Summary

Méthode pour la culture d'embryons de poulet Early ex vivo (Nouvelle Culture)

Published: October 20, 2008
doi:

Summary

Cette vidéo montre la nouvelle culture, une méthode par laquelle les embryons de poulet sont cultivées en dehors de l'œuf jusqu'à 24 heures. Cette méthode permet d'étudier le développement précoce (ligne primitive à 14 soms.), Une période correspondant à E7-9 chez la souris. Les applications de cette technique comprennent l'électroporation, l'hybridation in situ et immunohistochimie.

Abstract

L'embryon de poulet est un outil précieux dans l'étude du développement embryonnaire précoce. Sa transparence, l'accessibilité et la facilité de manipulation, en font un outil idéal pour étudier la formation et la structuration du cerveau, du tube neural, somite et primordia cœur. Applications de la culture d'embryons de poulets comprennent l'électroporation de constructions d'ADN ou d'ARN afin d'analyser la fonction des gènes, des greffes de perles du facteur de croissance revêtement tels que FGF et BMP, ainsi que monter toute l'hybridation in situ et immunohistochimie. Cette vidéo montre les différentes étapes de la culture d'embryon de poulet; d'abord, l'embryon est explanté dans une solution saline. Ensuite, l'embryon est centrée sur un anneau de verre. Les membranes entourant l'embryon sont levées le long des murs de l'anneau. L'anneau est ensuite placé dans une boîte de culture contenant un pool d'albumine. La boîte de culture est scellé et placé dans une chambre humide, où l'embryon est cultivé pendant au moins 24 heures. Enfin, l'embryon est retiré de l'anneau, fixées et traitées pour d'autres applications. Un guide de dépannage est également présentée.

Protocol

Partie 1: Banc de mettre en place Une chambre humide est préparé en plaçant Kimwipe / ddH 2 O dans la chambre de plastique. Un tube Falcon de recueillir l'albumine, de la vaisselle pour la culture, des bagues, verre de montre et l'élimination des déchets sont placés sur le banc. Plat en pyrex est rempli avec une solution saline 1,4 l (voir note [a]). Partie 2: l'embryon est explanté dans une solution saline Les œufs…

Discussion

La méthode de culture New 2 peut être utilisé pour une large variété d'applications, allant de greffes du facteur de croissance contenant des billes 3, de monter toute hybridation de situ et immunohistochimie toute monture 4. Culture sur une période de 24 heures permet la surveillance continue du développement embryonnaire dans des applications comme laps de temps le mouvement des cellules d'analyse 5 ou de surveillance de la GFP contenant des constructions électr…

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la Fondation Margaret M. Alkek au RHF.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile  
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator Tool Lyon RX  
Hybridization Incubator Tool Robbins Scientific M1000  
Pyrex dish (2) Tool      
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Surgery Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Surgery Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Sharpening Stone Dan’s Black Arkansas Surgery Electron Microscopy Sciences 62082-00  
Fine scissors Surgery Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microcapillary tube Surgery Sigma P1049-1PAK Pull using vertical micropipette puller; blunt end with fine forceps
Microdissecting knife Surgery Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Surgery Fine Science Tools 26002-20  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave

Referencias

  1. Pannett, P. A., Compton, C. A. The cultivation of tissues in saline. Lancet. 206, 381-384 (1924).
  2. New, D. T. A new technique for the cultivation of the chick embryo in vitro. J. Embryol. Exp. Morph. 3, 326-331 (1955).
  3. Alvarez, I. S., Araujo, M., Nieto, M. A. Neural induction in whole chick embryo cultures by FGF. Dev. Biol. 199, 42-54 (1998).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
  5. Psychoyos, D., Stern, C. D. Fates and migratory routes of primitive streak cells in the chick embryo. Development. 122, 1523-1534 (1996).
  6. Voiculescu, O., Papanayotou, C., Stern, C. D. Spatially and temporally controlled electroporation of early chick embryos. Nature Protoc. 3, 419-426 (2008).
check_url/es/903?article_type=t

Play Video

Citar este artículo
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture). J. Vis. Exp. (20), e903, doi:10.3791/903 (2008).

View Video