Summary

Yüksek Verimli Ekran Metagenomic Kütüphaneler selülaz Aktivitesi Biomining

Published: February 01, 2011
doi:

Summary

Bu protokol, Escherichia coli olarak ifade metagenomic kütüphane selülolitik faaliyetleri için yüksek kapasiteli ekran açıklanmıştır. Ekran, çözüm odaklı ve yüksek otomasyonlu ve absorbans ölçümü gibi son okuma ile 384 iyi mikropleytin bir pot kimya kullanır.

Abstract

Selüloz, gezegen üzerinde organik karbon en bol kaynak, biyoyakıt üretimi 1 artan bir vurgu ile geniş çaplı endüstriyel uygulamalar vardır. Selüloz değiştirmek veya aşağılamak için kimyasal yöntemler genellikle güçlü asitler ve yüksek sıcaklıklar gerektirir. Bu nedenle, enzimatik yöntemlerle biyolojik dönüşümünün sürecinde önemli hale gelmiştir. Bakteriyel ve fungal izolatlar aktif sellülazlar belirlenmesi biraz etkili olsa da, doğada mikropların büyük çoğunluğunun laboratuar ekimi karşı. Çevre genomik, metagenomic, tarama yaklaşımlar olarak da bilinen yeni biyolojik dönüşümünün enzimleri için arama ekimi boşluğu dolduruyor büyük umutlar var. Metagenomic tarama yaklaşımları başarıyla topraklar 2, manda rumen 3 ve termit, Kongo kırmızı boya (tiyatrosunun ve Ahşap 5 yöntemi dayalı) ile boyanmış, arka-gut 4 kullanarak karboksimetilselüloz (CMC) agar plakları gibi çeşitli ortamlardan roman sellülazlar iyileşti . Ancak, CMC yöntemi hacmi sınırlı, kantitatif değildir ve düşük sinyal gürültü oranı 6 tezahür. Diğer yöntemler 7,8 bildirilen, ancak her kullanımdan büyük ekleme genomik kütüphaneler yüksek verimli tarama için istenmeyen bir agar plaka bazlı analiz,. Burada selüloz aktivite için bir kromojenik dinitrofenol (DNP) cellobioside substrat 9 kullanarak bir çözüm tabanlı ekran mevcut. Bizim kütüphane ile 10 kopya sayısı indüksiyon testinin duyarlılığı artırmak için fosmid pCC1 fotokopi denetim içine klonlandı. Bu yöntem, son okuma absorbans ölçümü olarak sağlanan 384-iyi mikropleytin bir pot kimya kullanır. Bu okuma kadar bir verim ile bağlı istifleme sistemi ile bir sıvı işleyici ve plaka okuyucu kullanarak günde 100X 384-iyi plakaları, kantitatif, hassas ve otomatik.

Protocol

Bu protokol başlamadan önce, 384 plaka formatında saklanan metagenomic kütüphane gerekecektir. Bizim çalışmamızda, faj T1 dayanıklı TransforMax EPI300-T1 R E. ile birlikte pCC1 kopyasını fosmid vektör kontrolü kütüphane host ve -80 ° C 11 plakalar saklanır gibi coli hücrelerinde. 1. Metagenomic Kütüphane Tabaklar çoğaltılması Defrost 37 adresinde kütüphane içeren plakalar ° C'de yaklaşık 20 dakika kadar ve…

Discussion

E. ifade selülolitik aktivitenin büyük bir ekleme genomik DNA metagenomic kütüphane hızlı tespiti için yüksek kapasiteli ekran Bu protokolde coli açıklanmıştır. Bu yöntem, literatürde sıkça kullanılan CMC / Kongo Red tahlil üzerinde bir gelişmedir. Çözüm odaklı ve kantitatif analiz için izin veren bir plaka okuyucu absorbans okumaları son çıkışı ile, 384-kuyucuğu bir pot kimya tarama sağlar. 25 veya daha fazla saat başına 384-kuyu plakaların denetimsiz bir tarama i?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar Oynamadı-Cellobioside substrat sağlamak için Dr. Steve Withers ve Hong-Ming Chen teşekkür etmek istiyorum.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
qPix2   Genetix   With 384-pin gridding head
qFill3   Genetix   With 384-well manifold
Varioskan   Thermo-Fisher    
RapidStak   Thermo-Fisher   Connected to Varioskan
Micro90 Detergent   Cole-Parmer 18100-00 Diluted to 2% in water
Ethanol   Major Lab Supplier   Diluted to 80% in water
Chloramphenicol   Sigma C0378 12.5mg/mL in ethanol
LB broth, Miller   Fisher BP1426-2 25g/L, autoclaved
         
384-well flat bottom plates   Corning 3680  
L-(+)-Arabinose   Sigma A3256 100mg/mL in water
Potassium Acetate   Fisher P171 50mM in water, autoclaved, adjusted to pH 5.5 with HCl
Triton X-100   Fisher BP151  
Trizma hydrochloride   Sigma T3253 In TE buffer solution, 100mM
EDTA disodium salt   Sigma E5134 In TE buffer solution, 10mM
2,4-dinitrophenyl cellobioside       Provided by Dr. Steve Withers, UBC
Dimethyl Sulfoxide   Sigma D8418  

References

  1. Rubin, E. M. Genomics of cellulosic biofuels. Nature. 454, 841-845 (2008).
  2. Voget, S., Steele, H. L., Streit, W. R. Characterization of a metagenome derived halotolerant cellulase. J. Biotechnol. 126, 26-36 (2006).
  3. Duan, C. J. Isolation and partial characterization of novel genes encoding acidic cellulases from metagenomes of buffalo rumens. J. Appl. Microbiol. 107, 245-256 (2009).
  4. Zhang, Y. H. P. Outlook for cellulase improvement: Screening and selection strategies. Biotech. Advances. 24, 452-481 (2006).
  5. Teather, R. M., Wood, P. J. Use of congo red-polysaccharide interactions in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen. Appl. And Environ. Microbiol. 43, 777-780 (1982).
  6. Sharrock, K. R. Cellulase assay methods: a review. J. Biochem and Biophys Methods. 17, 81-106 (1988).
  7. Kasana, R. C., Salwan, R., Dhar, H., Dutt, S., Gulati, A. A rapid and easy method for detection of microbial cellulases on agar plates using Gram’s Iodine. Curr. Microbiology. 57, 503-507 (2008).
  8. Huang, J. S., Tang, J. Sensitive assay for cellulase and dextranase. Anal. Biochem. 73, 369-377 (1976).
  9. Tull, D., Withers, S. G. Mechanisms of cellulases and xylanases: A detailed kinetic study of the exo-beta-1,4-glycanase from Cellulomonas fimi. Biochimie. 33, 6363-6370 (1994).
  10. Martinez, A., Bradley, A. S., Waldbauer, J. R., Summons, R. E., DeLong, E. F. Proteorhodopsin photosystem gene expression enables photophosphorylation in a heterologous host. PNAS. 104, 5590-5595 (2007).
  11. Taupp, M., Lee, S., Hawley, A., Yang, J., Hallam, S. J. Large Insert Environmental Genomic Library Production. J Vis Exp. , (2009).
  12. Martinez, A., Tyson, G. W., DeLong, E. F. Widespread known and novel phosphonate utilization pathways in marine bacteria revealed by functional screening and metagenomic analyses. Environ Microbiol. 12, 222-238 (2010).
  13. Wild, J., Hradecna, Z., Szybalski, W. Conditionally amplifiable BACs: Switching from single-copy to high-copy vectors and genomic clones. Genome Research. 12, 1434-1444 (2002).
  14. Johnson, E. A. Sacchirification of complex cellulosic substrates by the cellulase system from Clostridium thermocellum. Appl Environ Microbiology. 43, 1125-1132 (1982).
  15. Stutzenberger, F. J. Cellulase Production by Thermomonospora curvata isolated from municipal solid waste compost. Appl Environ Microbiol. 22, 147-152 (1971).

Play Video

Citer Cet Article
Mewis, K., Taupp, M., Hallam, S. J. A High Throughput Screen for Biomining Cellulase Activity from Metagenomic Libraries. J. Vis. Exp. (48), e2461, doi:10.3791/2461 (2011).

View Video