Summary

Methode voor Cultuur van Early kippenembryo's ex vivo (Nieuwe Cultuur)

Published: October 20, 2008
doi:

Summary

Deze video toont nieuwe cultuur, een methode waarbij kippenembryo's zich buiten het ei gekweekt tot 24 uur. Deze methode stelt je in staat om te studeren vroege ontwikkeling (primitieve streep tot 14 som.), Een periode die overeenkomt met E7-9 in de muis. Toepassingen van deze techniek zijn onder elektroporatie, in situ hybridisatie en immunohistochemie.

Abstract

Het kuiken embryo is een waardevol instrument in de studie van de vroege embryonale ontwikkeling. De transparantie, toegankelijkheid en het gemak van manipulatie, maken het een ideaal hulpmiddel voor het bestuderen van de vorming en patroonvorming van de hersenen, neurale buis, somiet en hart primordia. Toepassingen van kippenembryo cultuur onder electroporatie van DNA of RNA-constructen om genfunctie, enten van de groeifactor gecoate parels zoals FGF-en BMP's, evenals ganse berg te analyseren in situ hybridisatie en immunohistochemie. Deze video toont de verschillende stappen in kippenembryo cultuur, Ten eerste, het embryo geëxplanteerd in een zoutoplossing. Vervolgens wordt het embryo gecentreerd op een glazen ring. De vliezen rondom het embryo worden opgeheven langs de wanden van de ring. De ring wordt dan geplaatst in een cultuur schotel met een pool van albumine. De cultuur gerecht is afgesloten en geplaatst in een vochtige kamer, waar het embryo wordt gekweekt voor maximaal 24 uur. Ten slotte wordt de embryo verwijderd van de ring, vaste en verwerkt voor verdere toepassingen. Een gids is het oplossen van problemen ook gepresenteerd.

Protocol

Deel 1: Bench opgezet Een vochtige kamer wordt bereid door het plaatsen van Kimwipe / DDH 2 O in plastic kamer. Een Falcon buis aan albumine, gerechten voor cultuur, ringen, horlogeglas en verwerking van afval te verzamelen worden geplaatst op bankje. Pyrex schaal is gevuld met 1,4 l zoutoplossing (zie opmerkingen [a]). Deel 2: Embryo is geëxplanteerde in zoutoplossing Eieren worden verwijderd uit de broedmachine na 16 uur (fase 4). H…

Discussion

De nieuwe cultuur van methode 2 kan gebruikt worden voor een breed scala aan toepassingen, variërend van enten van de groei factor met kralen 3, op hele berg in situ hybridisatie en hele berg immunohistochemie 4. Cultuur over een periode van 24 uur maakt de continue monitoring van de embryonale ontwikkeling in toepassingen zoals time lapse cel bewegingsanalyse 5 of de monitoring van GFP met geëlektroporeerd constructen 6.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de Margaret M. Alkek Stichting RHF.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile  
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator Tool Lyon RX  
Hybridization Incubator Tool Robbins Scientific M1000  
Pyrex dish (2) Tool      
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Surgery Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Surgery Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Sharpening Stone Dan’s Black Arkansas Surgery Electron Microscopy Sciences 62082-00  
Fine scissors Surgery Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microcapillary tube Surgery Sigma P1049-1PAK Pull using vertical micropipette puller; blunt end with fine forceps
Microdissecting knife Surgery Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Surgery Fine Science Tools 26002-20  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave

Referencias

  1. Pannett, P. A., Compton, C. A. The cultivation of tissues in saline. Lancet. 206, 381-384 (1924).
  2. New, D. T. A new technique for the cultivation of the chick embryo in vitro. J. Embryol. Exp. Morph. 3, 326-331 (1955).
  3. Alvarez, I. S., Araujo, M., Nieto, M. A. Neural induction in whole chick embryo cultures by FGF. Dev. Biol. 199, 42-54 (1998).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
  5. Psychoyos, D., Stern, C. D. Fates and migratory routes of primitive streak cells in the chick embryo. Development. 122, 1523-1534 (1996).
  6. Voiculescu, O., Papanayotou, C., Stern, C. D. Spatially and temporally controlled electroporation of early chick embryos. Nature Protoc. 3, 419-426 (2008).
check_url/es/903?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture). J. Vis. Exp. (20), e903, doi:10.3791/903 (2008).

View Video