Summary

יישומים של pHluorin עבור כמותי, קינטי וניתוח תפוקה גבוהה של אנדוציטוזה שמרים הנצה

Published: October 23, 2016
doi:

Summary

Accurate quantification of vesicular trafficking events often provides key insights into roles for specific proteins and the effects of mutations. This paper presents methods for using superecliptic pHluorin, a pH-sensitive GFP variant, as a tool for quantification of endocytic events in living cells using quantitative fluorescence microscopy and flow cytometry.

Abstract

חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) על גירסאותיה משמשים כלים נרחב ללימוד לוקליזציה חלבון ודינמיקה של אירועים כגון שיפוץ cytoskeletal וסחר שלפוחי בתאים חיים. מתודולוגיות כמותיות באמצעות התכת GFP כימרי פותחו עבור יישומים רבים; עם זאת, GFP הוא מעט עמיד proteolysis, ובכך הקרינה שלה נמשכת ליזוזום / vacuole, אשר יכול לעכב כימות של סחר המטען במסלול endocytic. שיטה חלופית לכימות אנדוציטוזה ופוסט endocytic אירועים סחר עושה שימוש superecliptic pHluorin, וריאנט pH רגיש של GFP כי הוא הרווה בסביבה חומצית. היתוך Chimeric של pHluorin לזנב cytoplasmic של תוצאות חלבונים מטען הטרנסממברני בתוך ריסון של הקרינה על ההתאגדות של המטען לתוך הגוף multivesicular (MVBs) והסעה לבית לומן ליזוזום / vacuole. לכן, מרווה הקרינה vacuolar מקלה quantifiקטיון של אנדוציטוזה ואירועים מוקדם מסלול endocytic. מאמר זה מתאר שיטות באמצעות מטענים מתויגים pHluorin כימות של אנדוציטוזה באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי, כמו גם מבחנים מבוססי אוכלוסייה באמצעות cytometry זרימה.

Introduction

סחר שלפוחי ממלא תפקיד חשוב בשמירה על הזהות אברון ותפקוד בתאים איקריוטיים, והוא מכשיר מרכזי להסדרת הרכב חלבונים בממברנה של תאים סלולריים הפרט. על הממברנה הפלזמה, שילוב של שלפוחית ​​exocytic מספק חלבונים וממברנות חדשים אל פני השטח של התא, ואילו שלפוחית ​​שנוצרה באמצעות אנדוציטוזה להסיר קרום וחלבונים מפני השטח למחזור עקב או מיקוד אל ליזוזום. לפיכך, אנדוציטוזה חשוב ספיגת חומרים מזינה ועל תגובות הסביבה התאית. Exocytosis ו אנדוציטוזה מאוזנים להסדיר שטח הממברנה, וכדי לאפשר מחזור של חלבונים פגומים.

עיונים שמרים בתאי יונקים זיהו מספר רב של חלבונים המעורבים אנדוציטוזה, כמו גם מסלולים endocytic מרובים שמקדמים הפנמה של מטענים ספציפיים או מעשה שיש בהם בתגובה במגוון enתנאים סביבתיים. מסלול-למד הכי טוב הוא אנדוציטוזה מתווכת clathrin (CME), שבו clathrin אביזר cytosolic חלבונים להרכיב למבנה מעיל לייצב את שלפוחית ​​endocytic המתהווה. הניסויים cerevisiae Saccharomyces שמרים ניצני הניבו תובנות חשובות על הדינמיקה והסדר של גיוס חלבונים endocytic רבים 1-3. יש לציין, כי מכונה CME הוא שמור ביותר בתהליך האבולוציה כזה שרוב החלבונים הקשורים CME בשמרים יש orthologs אדם; וכך, נבגי שמרים כבר כלי חשוב להבנת המנגנונים של אנדוציטוזה כי הם משומר אאוקריוטים גבוה. לדוגמא, מחקרים באמצעות שמרי ניצנים נקבעו כי היווצרות והתבגרות של מבני CME (המכונה טלאים יקטינו קליפת מוח כמו שמרים) כרוך הגיוס הרציף של חלבונים רבים, החל clathrin וחלבוני מתאם מחייב למשא ואחריו גיוס של אבזר endocytic נוסף חלבונים,הפעלת Arp2 / פילמור אקטין 3 בתיווך, וגיוס של חלבונים המעורבים 1,2 scission שלפוחית. גיוס של חלבונים מכונים CME כדי קליפת מוח טלאים יקטינו הוא תהליך הורה מאוד וסטריאוטיפי, ואת הסדר המדויק של גיוס חלבונים רבים כבר נקבע ביחס לרכיבים אחרים של מכונות CME. חשוב לציין, מחקרים שנעשו לאחרונה אישרו צו דומה של גיוס חלבונים CME בבורות מצופה clathrin בתאי יונקים 4.

בנוסף CME, סוגי תאים רבים להחזיק אחד או יותר מסלולי endocytic עצמאי-clathrin (CIE) המסתמכים על מנגנונים חלופיים לקדם היווצרות שלפוחית והפנמה מן קרום הפלזמה 5-7. בשמרים, אנו לאחרונה זיהינו מסלול CIE אשר מנצל את Rho1 GTPase הקטן גורם חליפי נוקלאוטיד גואנין ההפעלה שלה (GEF), Rom1 8,9. Rho1 מפעיל את formin Bni1 לקדם פילמור אקטין 10,11, אשר נדרש עבור סוג זה של אנדוציטוזה עצמאית-clathrin בשמרים 12. יתר על כן, המשפחה-arrestin α של חלבונים לגייס את האנזים היוביקוויטין Rsp5 לקדם ubiquitination מטען והפנמה עוקבות דרך CME 13-17, וגם לקדם הפנמה מטענים דרך מסלול CIE, ואולי באמצעות אינטראקציה ישירה עם חלבונים המעורבים CIE 18. מגוון מסלולי CIE קיים גם בתאי יונקים, כוללים מסלולי clathrin-עצמאי phagocytic המסתמכים על ortholog Rho1, RhoA 9,19. תפקידו של RhoA ב יונקים CIE הוא הבין היטב; לכן, מחקרים בשמרי ניצנים עשויים לספק תובנות מכניסטית נוספים החלימו על CIE היונק.

כימות מדויק של אירועי endocytic יכול לספק מידע חשוב על התפקידים של חלבונים ספציפיים בויסות אנדוציטוזה, והוא יכול לחשוף את ההשפעות של מוטציות על הפנמת מטען או progression דרך מסלול endocytic. לשם כך, בשיטות ביוכימיות יכולות להיות מנוצלות כדי לפקח ספיג ליגנד או כדי למדוד את שיעורים של פירוק של חלבוני מטען endocytic. בתאים חיים, שילוב של חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) על גרסותיה כדי מטעני עניין מאפשר הדמיה ישירה של כלי רכב כבדים. עם זאת, מטענים מתויג GFP הם של שימוש מוגבל כימות של אנדוציטוזה כי GFP הוא עמיד בפני פירוק בתוך ליזוזום (או vacuole בשמרים). יתר על כן, GFP הקרינה היא רק רגיש באופן חלקי לשינויים ב- pH, ונשאר לזיהוי בתוך vacuole לומן 20,21. כתוצאה מכך, הקרינה של תג ה- GFP נמשכת vacuole הרבה אחרי שאר המטען כבר מושפלת, ושלמי כימותים מבוססי תאים של עוצמת מטען עשויים להיות לא מדויקים בשל קרינת GFP לטווח ארוכה של vacuole.

על מנת להתגבר על החסרונות של GFP הקרינה vacuolar, אנחנו קודם לכן עשו שימוש pH supereclipticluorin, וריאנט רגיש-pH של GFP כי מאיר במאור ב- pH נייטרלי, אבל מאבד הקרינה בסביבה חומצית כגון לומן של vacuole / ליזוזום 20,22,23. הצבת תג pHluorin על הזנב cytoplasmic של מטענים endocytic היתרי להדמיה של מטענים על קרום פלזמה על endosomes מוקדם, שבו תג pHluorin נשאר חשוף אל הציטופלסמה (איור 1 א). כפי endosomes מוקדם להתבגר, במתחם מיון endosomal הנדרש להובלה (ESCRT) מטענים משטח-מקומי חבילות מכונות לתוך שלפוחית כי ניצן לתוך לומן של אנדוזום, יצירת גופים multivesicular (MVBs) 24. עבור מטענים כי שולבו שלפוחית ​​MVB פנימית, תג pHluorin פונה כלפי לומן השלפוחית. שלפוחית ​​MVB הפנימית acidified; וכך, מטענים מתויגים pHluorin לאבד קרינה על endosomes מוקדם כשהם מתבגרים לתוך MVBs 20. ההיתוך הבא של MVB עם vacuole מספק את תוכן luminal MVBהשפלה, ותגיות pHluorin נשארים הרווה בסביבה החומצית של לומן vacuole.

מאמר זה מספק תיאורים מפורטים של מבחני endocytic כמותית באמצעות מטענים עם תגי pHluorin ציטופלסמית בשמרים. זנים להביע מטענים מתויג pHluorin יכול לשמש מבחני קינטית ו / או נקודות קצה, בהתאם להתנהגות נכסים וסחר של מטענים ספציפיים. בנוסף, כמה מטענים מתויג pHluorin ניתנים שיטות ניתוח תפוקה גבוהה, כולל זרימת cytometry. חשוב לציין כי תג pHluorin הוא כלי תכליתי עבור חוקר ענייני endocytic בתאים חיים, המאפשר כימות של אנדוציטוזה והשוואה של פונקציה endocytic ב wild-type ו זנים מוטנטים.

Protocol

1. פתרונות ומדיה הכן את המניות, מדיה צלחות הבאות: כדי להכין 10x YNB, לפזר 67 גרם של בסיס שמרים חנקן חסר חומצות אמינו ב 1 ליטר של מים. לעקר על ידי סינון דרך פילטר nitrocellulose 0.22 מיקרו…

Representative Results

לוקליזציה וכימות יציבים של חלבון מטען endocytic הפנים constitutively Ste3 על מנת להוכיח כי מטענים מתויג pHluorin יכול להיות מנוצל עבור כימות של אנדוציטוזה בתאים חיים, לוקליזציה של ה- GFP כימרי ו התכה pHluor…

Discussion

יישומים של pHluorin כימות של אירועי endocytic בתאי שמרים עושים שימוש מטענים הטרנסממברני שבו תג הניאון הוא קבע את זנב cytoplasmic של החלבון (איור 1 א). עבור המבחנים המתוארים כאן, מטענים הם פלורסנט במאור פנים כאשר תג pHluorin חשוף בסביבות ניטראליות, אבל להיות רווה כאשר תג pHluorin מפ?…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank Gero Miesenböck and Tim Ryan for sharing pHluorin cDNA used to generate reagents in this study, Nathan Wright, Joanna Poprawski and Lydia Nyasae for excellent technical assistance, members of the Wendland lab for helpful discussions, and Michael McCaffery and Erin Pryce at the Integrated Imaging Center (Johns Hopkins) for advice and assistance with microscopy and flow cytometry. This work was supported by grants from the National Institutes of Health (to B.W., GM60979) and the National Science Foundation (to B.W., MCB 1024818). K.W. was supported in part by a training grant from the National Institutes of Health (T32-GM007231). A.F.O. was supported by developmental funds from the Department of Biological Sciences at Duquesne University and National Science Foundation CAREER grant 553143.

Materials

Adenine Sigma A8626-25G Use for preparation of amino acid mixture and stock solution
Bacto-agar Fisher BP1423-2 Use for preparation of plate media
BD Difco Yeast Nitrogen Base (without amino acids) BD 291920 Use for preparation of liquid and plate media
Concanavalin A Sigma C5275-5MG Use for coating of chamber slides
Dextrose Fisher BP350-1 Use for preparation of liquid and plate media
L-Histidine Fisher BP382-100 Use for preparation of amino acid mixture and stock solution
L-Leucine Acros 125121000 Use for preparation of amino acid mixture and stock solution
L-Lysine Fisher BP386-100 Use for preparation of amino acid mixture and stock solution
L-Methionine Fisher BP388-100 Use for preparation of amino acid mixture and stock solution
L-Tryptophan Fisher BP395-100 Use for preparation of amino acid mixture and stock solution
L-Tyrosine Acros 140641000 Use for preparation of amino acid mixture
Nunc Lab-Tek Chambered Coverglass (8-well) Thermo Scientific 155411 Use for kinetic and endpoint assays of Mup1-pHluorin internalization
Uracil Sigma U0750-100G Use for preparation of amino acid mixture and stock solution
Axiovert 200 inverted microscope Carl Zeiss Custom Build
100X/1.4 Plan-Apochromat Oil Immersion Objective Lens Carl Zeiss Objective should be 100X, 1.4NA or higher
Sensicam Cooke Corporation Camera should have 12-bit or higher dynamic range
X-Cite 120PC Q Illumination Source Excelitas Technologies
Slidebook 5 software Intelligent Imaging Innovations
ImageJ software National Institutes of Health http://imagej.nih.gov/ij/

References

  1. Kaksonen, M., Sun, Y., Drubin, D. G. A pathway for association of receptors, adaptors, and actin during endocytic internalization. Cell. 115 (4), 475-487 (2003).
  2. Kaksonen, M., Toret, C. P., Drubin, D. G. A modular design for the clathrin- and actin-mediated endocytosis machinery. Cell. 123 (2), 305-320 (2005).
  3. Boettner, D. R., Chi, R. J., Lemmon, S. K. Lessons from yeast for clathrin-mediated endocytosis. Nat Cell Biol. 14 (1), 2-10 (2012).
  4. Taylor, M. J., Perrais, D., Merrifield, C. J. A High Precision Survey of the Molecular Dynamics of Mammalian Clathrin-Mediated Endocytosis. PLoS Biol. 9 (3), e1000604 (2011).
  5. Hansen, C. G., Nichols, B. J. Molecular mechanisms of clathrin-independent endocytosis. J Cell Sci. 122 (11), 1713-1721 (2009).
  6. Sabharanjak, S., Sharma, P., Parton, R. G., Mayor, S. GPI-anchored proteins are delivered to recycling endosomes via a distinct cdc42-regulated, clathrin-independent pinocytic pathway. Dev Cell. 2 (4), 411-423 (2002).
  7. Radhakrishna, H., Klausner, R. D., Donaldson, J. G. Aluminum fluoride stimulates surface protrusions in cells overexpressing the ARF6 GTPase. J Cell Biol. 134 (4), 935-947 (1996).
  8. Prosser, D. C., Drivas, T. G., Maldonado-Báez, L., Wendland, B. Existence of a novel clathrin-independent endocytic pathway in yeast that depends on Rho1 and formin. J Cell Biol. 195 (4), 657-671 (2011).
  9. Prosser, D. C., Wendland, B. Conserved roles for yeast Rho1 and mammalian RhoA GTPases in clathrin-independent endocytosis. Small GTPases. 3 (4), 229-235 (2012).
  10. Kohno, H., et al. Bni1p implicated in cytoskeletal control is a putative target of Rho1p small GTP binding protein in Saccharomyces cerevisiae. EMBO J. 15 (22), 6060-6068 (1996).
  11. Evangelista, M., et al. a Yeast Formin Linking Cdc42p and the Actin Cytoskeleton During Polarized Morphogenesis. Science. 276 (5309), 118-122 (1997).
  12. Kübler, E., Riezman, H. Actin and fimbrin are required for the internalization step of endocytosis in yeast. EMBO J. 12 (7), 2855-2862 (1993).
  13. Lin, C. H., MacGurn, J. A., Chu, T., Stefan, C. J., Emr, S. D. Arrestin-Related Ubiquitin-Ligase Adaptors Regulate Endocytosis and Protein Turnover at the Cell Surface. Cell. 135 (4), 714-725 (2008).
  14. Nikko, E., Sullivan, J. A., Pelham, H. R. B. Arrestin-like proteins mediate ubiquitination and endocytosis of the yeast metal transporter Smf1. EMBO Rep. 9 (12), 1216-1221 (2008).
  15. Nikko, E., Pelham, H. R. B. Arrestin-Mediated Endocytosis of Yeast Plasma Membrane Transporters. Traffic. 10 (12), 1856-1867 (2009).
  16. O’Donnell, A. F., McCartney, R. R., Chandrashekarappa, D. G., Zhang, B. B., Thorner, J., Schmidt, M. C. 2-Deoxyglucose impairs Saccharomyces cerevisiae growth by stimulating Snf1-regulated and α-arrestin-mediated trafficking of hexose transporters 1 and 3. Mol Cell Biol. 35 (6), 939-955 (2015).
  17. O’Donnell, A. F., Huang, L., Thorner, J., Cyert, M. S. A calcineurin-dependent switch controls the trafficking function of α-arrestin Aly1/Art6. J Biol Chem. 288 (33), 24063-24080 (2013).
  18. Prosser, D. C., Pannunzio, A. E., Brodsky, J. L., Thorner, J., Wendland, B., O’Donnell, A. F. α-Arrestins participate in cargo selection for both clathrin-independent and clathrin-mediated endocytosis. J Cell Sci. 128 (22), 4220-4234 (2015).
  19. Lamaze, C., Dujeancourt, A., Baba, T., Lo, C. G., Benmerah, A., Dautry-Varsat, A. Interleukin 2 receptors and detergent-resistant membrane domains define a clathrin-independent endocytic pathway. Mol Cell. 7 (3), 661-671 (2001).
  20. Prosser, D. C., Whitworth, K., Wendland, B. Quantitative analysis of endocytosis with cytoplasmic pHluorin chimeras. Traffic. 11 (9), 1141-1150 (2010).
  21. Bokman, S. H., Ward, W. W. Renaturation of green-fluorescent protein. Biochem Biophys Res Commun. 101 (4), 1372-1380 (1981).
  22. Miesenböck, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins. Nature. 394 (6689), 192-195 (1998).
  23. Sankaranarayanan, S., De Angelis, D., Rothman, J. E., Ryan, T. A. The Use of pHluorins for Optical Measurements of Presynaptic Activity. Biophys J. 79 (4), 2199-2208 (2000).
  24. Katzmann, D. J., Babst, M., Emr, S. D. Ubiquitin-dependent sorting into the multivesicular body pathway requires the function of a conserved endosomal protein sorting complex. ESCRT-I. Cell. 106 (2), 145-155 (2001).
  25. Longtine, M. S., et al. Additional modules for versatile and economical PCR-based gene deletion and modification in Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 14 (10), 953-961 (1998).
  26. Goldstein, A. L., McCusker, J. H. Three new dominant drug resistance cassettes for gene disruption in Saccharomyces cerevisiae. Yeast. 15 (14), 1541-1553 (1999).
  27. Ausubel, F. M. . Curr Prot Mol Biol. , (1991).
  28. Urbanowski, J. L., Piper, R. C. Ubiquitin sorts proteins into the intralumenal degradative compartment of the late-endosome/vacuole. Traffic. 2 (9), 622-630 (2001).
  29. Newpher, T. M., Smith, R. P., Lemmon, V., Lemmon, S. K. In Vivo Dynamics of Clathrin and Its Adaptor-Dependent Recruitment to the Actin-Based Endocytic Machinery in Yeast. Dev Cell. 9 (1), 87-98 (2005).
  30. Maldonado-Báez, L., Dores, M. R., Perkins, E. M., Drivas, T. G., Hicke, L., Wendland, B. Interaction between Epsin/Yap180 adaptors and the scaffolds Ede1/Pan1 is required for endocytosis. Mol Biol Cell. 19 (7), 2936-2948 (2008).
  31. Aguilar, R. C., et al. Epsin N-terminal homology domains perform an essential function regulating Cdc42 through binding Cdc42 GTPase-activating proteins. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 103 (11), 4116-4121 (2006).
  32. Isnard, A. D., Thomas, D., Surdin-Kerjan, Y. The study of methionine uptake in Saccharomyces cerevisiae reveals a new family of amino acid permeases. J Mol Biol. 262 (4), 473-484 (1996).
  33. Wendland, B., McCaffery, J. M., Xiao, Q., Emr, S. D. A novel fluorescence-activated cell sorter-based screen for yeast endocytosis mutants identifies a yeast homologue of mammalian eps15. J Cell Biol. 135 (6), 1485-1500 (1996).
  34. Alvaro, C. G., et al. Specific Alpha-Arrestins Negatively Regulate Saccharomyces cerevisiae Pheromone Response by Down-Modulating the G-Protein-Coupled Receptor Ste2. Mol Cell Biol. 34 (14), 2660-2681 (2014).
  35. Ghaddar, K., Merhi, A., Saliba, E., Krammer, E. M., Prevost, M., Andre, B. Substrate-Induced Ubiquitylation and Endocytosis of Yeast Amino Acid Permeases. Mol Cell Biol. 34 (24), 4447-4463 (2014).
  36. Becuwe, M., Léon, S. Integrated control of transporter endocytosis and recycling by the arrestin-related protein Rod1 and the ubiquitin ligase Rsp5. eLife. 3, (2014).
  37. Henne, W. M., Buchkovich, N. J., Zhao, Y., Emr, S. D. The Endosomal Sorting Complex ESCRT-II Mediates the Assembly and Architecture of ESCRT-III Helices. Cell. 151 (2), 356-371 (2012).
  38. Nickerson, D. P., Russell, M. R. G., Lo, S. -. Y., Chapin, H. C., Milnes, J. M., Merz, A. J. Termination of Isoform-Selective Vps21/Rab5 Signaling at Endolysosomal Organelles by Msb3/Gyp3. Traffic. 13 (10), 1411-1428 (2012).
  39. Nickerson, D. P., Merz, A. J. LUCID: A Quantitative Assay of ESCRT-Mediated Cargo Sorting into Multivesicular Bodies. Traffic. 16 (12), 1318-1329 (2015).
  40. Dulic, V., Egerton, M., Elguindi, I., Raths, S., Singer, B., Riezman, H. Yeast endocytosis assays. Methods Enzymol. 194, 697-710 (1991).
  41. Silve, S., Volland, C., Garnier, C., Jund, R., Chevallier, M. R., Haguenauer-Tsapis, R. Membrane insertion of uracil permease, a polytopic yeast plasma membrane protein. Mol Cell Biol. 11 (2), 1114-1124 (1991).
  42. Miliaras, N. B., Park, J. -. H., Wendland, B. The Function of the Endocytic Scaffold Protein Pan1p Depends on Multiple Domains. Traffic. 5 (12), 963-978 (2004).
  43. Vida, T. A., Emr, S. D. A new vital stain for visualizing vacuolar membrane dynamics and endocytosis in yeast. J Cell Biol. 128 (5), 779-792 (1995).
  44. Toshima, J. Y., Toshima, J., Kaksonen, M., Martin, A. C., King, D. S., Drubin, D. G. Spatial dynamics of receptor-mediated endocytic trafficking in budding yeast revealed by using fluorescent alpha-factor derivatives. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 103 (15), 5793-5798 (2006).
check_url/fr/54587?article_type=t

Play Video

Citer Cet Article
Prosser, D. C., Wrasman, K., Woodard, T. K., O’Donnell, A. F., Wendland, B. Applications of pHluorin for Quantitative, Kinetic and High-throughput Analysis of Endocytosis in Budding Yeast. J. Vis. Exp. (116), e54587, doi:10.3791/54587 (2016).

View Video