוסס על BL21 E. coli בתוך שלפוחית השומנים. תיאור סכמטי של תהליך ההכנה הכולל תמונה של כל שלב מוצג באיור 2. הצלחת תהליך ההכנה של התא הסינתטי תלויה בביצועים המתאימים של כל שלב ומושפע מפרמטרים שונים. הפרוטוקול ?…

Discussion

פרוטוקול זה מציג שיטה פשוטה ובמחיר נוח לייצור כמויות גדולות של תאים סינתטיים המייצרים חלבונים. התשואה של תאים פעילים תלויה בביצוע קפדני ומדויק של הפרוטוקול עם דגש על מספר שלבים קריטיים. בסעיף ההכנה ליפוסט של שיטה זו, חיוני להגיע לצפיפות החיידקים המתאימה לפני הפירוק התאים כדי להשיג כמות מ?…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכת על ידי ERC-STG-2015-680242.

המחברים גם מכירים בתמיכת מרכז הסרטן המשולב של הטכניון (TICC); מכון ראסל ברי לננוטכנולוגיה; המרכז הבינתחומי הראשי למדעי החיים & הנדסה; משרד הכלכלה הישראלי למענק כמאנה (52752); משרד המדע של הטכנולוגיה והחלל – משרד המדען הראשי (3-11878); הקרן הישראלית למדע (1778/13, 1421/17); האגודה הישראלית לסרטן (2015-0116); הקרן הגרמנית-ישראלית למחקר ופיתוח מדעי לגרנט הצעיר GIF (I-2328-1139.10/2012); האיחוד האירופי FP-7 IRG תוכנית עבור מענק אינטגרציה לקריירה (908049); מרכז המחקר פוספוליפיד מענק; קרן רוזנבלט לחקר הסרטן, מלגת קרן משפחת מאלון; וקרן משפחת אונגר. א. שרדר מכיר במלגות אלון וטאוב. א. אדיר מכיר במלגות שרמן וגוטוויה. ז. חן מכיר במלגת שרמן. נ. קרינסקי מכיר בתוכנית הדוקטורט לנשים ברונית אריאן דה רוטשילד מקרן רוטשילד בקיסריה.

Materials

A. Reagents required for step 1 (S30-T7 lysate preparation)
E.coli BL21 (DE3)  NEB C2527 E.coli BL21 (DE3).
pAR1219 Sigma T2076 TargeTron vector for transformation.
Stock solution of 50 mg/mL Ampicillin Sigma A9518 Stored at -20 °C.
10 g/L Bacto-tryptone BD Bioscience  211705 For preparation of Luria Bertani (LB) agar (1.5%) plate.
10 g/L Sodium chloride (NaCl) Bio-Lab 19030591
5 g/L Bacto-Yeast extract BD Bioscience  212750
15 g/L Agar agar purified Merck 1.01614.5007
50 µg/mL Ampicillin Sigma A9518
10 g/L Bacto-tryptone BD Bioscience  211705 For preparation of Luria Bertani (LB) media (20 mL).
10 g/L Sodium chloride (NaCl) Bio-Lab 19030591
5 g/L Bacto-Yeast extract BD Bioscience  212750
50 µg/mL Ampicillin Sigma A9518
12 g/L Bacto-tryptone BD Bioscience  211705 For preparation of Terrific Broth (TB) media (1 L).
24 g/L Bacto-Yeast extract BD Bioscience  212750
4% (v/v) Glycerol anhydrous Bio-Lab 7120501
2.32 g/L K2HPO4 Spectrum chemical P1383
12.54 g/L KH2PO4 Spectrum chemical P1380
 50 µg/mL Ampicillin Sigma A9518
Stock solution of 100 mM Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG)  INALCO INA-1758-1400 Filtered using 0.2 µm hydrophilic PVDF syringe filter.
Stock solution of 0.1 M dithiothreitol (DTT)  TCI D1071 Filtered using 0.2 µm hydrophilic PVDF syringe filter.
10 mM Tris-acetate at pH = 7.4 Sigma T1503 S30 lysate buffer (1.5 L)
14 mM magnesium acetate Merck 1.05819.0250
60 mM potassium acetate Carlo Erba 470147
1 mM DTT TCI D1071
0.5 mL/L 2-mercaptoethanol Sigma M6250
Equipment required for step 1
100 mL sterilized Erlenmeyer flasks Thermo Scientific 50-154-2846 2 flasks
2 L sterilized Erlenmeyer flasks with baffles KIMAX-KIMBLE 25630 2 flasks
Floor incubator shaker MRC TOU-120-2 Laboratory shaker incubator 450x450mm, 400rpm, 70 °C
Centrifuge Thermo Scientific 75004270 (75003340) – Fiberlite F10-6 x 100 LEX Fixed-Angle Rotor.
Should enable at least 13,000 x g.     * Pre-cooled to 4 °C.
High pressure homogenizer AVESTIN EmulsiFlex-C3 Pre-cooled to 4 °C.
-80oC freezer SO-LOW U85-18
Sterilized 1.5 mL plastic tubes Eppendorf 30120086 Preferably pre-cooled to -20 °C.
Spectrophotometer TECAN IN-MNANO Infinite M200 pro
96-well transparent plate Thermo Scientific 167008
Sterilized graduated cylinder Corning
Sterilized centrifuge tubes Eppendorf 30120086 Preferably pre-cooled to -20 °C.
Sterilized pipette tips Corning Preferably pre-cooled to -20 °C.
Crushed ice bucket Bel-Art M18848-4001
Small liquid nitrogen tank NALGENE 4150-4000
B. Reagents required for step 3 (lipids in oil solution preparation):
1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (POPC) Lipoid 556400 Powder
Cholesterol Sigma C8667 Powder
Chloroform Bio-Lab 3082301
Mineral oil Sigma M5904 Light oil
Equipment required for step 2
Vortex mixer Scientific industries SI-0256
Heating block TECHNE FDB03AD Pre-heated to 80 °C.
Should enable controlled temperature. 
2 mL screw neck glass vials CSI Analytical Innovations VT009M-1232 For a larger scale, use 50 mL falcons and evaporate the chloroform using rotary evaporator.
9mm Screw Cap CSI Analytical Innovations C395R-09LC
C. Reagents required for step 3 (inner and feeding reaction mixtures):
HEPES Spectrum H1089 1 M HEPES-KOH (pH = 8) – pH buffer
Potassium hydroxide (KOH) Frutarom 55290
1 M Magnesium acetate Merck 1.05819.0250 Co-factor and negative charge stabilizor.
1 M Potassium acetate Carlo Erba 470147 Negative charge stabilizor.
5.2 M Ammonium acetate Merck 1.01116.1000 Stabilizes negative charge.
50% (w/v) Polyethylene glycol 6000 (PEG) Merck 8.07491.1000 Increases the concentration of the macromolecules.
0.5 M 3-phosphoglycerate (3-PGA) Sigma P8877 Secondary energy source.
50 mM Amino acids mixture I Sigma LAA21-1KT Amino acids additive.
Contains: 50 mM of each of the following 17  natural amino acids – alanine, arginine, asparagine, aspartic acid, cysteine, glutamine, glutamic acid, glycine, histidine, isoleucine, leucine, lysine, methionine, proline, serine, threonine, and valine.
50 mM Amino acids mixture II Sigma LAA21-1KT Amino acids additive.
Contains: 50 mM of each of the following 3 natural amino acids – tryptophan, phenylalanine, and tyrosine.
100 mM Adenine triphosphate (ATP) Sigma A3377 Nucleotides & energy source.
50 mM Guanidine triphosphate (GTP) Sigma G8877 Nucleotides & energy source.
100 mM Uridine triphosphate (UTP) ACROS ORGANICS 226310010 Nucleotides additive.
100 mM Isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside (IPTG) INALCO INA-1758-1400 Genes expression induction.
2 M Sucrose J.T. Baker 1933078 Generating a density gradient.
2 M Glucose Sigma 16301 Generating a density gradient.
H2O UltraPure Water (UPW) Bio-Lab 2321777500 DNase & RNase free
S30-T7 lysate _ _ Prepared at step 1.                                                                        Source of transcription & translation components.
Store at -80 °c, thaw on crashed ice just before usage. 
Stock of DNA plasmid of choice _ _ Contains the sequence for the requested protein.
Under T7 promotor
D. Equipment required for step 4 (synthetic cells preparation)
Floor incubator shaker or Thermomixer MRC TOU-120-2 Laboratory shaker incubator 450x450mm, 400rpm, 70 °C
PHMT Grant Bio  PSC18 Thermomixer
Centrifuge Thermo Scientific 75004270 (75003629) – TX-400 4 x 400mL Swinging Bucket Rotor.
Suited for 15 mL sized tubes.
Preferably swinging buckets.
Should enable at least 1000 x g.
Pre-cooled to 4 °C.
Table centrifuge Thermo Scientific 75002420 (75003424) – 24 x 1.5/2.0mL rotor with ClickSeal.
Suited for Eppendorf vials.
Pre-cooled to 4 °C.
Vortex mixer Scientific industries SI-0256
Crushed ice bucket Bel-Art M18848-4001
2 mL screw neck glass vials CSI Analytical Innovations VT009M-1232
Sterile 15 mL plastic tubes Thermo Scientific 339651
Sterilized 1.5 mL plastic tubes Eppendorf 30120086
Sterilized pipette tips Corning Sterilized by autoclave.

Referencias

  1. Blain, J. C., Szostak, J. W. Progress toward synthetic cells. Annual review of biochemistry. 83, 615-640 (2014).
  2. Richmond, D. L., et al. Forming giant vesicles with controlled membrane composition, asymmetry, and contents. Proceedings of the National Academy of Sciences. 108 (23), 9431-9436 (2011).
  3. Deshpande, S., Spoelstra, W. K., van Doorn, M., Kerssemakers, J., Dekker, C. Mechanical division of cell-sized liposomes. ACS Nano. 12 (3), 2560-2568 (2018).
  4. Liu, D. V., Zawada, J. F., Swartz, J. R. Streamlining Escherichia coli S30 extract preparation for economical cell-free protein synthesis. Biotechnology Progress. 21 (2), 460-465 (2005).
  5. Stano, P. Gene Expression Inside Liposomes: From Early Studies to Current Protocols. Chemistry-A European Journal. , (2019).
  6. Lewandowski, B., et al. Sequence-specific peptide synthesis by an artificial small-molecule machine. Science. 339 (6116), 189-193 (2013).
  7. Li, J., et al. Cogenerating synthetic parts toward a self-replicating system. ACS Synthetic Biology. 6 (7), 1327-1336 (2017).
  8. Kim, T. W., et al. An economical and highly productive cell-free protein synthesis system utilizing fructose-1,6-bisphosphate as an energy source. Journal of Biotechnology. 130 (4), 389-393 (2007).
  9. Kim, T. W., et al. Simple procedures for the construction of a robust and cost-effective cell-free protein synthesis system. Journal of Biotechnology. 126 (4), 554-561 (2006).
  10. Noireaux, V., Libchaber, A. A vesicle bioreactor as a step toward an artificial cell assembly. Proceedings of the National Academy of Sciences. 101 (51), 17669-17674 (2004).
  11. He, M., He, Y., Luo, Q., Wang, M. From DNA to protein: No living cells required. Process Biochemistry. 46 (3), 615-620 (2011).
  12. Casteleijn, M. G., Urtti, A., Sarkhel, S. Expression without boundaries: cell-free protein synthesis in pharmaceutical research. International Journal of Pharmaceutics. 440 (1), 39-47 (2013).
  13. Luisi, P. L., Ferri, F., Stano, P. Approaches to semi-synthetic minimal cells: a review. Naturwissenschaften. 93 (1), 1-13 (2006).
  14. Adamala, K. P., Martin-Alarcon, D. A., Guthrie-Honea, K. R., Boyden, E. S. Engineering genetic circuit interactions within and between synthetic minimal cells. Nature Chemistry. 9 (5), 431-439 (2017).
  15. Ding, Y., Contreras-Llano, L. E., Morris, E., Mao, M., Tan, C. Minimizing Context Dependency of Gene Networks Using Artificial Cells. ACS Applied Materials & Interfaces. 10 (36), 30137-30146 (2018).
  16. Arnold, F. H. Design by directed evolution. Accounts of Chemical Research. 31 (3), 125-131 (1998).
  17. Chen, Z., et al. Synthetic beta cells for fusion-mediated dynamic insulin secretion. Nature Chemical Biology. 14 (1), 86-93 (2018).
  18. Mohr, B. P., Retterer, S. T., Doktycz, M. J. While-you-wait proteins? Producing biomolecules at the point of need. Expert Review of Proteomics. 13 (8), 707-709 (2016).
  19. Krinsky, N., et al. Synthetic Cells Synthesize Therapeutic Proteins inside Tumors. Advanced Healthcare Materials. 7 (9), 1701163 (2018).
  20. Kim, T. W., Kim, D. M., Choi, C. Y. Rapid production of milligram quantities of proteins in a batch cell-free protein synthesis system. Journal of Biotechnology. 124 (2), 373-380 (2006).
  21. Deng, N. N., Yelleswarapu, M., Zheng, L., Huck, W. T. Microfluidic assembly of monodisperse vesosomes as artificial cell models. Journal of the American Chemical Society. 139 (2), 587-590 (2016).
  22. Deshpande, S., Caspi, Y., Meijering, A. E., Dekker, C. Octanol-assisted liposome assembly on chip. Nature Communications. 7, 10447 (2016).
  23. Göpfrich, K., et al. One-Pot Assembly of Complex Giant Unilamellar Vesicle-Based Synthetic Cells. ACS synthetic biology. , (2019).
  24. Fujii, S., et al. Liposome display for in vitro selection and evolution of membrane proteins. Nature Protocols. 9 (7), 1578 (2014).
  25. Periasamy, A., et al. Cell-free protein synthesis of membrane (1,3)-beta-d-glucan (curdlan) synthase: co-translational insertion in liposomes and reconstitution in nanodiscs. Biochim Biophys Acta. 1828 (2), 743-757 (2013).
  26. Kalmbach, R., et al. Functional cell-free synthesis of a seven helix membrane protein: in situ insertion of bacteriorhodopsin into liposomes. Journal of Molecular Biology. 371 (3), 639-648 (2007).
  27. Nishimura, K., et al. Cell-free protein synthesis inside giant unilamellar vesicles analyzed by flow cytometry. Langmuir. 28 (22), 8426-8432 (2012).
  28. Rampioni, G., et al. Synthetic cells produce a quorum sensing chemical signal perceived by Pseudomonas aeruginosa. Chemical Communications. 54 (17), 2090-2093 (2018).
  29. Stano, P., Kuruma, Y., de Souza, T. P., Luisi, P. L. . Biosynthesis of proteins inside liposomes. , 127-145 (2010).
  30. Pautot, S., Frisken, B. J., Weitz, D. A. Production of unilamellar vesicles using an inverted emulsion. Langmuir. 19 (7), 2870-2879 (2003).
  31. Krinsky, N., et al. A Simple and Rapid Method for Preparing a Cell-Free Bacterial Lysate for Protein Synthesis. PLoS One. 11 (10), 0165137 (2016).
  32. Pédelacq, J. D., Cabantous, S., Tran, T., Terwilliger, T. C., Waldo, G. S. Engineering and characterization of a superfolder green fluorescent protein. Nature Biotechnology. 24 (1), 79 (2006).
  33. Osawa, M., Erickson, H. P. Liposome division by a simple bacterial division machinery. Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (27), 11000-11004 (2013).
  34. Merkle, D., Kahya, N., Schwille, P. Reconstitution and anchoring of cytoskeleton inside giant unilamellar vesicles. ChemBioChem. 9 (16), 2673-2681 (2008).
  35. Vleugel, M., Roth, S., Groenendijk, C. F., Dogterom, M. Reconstitution of basic mitotic spindles in spherical emulsion droplets. Journal of Visualized Experiments. , e54278 (2016).
  36. Bayoumi, M., Bayley, H., Maglia, G., Sapra, K. T. Multi-compartment encapsulation of communicating droplets and droplet networks in hydrogel as a model for artificial cells. Scientific Reports. 7, 45167 (2017).
  37. Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free protein synthesis: applications come of age. Biotechnology Advances. 30 (5), 1185-1194 (2012).
check_url/es/60829?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Adir, O., Sharf-Pauker, N., Chen, G., Kaduri, M., Krinsky, N., Shainsky-Roitman, J., Shklover, J., Schroeder, A. Preparing Protein Producing Synthetic Cells using Cell Free Bacterial Extracts, Liposomes and Emulsion Transfer. J. Vis. Exp. (158), e60829, doi:10.3791/60829 (2020).

View Video