Summary

Isolamento, trasfezione e cultura a lungo termine di cardiomiociti per topi e ratti adulti

Published: October 10, 2020
doi:

Summary

Qui, presentiamo un protocollo per l’isolamento, la trasfezione e la cultura a lungo termine dei cardiomiociti adulti di topi e ratti.

Abstract

La coltura ex vivo dei cardiomiociti di mammiferi adulti (CM) presenta il sistema sperimentale più rilevante per lo studio in vitro della biologia cardiaca. I VM di mammiferi adulti sono cellule terminalmente differenziate con capacità proliferative minima. Lo stato post-mitotico dei VM adulti non solo limita la progressione del ciclo cellulare cardiomiocato, ma limita anche la coltura efficiente delle CM. Inoltre, la cultura a lungo termine delle CCI adulte è necessaria per molti studi, come la proliferazione CM e l’analisi dell’espressione genica.

Il topo e il ratto sono i due animali da laboratorio preferiti da utilizzare per l’isolamento cardiomiocato. Mentre la cultura a lungo termine dei CCI ratti è possibile, i VM per topi adulti sono suscettibili alla morte e non possono essere sevati più di cinque giorni in condizioni normali. Pertanto, vi è una necessità critica di ottimizzare l’isolamento delle cellule e il protocollo di coltura a lungo termine per le CCI murine adulte. Con questo protocollo modificato, è possibile isolare con successo e coltura sia per topi adulti e ratto CMs per più di 20 giorni. Inoltre, l’efficienza della trasfezione del siRNA di CM isolato è significativamente aumentata rispetto ai rapporti precedenti. Per l’isolamento CM del topo adulto, il metodo di perfusione Diatrofio viene utilizzato con una soluzione enzimatica ottimale e con tempo sufficiente per la completa dissociazione della matrice extracellulare. Al fine di ottenere CM ventricolari puri, entrambi gli attri sono stati sezionati e scartati prima di procedere con la dissociazione e la placcatura. Le cellule sono state disperse su una piastra rivestita di laminina, che ha permesso un attaccamento efficiente e rapido. I VM sono stati autorizzati ad accontentarsi di 4-6 h prima della trasfezione del siRNA. I supporti di coltura sono stati aggiornati ogni 24 h per 20 giorni, e successivamente, i CM sono stati fissati e macchiati per marcatori cardiaci specifici come La troponina e marcatori del ciclo cellulare come KI67.

Introduction

Le malattie cardiache sono una delle principali cause di morte in tutto il mondo. Quasi tutti i tipi di lesioni cardiache si tras danno una significativa perdita di cardiomiociti adulti (CM). I cuori dei mammiferi adulti non sono in grado di riparare le loro lesioni cardiache a causa della natura senescente del CM1 adulto. Così, qualsiasi insulto al cuore dei mammiferi adulti si traduce in una perdita permanente di CMs, che porta a una ridotta funzione cardiaca e insufficienza cardiaca. A differenza dei mammiferi adulti, piccoli animali come il pesce zebra e i cuori di nuovatta possono rigenerare le loro lesioni cardiache attraverso la proliferazione CMesistente 2,3,4. È in corso uno sforzo mondiale per trovare un nuovo intervento terapeutico per le lesioni cardiache tramite approcci prolifertivi e non proliferative. Negli ultimi decenni, sono stati sviluppati vari tipi di modelli genetici di topo per studiare le lesioni cardiache e la riparazione. Tuttavia, l’utilizzo di modelli animali in vivo continua ad essere un approccio costoso con l’ulteriore complessità per decifrare un meccanismo autonomo dalle cellule dagli effetti secondari. Inoltre, i sistemi in vivo sono difficili da analizzare CM effetti specifici di un intervento farmacologico che induce la segnalazione cardioprotettiva dal CM.

Inoltre, la cultura a lungo termine delle CCI adulte è necessaria per eseguire analisi di proliferazione cm. I saggi di proliferazione CM richiedono un minimo di 4-5 giorni affinché le cellule siano indotte nel ciclo cellulare e per ottenere dati accurati dopo di che. Inoltre, gli studi che utilizzano cM isolati per studi elettrofisiologici, screening farmacologici, studidi tossicità e studi sull’omeostasi di Ca sono tutti bisognosi di un sistema dicoltura migliorato 5,6,7. Inoltre, studi recenti mostrano il significato cardioprotettivo delle citochine secrete dai CMs (cardiocine)8,9. Al fine di studiare il ruolo terapeutico e il meccanismo molecolare di queste cardiochine durante la riparazione e la rigenerazione del cuore, è necessaria una coltura prolungata.

Le CCI ratto adulte sono sufficientemente robuste per l’isolamento a una cellula e la coltura a lungo termine in un sistema in vitro10,11,12. Tuttavia, i CIM per topi adulti sono di grande interesse per gli analisi in vitro, a causa della disponibilità di una varietà di modelli murini geneticamente modificati, che consente la progettazione e l’esecuzione di varie analisi innovative che non sono possibili con il ratto CM13. A differenza dell’isolamento CM del ratto adulto, è piuttosto difficile ottenere una sospensione a un solo cellula dai cuori dei topi adulti, e la cultura a lungo termine delle VM per topi adulti nella cultura è ancora più impegnativa.

L’isolamento CM adulto dai cuori di topo e ratto utilizzando un sistema Langendorff è stato precedentemente stabilito per studiare la funzione CM5,14,15. Qui, abbiamo descritto in dettaglio i protocolli per l’isolamento CM adulto da ratti e topi, così come una coltura a lungo termine modificata, la trasfezione e la proliferazione CM di cellule isolate.

Protocol

Tutti gli esperimenti devono essere eseguiti in conformità con le linee guida della Guida per la cura e l’uso di animali da laboratorio pubblicata dal National Institute of Health (NIH) degli Stati Uniti. Tutti i protocolli visualizzati nel video sono stati approvati dall’Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) dell’Università di Cincinnati, College of Medicine. 1. Preparazione prima dell’estrazione cardiaca da topi adulti (e ratti) Preparare le corrispondenti soluzioni…

Representative Results

L’attuale protocollo modificato consente un isolamento efficiente e la coltura di RAT e topi in vitro. Per l’isolamento del ratto CM, nella procedura sono stati utilizzati 3 ratti Fischer di sesso maschile adulto (12 settimane). Figura 1 mostra l’apparato chirurgico e le configurazioni di isolamento che sono necessari nella procedura; ogni parte è stata contrassegnata e descritta nella legenda della figura. Collagenase tipo 2 è stato utilizzato per la digestione, che produce un’elevata qua…

Discussion

C’è una necessità fondamentale di stabilire un protocollo per l’isolamento dei cardiomiocisti adulti e la coltura a lungo termine per eseguire studi meccanicistici specifici delle cellule. Ci sono solo pochi rapporti che parlano di protocolli di isolamento CM adulti, e ancora meno di loro sono utilizzati per la coltura a lungo termine di topi adulti CM15,16,17. È stato dimostrato che il ratto adulto CM ha una maggiore tollera…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato sostenuto dal finanziamento del Dipartimento di Patologia e Medicina di Laboratorio, Università di Cincinnati, College of Medicine, al Dr. Onur Kanisicak; una sovvenzione del National Institutes of Health (R01HL148598) al Dr. Onur Kanisicak. Il Dr. Onur Kanisicak è supportato dall’American Heart Association Career Development Award (18CDA34110117). Dr. Perwez Alam è supportato dalla sovvenzione post-dottorato American Heart Association (AHA_20POST35200267). La dott.ssa Malina J. Ivey è supportata da una sovvenzione NIH T32 (HL 125204-06A1).

Materials

2,3-Butane Dione monoxime Sigma-Aldrich B-0753
Blebbistatin APExBIO B1387
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A3059
CaCl2 Sigma-Aldrich 449709
Cell culture plate Corning Costar 3526
Cell strainer BD Biosciences 352360
Cel-miR-67 Dharmacon CN-001000-01-50
Collagenase type2 Worthington LS004177
Disposable Graduated Transfer Pipettes Fisherbrand 13-711-20
Disposable polystyrene weighing dishes Sigma-Aldrich Z154881-500EA
Dulbecco's Modified Eagle's medium Thermo Scientific SH30022.01
EdU Life Technologies C10337
Fetal bovine serum Corning 35-015-CV
Fine Point High Precision Forceps Fisherbrand 22-327379
Glucose Sigma-Aldrich G-5400
Hemocytometer Hausser Scientific 1483
Heparin Sagent Pharmaceuticals PSLAB-018285-02
HEPES Sigma-Aldrich H3375
High Precision Straight Broad Strong Point Tweezers/Forceps Fisherbrand 12-000-128
Hyaluronidase Sigma H3506
Insulin Sigma-Aldrich I0516-5ML
K2HPO4 Sigma-Aldrich P-8281
KCl Sigma-Aldrich 746436
Light Microscope Nikon
Lipofectamine RNAiMAX Life Technologies 13778-150
MgSO4 Sigma-Aldrich M-2643
NaCl Sigma-Aldrich S9888
NaOH Fisher Scientific S318-500
Natural Mouse Laminin Invitrogen 23017-015
Penicillin/Streptomycin Corning 30-002-CI
Pentobarbital Henry Schein 24352
Phosphate buffered saline Life Technologies 20012-027
Protease XIV Sigma-Aldrich P5147-1G
Selenium Sigma-Aldrich 229865+5G
siMeis2 Dharmacon s161030
siRb1 Dharmacon s128325
Straight Blunt/SharpDissecting Scissors Fisher Scientific 28252
Straight Very Fine Precision Tip Forceps Fisherbrand 16-100-120
Taurine Sigma-Aldrich T0625
Transferrin Sigma-Aldrich T8158-100MG
Ultra-smooth, beveled-edge finish scissor Fisherbrand 22-079-747
Water Bath Fisher Scientific 3006S

Referencias

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Alam, P., Maliken, B. D., Ivey, M. J., Jones, S. M., Kanisicak, O. Isolation, Transfection, and Long-Term Culture of Adult Mouse and Rat Cardiomyocytes. J. Vis. Exp. (164), e61073, doi:10.3791/61073 (2020).

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