Technique simple et efficace pour la préparation de suspensions de cellules testiculaires
Summary
Un nouveau protocole pour la préparation mécanique des suspensions de cellules testiculaires de matériel de rongeurs, en évitant les enzymes et les détergents, est décrite. La méthode est très simple, rapide et reproductible, et rend les suspensions cellulaires de bonne qualité, qui sont adaptés pour le tri de flux et extraction de l'ARN.
Abstract
Testicules de mammifères sont des organes très complexes qui contiennent plus de 30 différents types de cellules, notamment les cellules testiculaires somatiques et les différentes étapes de cellules germinales. Cette hétérogénéité est un inconvénient majeur en ce qui concerne l'étude des bases de la spermatogenèse chez les mammifères, comme les populations de cellules pures ou enrichies dans certaines étapes du développement des spermatozoïdes sont nécessaires pour la plupart des analyses moléculaires 1.
Diverses stratégies telles que Staput 2,3, élutriation centrifuge 1, et cytométrie de flux (FC) 4,5 ont été utilisées pour obtenir des populations de cellules testiculaires enrichi ou purifié afin de permettre des études d'expression différentielle de gènes.
Il est nécessaire que les cellules sont en suspension de la plupart des approches d'enrichissement / purification. Idéalement, la suspension cellulaire sera représentatif du tissu d'origine, une forte proportion de cellules viables et peu multinucleates – qui ont tendance à se former en raison de lasyncytial nature de l'épithélium séminifère 6,7 – et amas de cellules manquent de 1. Les rapports précédents ont mis en évidence que des suspensions de cellules testiculaires préparés par un procédé exclusivement mécanique agglutinées plus facilement que ceux trypsinisés 1. D'autre part, les traitements enzymatiques avec RNAses et / ou des enzymes désagrégation comme la trypsine et la collagénase conduit à la dégradation des macromolécules spécifique, ce qui n'est pas souhaitable pour certaines applications en aval. Le processus idéal doit être aussi courte que possible et impliquer une manipulation minimale, afin de parvenir à une bonne conservation des macromolécules d'intérêt tels que les ARNm. Les protocoles actuels pour la préparation des suspensions cellulaires de tissus solides sont généralement beaucoup de temps, très dépendante de l'opérateur, et peut endommager de façon sélective certains types de cellules 1,8.
Le protocole présenté ici combine les avantages d'une ventilation mécanique hautement reproductible et extrêmement brève avec l'unBSENCE de traitement enzymatique, ce qui conduit à des suspensions cellulaires de bonne qualité qui peuvent être utilisés pour l'analyse de cytométrie de flux et tri 4, et les études d'expression génique pensées 9.
Protocol
Representative Results
Discussion
La méthode décrite ici optimisé permet la préparation de suspensions de cellules de rongeurs tissu testiculaire d'une manière très rapide et reproductible, en évitant un traitement enzymatique et de détergent et de maintenir une bonne intégrité cellulaire et les proportions de types. La brièveté de la procédure (la durée de 15 minutes comprend dissection des testicules, la découpe des tissus, et la transformation), manipulations nécessaires sont minimales, et l'absence de traitements enzymatiques…
Acknowledgements
Ce travail a été financé en partie par le CSIC (I + D projet C022) et PEDECIBA. Les auteurs tiennent à remercier Mariela Bollati et Valentina Porro de l'Unité de biologie cellulaire (Institut Pasteur de Montevideo) pour leur généreuse collaboration concernant le trieur de cellules MoFlo, et Merial-Montevideo pour fournir doucement tous les échantillons de cobayes utilisés dans ce projet. Figure 1 a été reproduit avec l'autorisation de BioMed Central, figures 2 et 3, et le tableau 1 avec la permission de S. Karger AG, Bâle, et les figures 4 et 5 ont été reproduits ou adaptés avec la permission de John Wiley & Sons, Inc (copyright détenu par Wiley- Blackwell, 2011).
Materials
| Name of Reagent/Material | Company | Catalogue Number | Comments |
| Medimachine system | BD | 340587 | |
| Medicon unit (50 μm) | BD | 340591 | |
| Filcon unit (50 μm) | BD | 340603 | |
| DMEM | Gibco | 430-2100 | |
| Fetal calf serum | PAA | A11-151 | |
| NDA | Chemos BmbH | 277081 | |
| Hoechst 33342 | Sigma-Aldrich | 14533 | Stock solution 5 mg/ml; used at a final concentration of 5 μg/ml |
| Propidium iodide | Sigma-Aldrich | 287075 | Stock solution 1 mg/ml; used at a final concentration of 50 μg/ml |
References
- Meistrich, M. L., Prescott, D. M. Separation of spermatogenic cells and nuclei from rodent testes. Methods of Cell Biology. 15, 15-54 (1977).
- Lam, D. M. K., Furrer, R., Bruce, W. R. The separation, physical characterization, and differentiation kinetics of spermatogonial cells of the mouse. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 65, 192-199 (1970).
- Romrell, L. J., Bellve, A. R., Fawcet, D. W. Separation of mouse spermatogenic cells by sedimentation velocity. Dev. Biol. 19, 119-131 (1976).
- Geisinger, A., Rodríguez-Casuriaga, R. Flow cytometry for gene expression studies in mammalian spermatogenesis. Cytogenet. Genome Res. 128, 46-56 (2010).
- Getun, I. V., Torres, B., Bois, P. R. Flow cytometry purification of mouse meiotic cells. J. Vis. Exp. (50), e2602 (2011).
- Meistrich, M. L. Separation of mouse spermatogenic cells by velocity sedimentation. J. Cell Physiol. 80, 299-312 (1972).
- Meistrich, M. L., Bruce, W. R., Clermont, Y. Cellular composition of fractions of mouse testis cells following velocity sedimentation separation. Exp. Cell Res. 79, 213-227 (1973).
- Malkov, M., Fisher, Y., Don, J. Developmental schedule of the postnatal rat testis determined by flow cytometry. Biol. Rep. 59, 84-92 (1998).
- Rodríguez-Casuriaga, R., Geisinger, A., Santiñaque, F., López, B., Folle, G. High-purity flow sorting of early meiocytes based on DNA analysis of guinea pig spermatogenic cells. Cytometry A. 79, 625-634 (2011).
- Davey, H. M., Hexley, P. Red but not dead? Membranes of stressed Saccharomyces cerevisiae are permeable to propidium iodide. Environ. Microbiol. 13, 163-171 (2011).
- Rodríguez-Casuriaga, R., Geisinger, A., López-Carro, B., Porro, V., Wettstein, R., Folle, G. A. Ultra-fast and optimized method for the preparation of rodent testicular cells for flow cytometric analysis. Biol. Proced. Online. 11, 184-195 (2009).
- Spanò, M., Evenson, D. P. Flow cytometric analysis for reproductive biology. Biol Cell. 78, 53-62 (1993).
