Summary

ImageJのプラグインを使用して細胞の計数手順の自動定量化と分析

Published: November 17, 2016
doi:

Summary

This paper describes the quantification of hemocytometer and migration/invasion micrographs through two new open-source ImageJ plugins Cell Concentration Calculator and migration assay Counter. Furthermore, it describes image acquisition and calibration protocols as well as discusses in detail the input requirements of the plugins.

Abstract

健康のImageJの国立研究所は、強力な、自由利用可能な画像処理ソフトウェアスイートです。 ImageJのは、様々な生物学的粒子をカウントするために有効に利用することができる総合的な粒子解析アルゴリズムを有します。セルの多数のサンプルをカウントすると、血球計数器は、時間に関してボトルネックを提示します。同様に、ImageJのプラグインセルカウンターで移行/浸潤アッセイからの膜を数え、正確なものの、非常に労働集約的主観、および手首の痛みを引き起こすための悪名高いです。このニーズに応えるために、我々は、自動血球計数器(または知られているボリューム)と移行/浸潤細胞計数の唯一のタスクのためのImageJ内の2つのプラグインを開発しました。どちらのプラグインは、最小限の背景に高品質の顕微鏡写真を取得する能力に依存します。彼らは、使いやすいとカウントのキャリブレーションを支援する組み込みの分析ツールを持つ大規模なサンプルサイズの迅速な計数および分析のために最適化されています。コア原理を組み合わせることにより自動化された計数アルゴリズムおよびポスト計数分析による細胞カウンタのsが、これは非常に遊走アッセイ精度を失うことなく処理することができる容易さを増大させます。

Introduction

インビトロでの細胞計数では、組織培養実験の広い範囲の重要な基本的な技術です。正確に培養物中の細胞の数を決定する実験の再現性および標準化の1,2のために不可欠です。細胞計数は、血球計を用いて、ならびに自動化された方法の様々な独自の利点と欠点3,4,5でそれぞれを使用して手動で行うことができます。細胞計数のための自動化された方法のほとんどは、2つのクラス、コールター原理を使用するか、フローサイトメトリーもののいずれかに属しています。コールターカウンターは、細胞数およびサイズを決定するために、セルの電気抵抗を利用します。彼らは、高速で正確かつフローサイトメーターよりも安くなっています。しかし、彼らはほとんどマニュアルカウント3に比べて、それらのかなりのコストにのみ細胞計数のために使用されていません。フローサイトメーターは、一方で、高価であるが、それらは、細胞計数、細胞形状の解析、STのような多くの用途を有しますructureと内部細胞マーカーに4,5を測定します 。これら2つの原則のいずれかを使用するマシンは、多くのメーカーから入手可能です。自動化された方法は、手動計数のために必要な時間の一部が付属していますが、高価なマシン6を使用しながら手動カウントが手頃な価格が、時間がかかり、バイアスの対象となります。

他の一般的な細胞培養手順は、細胞遊走および浸潤7、すなわち、 インビトロ細胞運動性アッセイです 。遊走および浸潤アッセイは、一般的走化性応答に応答して細胞運動性および侵襲性を調査するために使用されます。さらに、それらは、広く多様な細胞型7-11の胚発生、分化、炎症反応、および転移を研究するために使用されます。遊走アッセイの多孔質膜を通って遊走または浸潤した細胞は、2つの異なる方法で定量することができます。あちこちまず、蛍​​光色素で細胞を染色することにより、解離蛍光リーダ12を用いて膜、および定量化をメートル。定量化のこの方法の制限は、レコードが膜を保持することができない、さらなる分析13のための可能性がないということです。第二の定量法は、クリスタルバイオレット、トルイジンブルー染料またはヘマトキシリンなどの細胞学的染料で、より一般的に蛍光色素またはで固定し、染色する浸潤/遊走した細胞のためのものです。次いで、細胞を、手動で、非常に時間のかかる作業12,13でこれらの膜を倒立顕微鏡画像を使用して定量します。

手動細胞計数の欠点を克服するために、細胞濃度および移動アッセイのための2つの信頼できる正確な自動細胞カウンターを開発しました。これらの自動化されたセルカウンタアルゴリズムは、OracleのJavaコンピュータ言語を使用してプラグインとしてImageJのために開発されました。 ImageJがょんの国立研究所によって開発された公開と広く使用されている画像処理ツールです。LTH(NIH)14,15;このように、ImageJのためにこれらのプラグインを書くこと生物群集への容易な統合を容易にします。

細胞計数の自動化は、手動カウントに比べて高いスループットと再現性を保証します。他の利用可能なソフトウェアやプラグインは、画像解析5,16,17、細胞濃度計算プラグインを介して細胞濃度を計算するために使用することができるが、高速であり、また、細胞および治療の希釈物を処理することができます。また、これら2つのカウンタからのすべての結果と計算が保存され、エクスポートすることができます。このホワイトペーパーで説明する2つのプラグインは、解剖スコープを使用することにより、生細胞イメージングおよび遊走アッセイ膜のための大きな視野(膜全体のキャプチャ)イメージング用の位相差顕微鏡の使用に最適化されています。 http://peng.lab.yorku.ca/imagej-plugins:プラグインはからのインストール手順とダウンロードのために自由に利用できます。

Protocol

1.複合顕微鏡とカメラ設定(細胞濃度計算) 、調光つまみで完全に電球の明るさを増やし4X対物レンズに切り替え、位相コントラストフィルタが選択されていることを確認します。 注:暗い背景と組織培養のための任意の倒立位相差顕微鏡、 例えば、PHPの位相差は、標準的な顕微鏡及びカメラ手順に従って使用することができます。 顕微鏡のソフトウェアの中で?…

Representative Results

細胞濃度の計算 図1は、CCCのキャリブレーションと可算画像取得の全体的なプロセスを提示しています。 図1Aおよび1Bは 、ピクセル単位でP-正方形の長さのP-正方形のキャリブレーション画像や計算を示しています。 CCCは、式を使用して、指定されたボリューム内の細胞濃度を決定しま?…

Discussion

重要なステップ、トラブルシューティング、および制限

自動化された計算方法の性質上、粒子解析の特にそれらは、これらの粒子を定義するための数学的能力を必要とします。その結果、細胞濃度の計算および遊走アッセイカウンタの両方の精度が撮影した画像は、細胞試料または遊走アッセイ膜に似ているつまり、どのように密接に、画像の忠実度にすぎなかっ依存して…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Canadian Institute of Health Research to CP (OR 142730 and OR 89931). We would like to thank Jelena Brkic for her initial idea of binary particle analysis in ImageJ.

Materials

HyClone Classical Liquid Media:
RPMI 1640 – With L-Glutamine
Fisher Scientific SH3002702 Cell culturing media 
Fetal bovian serum (FBS) GIBCO BRL P00015 Media suppliment
HTR8/SVneo trophoblast cell line Cells were obtained from Dr. Charles Graham (Queen’s University, Kingston, Canada) Software is designed to work with any cell line.
Trypsin GIBCO BRL 27250-018 Prepared as 0.20% (w/v) in 10uM EDTA  1X PBS
Accutase Innovative Cell Technologies AT104
10 cm cell culture plates SARSTEDT 833902 Any tissue culture treated plates will be suitable
Transwell Polyester Membrane Inserts – 8.0µm Pore size Costar 3422 ordered from Fisher Scientific 7200150 For 24-well plates; Pore size: 8.0µm; 6.5mm diameter; 0.33cm2 growth area
HARLECO Hematology Stains and Reagents, EMD Millipore – Soluntions 1, 2 & 3 EMD Millipore and ordered from VWR 65044A, B, & C Hemacolor stain set consists of three 500mL (16.9oz.) poly bottles & includes a methanol fixative (Solution 1), an eosin or acid stain (Solution 2), and a methylene blue or basic stain (Solution 3)
Cotton Tipped Applicator Puritan Medical 806-WC
Single-edge industrial razor blades VWR 55411 – 055 Thickness: 0.30 mm (0.012")
Microscope Slides – Precleaned/Plain Fisher Scientific 12550A3 Dimentions: 25 X 75 X 1.0 mm
Fisherbrand Cover Glasses – Rectangles no. 1 Fisher Scientific 12-545E Thickness: 0.13 to 0.17mm; Size: 50 x 22mm
Fisher Chemical Permount Mounting Medium Fisher Scientific SP15-500
Leica Stereo dissecting microscope Leica Microsystems The microsope is equipped with Leica microscope camera Model MC170 HD & camera software is Leica App. Suite (LAS E2) Version 3.1.1 [Build: 490]. Microscope parts:  LED3000 Spot Light Illumination Model: MEB126, Leica M80 Optic Carrier Model M80, Objective achromat 1.0X, WD=90mm Model: MOB306 & Objective achromat 0.32X, WD=303mm Model: MOB315, Video Objective 0.5X Model: MTU-293, 
Hemacytometer Assistant Germany  0.100 mm Depth – 0.0025 mm2
Olympus inverted light microscope Olympus Corporation CKX41SF The microsope is equipped with Lumenera Infinity 1-2   2.0 Megapixel CMOS Color Camera & camera software is Infinity analyze Version 6.5.2
Laminar flow cabinet 1300 Series A2 Thermo Scientific  Model: 1375 Any laminar flow cabinet for cell culture work will be suitable 
Cell culture incubator Thermo Scientific  Model: 370 Any cell culture incubator will be suitable – Cells were cultured under humidefied environment, 5% CO2, 37 °C 
ImageJ NIH Version 1.50e Minimum version required
Java Runtime Environment Oracle Version 1.8.0_66 Minimum version required

References

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Citer Cet Article
O’Brien, J., Hayder, H., Peng, C. Automated Quantification and Analysis of Cell Counting Procedures Using ImageJ Plugins. J. Vis. Exp. (117), e54719, doi:10.3791/54719 (2016).

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